Encyklopedia

Mięsień szkieletowy

Mięsień szkieletowy to narząd ruchu zbudowany z wielojądrowych, poprzecznie prążkowanych włókien kurczących się na sygnał z nerwów ruchowych. Przyczepiony zwykle do kości zamienia energię chemiczną w siłę, ruch i ciepło, a po posiłku pobiera znaczną część glukozy z krwi. Jako największa tkanka ciała wpływa też na przemianę materii innych narządów.
Poziom:
Czas czytania:
36 MIN
Ostatnia aktualizacja: 30 września, 2026
Mięsień szkieletowy — Od mięśnia do sarkomeru — cztery poziomy organizacji
Udostępnij:
Spis Treści

W skrócie

  • Czym jest mięsień szkieletowy?
    Mięsień szkieletowy jest narządem złożonym z długich, wielojądrowych włókien mięśniowych, które kurczą się tylko po pobudzeniu przez neuron ruchowy i poprzez ścięgna przesuwają kości względem siebie.
  • Czym różni się mięsień szkieletowy od mięśnia gładkiego i sercowego?
    Mięsień szkieletowy jest prążkowany, podobnie jak mięsień sercowy, ale jego włókna są wielojądrowe i w zdrowym mięśniu kurczą się tylko pod wpływem nerwu ruchowego. Mięśnie gładkie nie mają prążkowania i pracują bez udziału woli w ścianach narządów.
  • Jak zbudowany jest mięsień szkieletowy?
    Mięsień szkieletowy składa się z brzuśca i ścięgien. Brzusiec tworzą pęczki włókien otoczone tkanką łączną, a każde włókno wypełniają miofibryle zbudowane z powtarzalnych odcinków zwanych sarkomerami.
  • Jak przebiega skurcz mięśnia szkieletowego?
    Skurcz mięśnia szkieletowego zaczyna się od sygnału z układu nerwowego, który powoduje gwałtowny wyrzut jonów wapnia wewnątrz komórki mięśniowej. Obecność wapnia umożliwia połączenie się ze sobą dwóch głównych białek – aktyny i miozyny – które, zużywając energię z ATP, przesuwają się względem siebie i fizycznie skracają mięsień.
  • Jakie są rodzaje włókien mięśniowych?
    Mięsień szkieletowy człowieka zawiera trzy główne typy włókien: wolne i odporne na zmęczenie włókna typu I, szybkie włókna typu IIa o metabolizmie mieszanym oraz najszybsze, łatwo męczące się włókna typu IIx.
  • Czy zakwasy to kwas mlekowy w mięśniach?
    Zakwasy, czyli opóźniony ból mięśni, nie powstaje w wyniku zalegania kwasu mlekowego. Ból narasta przez 2–3 dni po intensywnym wysiłku i wynika z drobnych uszkodzeń włókien mięśnia szkieletowego oraz odczynu zapalnego.
  • Co to są miokiny?
    Miokiny to białka i peptydy wydzielane przez włókna mięśnia szkieletowego, zwłaszcza podczas skurczu. Działają na sam mięsień, a także na wątrobę, tkankę tłuszczową, układ odpornościowy i mózg.

1. Charakterystyka i anatomia

1.1. Definicja i nazewnictwo

Mięsień szkieletowy (łac. musculus, ang. skeletal muscle) to narząd zbudowany z tkanki mięśniowej poprzecznie prążkowanej, należący do czynnej części układu ruchu. Jego podstawową jednostką jest włókno mięśniowe, czyli wydłużona komórka o wielu jądrach, powstała z połączenia wielu komórek prekursorowych. Włókna układają się równolegle w pęczki, a pęczki tworzą brzusiec, który przez ścięgna łączy się z kośćmi. Skurcz włókien przesuwa więc elementy szkieletu względem siebie albo utrzymuje je w stałym położeniu.

W klasyfikacji tkanek mięśnie szkieletowe stanowią jedną z trzech odmian tkanki mięśniowej, obok mięśnia sercowego i mięśni gładkich. Prążkowanie, czyli naprzemienne jasne i ciemne pasma widoczne w mikroskopie, wynika z regularnego ułożenia białek kurczliwych w powtarzalnych odcinkach zwanych sarkomerami. W 1954 roku dwa niezależne zespoły opisały ślizgowy model skurczu, w którym siłę wytwarza przesuwanie się nitek białkowych względem siebie [1, 2]. Model ten, uzupełniony później o budowę mostków poprzecznych, stanowi podstawę współczesnego opisu skurczu.

Mięsień szkieletowy bywa mylony z mięśniem sercowym, ponieważ oba są poprzecznie prążkowane. Różni je budowa komórki i sposób sterowania skurczem. Komórka mięśnia sercowego ma zwykle jedno lub dwa jądra i łączy się z sąsiednimi komórkami wstawkami, które przewodzą pobudzenie. Serce kurczy się dzięki temu rytmicznie i bez udziału woli. Włókno szkieletowe ma wiele jąder ułożonych tuż pod błoną komórkową i w zdrowym mięśniu kurczy się tylko wtedy, gdy pobudzi je neuron ruchowy. Mięśnie gładkie różnią się od obu brakiem prążkowania i wrzecionowatym kształtem komórek, a budują ściany naczyń, jelit i oskrzeli pod kontrolą autonomicznego układu nerwowego.

Nazwa obejmuje zarówno pojedynczy mięsień jako narząd anatomiczny, na przykład mięsień dwugłowy ramienia, jak i całą masę mięśni szkieletowych traktowaną jako jeden układ czynnościowy. W znaczeniu drugim mięsień szkieletowy jest największą tkanką organizmu. W badaniu rezonansem magnetycznym 468 dorosłych stanowił średnio 38% masy ciała u mężczyzn i 31% u kobiet [3]. Pojęcie nie obejmuje mięśnia sercowego ani mięśni gładkich, choć wszystkie trzy tkanki korzystają z tych samych rodzin białek kurczliwych.

Znaczenie mięśnia szkieletowego wykracza poza ruch. Mięśnie są obok wątroby i jelit głównym odbiorcą glukozy z posiłku [53], stanowią główny magazyn aminokwasów organizmu [5] i wydzielają cząsteczki sygnałowe nazywane miokinami [6]. Słabsza siła mięśni wiąże się z wyższą umieralnością niezależnie od innych czynników ryzyka [7]. Stan mięśni szkieletowych jest więc w medycynie wskaźnikiem zdrowia metabolicznego i sprawności, a nie tylko cechą narządu ruchu.

1.2. Rozmieszczenie i masa

Mięśnie szkieletowe nie tworzą jednego narządu w jednym miejscu, lecz rozproszony układ wielu odrębnych mięśni obecnych w każdej okolicy ciała. Większość z nich łączy się obu końcami z kośćmi i przerzuca się nad stawem, który porusza. Część mięśni ma jednak przyczepy nietypowe. Mięśnie mimiczne twarzy kończą się w skórze, a mięśnie języka i zewnętrzne mięśnie oka poruszają narządy niezwiązane ze szkieletem kończyn.

Przyczep początkowy leży zwykle bliżej osi ciała, a przyczep końcowy dalej od niej. Podczas ruchu nieruchomy może jednak pozostawać każdy z nich. Przy podciąganiu się na drążku ręce pozostają w miejscu, a ku nim przesuwa się tułów. Mięśnie grzbietu i brzucha stabilizują tułów, mięśnie kończyn wykonują ruchy lokomocyjne i chwytne, a przepona i mięśnie międzyżebrowe wentylują płuca. Oddychanie zależy więc od tej samej tkanki co chodzenie.

Masa mięśni szkieletowych różni się między płciami i zmienia się z wiekiem. W badaniu całego ciała rezonansem magnetycznym mężczyźni mieli średnio 33 kg mięśni, a kobiety 21 kg [3]. Różnica między płciami była większa w górnej połowie ciała (40%) niż w dolnej (33%). Względna masa mięśni zaczynała się zmniejszać już w trzeciej dekadzie życia, natomiast wyraźny spadek masy bezwzględnej pojawiał się dopiero pod koniec piątej dekady. Ubytek dotyczył głównie mięśni kończyn dolnych [3].

Masa ciała i wzrost wyjaśniały w tym samym badaniu około połowy zmienności masy mięśniowej. Zależność od masy ciała nie była liniowa, ponieważ u osób cięższych przyrost wagi coraz słabiej wynikał z przyrostu mięśni [3]. Z tego powodu sama masa ciała nie mówi, ile w organizmie jest tkanki mięśniowej.

1.3. Budowa makroskopowa i podział na części

Pojedynczy mięsień szkieletowy ma część kurczliwą, czyli brzusiec, oraz części przenoszące siłę, czyli ścięgna. Ścięgno zbudowane jest z gęstej tkanki łącznej bogatej w kolagen i nie kurczy się. Gdy ścięgno ma postać płaskiej blachy, nazywa się rozcięgnem.

Tkanka łączna tworzy w mięśniu trzy warstwy osłonek. Namięsna otacza cały mięsień, omięsna dzieli go na pęczki, a śródmięsna otula każde pojedyncze włókno. Osłonki te przechodzą płynnie w ścięgno, dlatego siła wytworzona w głębi brzuśca trafia do kości bez utraty ciągłości struktury. W omięsnej biegną naczynia krwionośne i nerwy, które docierają stamtąd do poszczególnych włókien. Całą grupę mięśni otacza dodatkowo powięź, która oddziela ją od sąsiednich grup i tworzy przedziały powięziowe.

Siłę i szybkość mięśnia wyznacza w dużej mierze ułożenie włókien względem osi ścięgna. W mięśniu wrzecionowatym włókna biegną równolegle do kierunku pociągania i są długie. Taki mięsień skraca się na dużym odcinku i szybko, ale jego przekrój poprzeczny jest ograniczony. W mięśniu pierzastym krótkie włókna przyczepiają się skośnie do ścięgna biegnącego przez środek brzuśca. W tej samej objętości mieści się wtedy więcej włókien, więc mięsień rozwija większą siłę kosztem zakresu skracania.

Mięśnie rzadko pracują pojedynczo. Mięśnie działające w tym samym kierunku nazywa się synergistami, a mięśnie o działaniu przeciwnym antagonistami. Precyzyjny ruch wymaga jednoczesnego skurczu jednych i kontrolowanego rozluźnienia drugich. O kształcie ruchu decyduje zatem nie pojedynczy mięsień, lecz układ mięśni sterowany wspólnie przez rdzeń kręgowy i mózg.

1.4. Budowa mikroskopowa

Włókno mięśniowe jest jedną komórką o długości sięgającej wielu centymetrów, otoczoną błoną zwaną sarkolemą i leżącą na niej blaszką podstawną. Jądra włókna leżą na obwodzie, tuż pod sarkolemą, a środek komórki wypełniają miofibryle. Między miofibrylami znajdują się mitochondria, ziarna glikogenu i mioglobina, czyli białko magazynujące tlen.

Miofibryla składa się z szeregu sarkomerów, odcinków ograniczonych z obu stron liniami Z. Od linii Z odchodzą nitki cienkie, zbudowane z aktyny oraz białek regulacyjnych tropomiozyny i troponiny. W środku sarkomeru leżą nitki grube z miozyny, której główki wystają na boki i mogą wiązać się z aktyną. Obszar nitek grubych tworzy ciemny prążek A, a obszar samych nitek cienkich jasny prążek I. Powtarzanie się tych prążków w tysiącach sarkomerów daje obraz poprzecznego prążkowania.

Trzecim układem nitek jest tytyna, olbrzymie białko sprężyste. Jedna cząsteczka tytyny rozciąga się od linii Z do środka sarkomeru i utrzymuje nitki grube w osi [8]. Podczas rozciągania mięśnia tytyna wytwarza napięcie bierne, które chroni sarkomer przed nadmiernym rozciągnięciem. Część badaczy przypisuje jej także udział w wytwarzaniu siły czynnej, lecz ta rola pozostaje przedmiotem dyskusji [8].

Skurcz wymaga szybkiego przekazania sygnału z powierzchni komórki do wszystkich miofibryli. Służą temu kanaliki poprzeczne, czyli kanaliki T, będące wpukleniami sarkolemy w głąb włókna. Każdy kanalik T przylega do dwóch zbiorników siateczki sarkoplazmatycznej, magazynu jonów wapnia, i tworzy z nimi triadę. W triadzie białko czujnikowe w błonie kanalika styka się bezpośrednio z kanałem uwalniającym wapń w błonie siateczki [9].

Sarkolemę łączy z wnętrzem komórki i z macierzą zewnątrzkomórkową zespół białek, którego kluczowym składnikiem jest dystrofina. Dystrofina stanowi około 0,002% białek mięśnia poprzecznie prążkowanego [10]. Mimo tak małej ilości jej brak czyni włókno podatnym na uszkodzenie przy każdym skurczu [11]. Pod blaszką podstawną, lecz na zewnątrz sarkolemy, leżą komórki satelitarne, spoczynkowe komórki macierzyste mięśnia opisane w 1961 roku [12, 13]. Komórki satelitarne mięśnia to inna populacja niż komórki satelitarne zwojów nerwowych, które należą do gleju i mają jedynie wspólną nazwę wynikającą z położenia przy innej komórce.

1.5. Typy włókien mięśniowych

Włókna jednego mięśnia nie są jednakowe. Różnią się szybkością skurczu, sposobem pozyskiwania energii i odpornością na zmęczenie. Najlepszym markerem typu włókna jest izoforma łańcucha ciężkiego miozyny, czyli wariant białka, od którego zależy tempo rozkładu adenozynotrifosforanu (ATP), głównego nośnika energii w komórce, w główce miozyny [14].

W mięśniach tułowia i kończyn człowieka występują trzy główne typy włókien. Włókna typu I kurczą się wolno, mają dużo mitochondriów i mioglobiny oraz gęstą sieć naczyń włosowatych, więc pracują długo na przemianach tlenowych. Włókna typu IIx kurczą się najszybciej i czerpią energię głównie z glikolizy beztlenowej, dlatego szybko się męczą. Włókna typu IIa zajmują położenie pośrednie. Czwarty typ, IIb, obecny w mięśniach gryzoni, w mięśniach kończyn człowieka praktycznie nie występuje [14]. Różnice obejmują nie tylko miozynę, lecz wszystkie układy włókna: pobudliwość błony, uwalnianie wapnia i zaopatrzenie energetyczne [14].

Trzy typy włókien różnią się szybkością skurczu, źródłem energii, wyposażeniem w mitochondria i męczliwością.

Cecha Typ I Typ IIa Typ IIx
Szybkość skurczu wolna szybka najszybsza
Główne źródło energii przemiany tlenowe tlenowe i glikoliza glikoliza beztlenowa
Mitochondria i mioglobina dużo średnio mało
Odporność na zmęczenie wysoka pośrednia niska

Proporcja typów włókien różni się między mięśniami i między ludźmi. Tożsamość włókna ustala się w rozwoju zarodkowym, a potem modyfikują ją aktywność nerwu ruchowego i hormony [14]. Wzorzec pobudzeń nerwowych jest głównym czynnikiem przestawiającym typ włókna, na przykład w kierunku bardziej tlenowym przy długotrwałej pracy. Mięsień nie ma zatem stałego składu, lecz dostosowuje go do zadań, jakie wykonuje.

Mięsień szkieletowy — Typy włókien i systemy energetyczne
Typy włókien i systemy energetyczne
Włókna wolne i szybkie różnią się liczbą mitochondriów, ukrwieniem i źródłem energii.

1.6. Unaczynienie i unerwienie

Tętnice wchodzą do mięśnia zwykle w jednym lub kilku miejscach i rozgałęziają się w omięsnej. Każde włókno otacza sieć naczyń włosowatych biegnących w śródmięsnej, gęstsza wokół włókien typu I [14]. Podczas pracy naczynia mięśnia rozszerzają się, dzięki czemu przepływ krwi rośnie wielokrotnie w stosunku do spoczynku.

Unerwienie ruchowe pochodzi od neuronów ruchowych, których ciała leżą w rogach przednich rdzenia kręgowego albo w jądrach nerwów czaszkowych. Akson jednego neuronu rozgałęzia się i unerwia wiele włókien rozproszonych w obrębie mięśnia. Neuron wraz ze wszystkimi unerwianymi przez siebie włóknami tworzy jednostkę motoryczną, której włókna należą do tego samego typu. W mięśniach wykonujących precyzyjne ruchy, na przykład w mięśniach gałki ocznej, jednostki są małe. W dużych mięśniach kończyn dolnych jeden neuron steruje znacznie większą liczbą włókien.

Neuron przekazuje pobudzenie na włókno w złączu nerwowo-mięśniowym, gdzie uwalnia acetylocholinę działającą na receptory w błonie włókna. Przeciwciała przeciw tym receptorom są przyczyną miastenii. Mięsień ma również unerwienie czuciowe. Wrzeciona mięśniowe mierzą długość mięśnia, narządy ścięgniste mierzą napięcie ścięgna, a wolne zakończenia nerwowe reagują na metabolity i ucisk. Włókna współczulne unerwiają naczynia mięśnia i regulują ich średnicę.

1.7. Rozwój komórek mięśni szkieletowych

Mięśnie szkieletowe tułowia i kończyn wywodzą się z somitów, parzystych odcinków mezodermy leżących po obu stronach zawiązka kręgosłupa. Z części somitu zwanej miotomem powstają komórki prekursorowe mięśni. Część z nich wędruje do zawiązków kończyn i tam tworzy mięśnie kończyn.

O tym, że komórka stanie się mięśniową, decydują miogenne czynniki regulacyjne: Myf5, MyoD, miogenina i MRF4 [15]. Są to czynniki transkrypcyjne, czyli białka włączające geny swoiste dla mięśnia. Rolę nadrzędną MyoD ujawniło doświadczenie z 1987 roku, w którym wprowadzenie jednego genu MyoD do fibroblastów przekształciło je w mioblasty [16]. Mioblasty przestają się dzielić, ustawiają się w szereg i zlewają błonami w wielojądrowe cewki mięśniowe. Z cewek dojrzewają włókna, a ich wielojądrowość jest bezpośrednim śladem tej fuzji.

Część komórek prekursorowych nie wchodzi do włókien i pozostaje pod blaszką podstawną jako komórki satelitarne. Rozpoznaje się je po obecności czynnika transkrypcyjnego Pax7 [13]. W spoczynku komórki satelitarne nie dzielą się. Po uszkodzeniu włókna aktywują się, namnażają, a następnie zlewają z uszkodzonym włóknem albo tworzą nowe. Komórki satelitarne są niezbędne do regeneracji mięśnia szkieletowego [17]. Mięsień dorosłego człowieka zachowuje więc zdolność odbudowy, której mięsień sercowy w podobnym zakresie nie ma.

2. Funkcje mięśni szkieletowych

2.1. Funkcje podstawowe

Mięsień szkieletowy wykonuje pracę mechaniczną, ale jego działanie obejmuje także gospodarkę cieplną, węglowodanową i białkową organizmu. Wszystkie te funkcje wynikają ze specyficznej budowy, a także dużej masy tkanki mięśniowej i bogatego zaplecza metabolicznego.
2.1.1. Skurcz i ruch

W spoczynku stężenie wolnych jonów wapnia wewnątrz włókna jest niskie, a tropomiozyna zasłania na aktynie miejsca, z którymi mogłyby się związać główki miozyny. Włókno pozostaje rozluźnione, choć zawiera cały aparat potrzebny do skurczu. Bodźcem do skurczu jest potencjał czynnościowy przekazany z neuronu ruchowego w złączu nerwowo-mięśniowym.

Potencjał czynnościowy rozchodzi się po sarkolemie i wnika w głąb włókna kanalikami T. W błonie kanalika wyczuwa go receptor dihydropirydynowy, czyli kanał wapniowy działający w mięśniu szkieletowym jako czujnik napięcia. Receptor ten jest mechanicznie sprzężony z receptorem rianodynowym RyR1, kanałem w błonie siateczki sarkoplazmatycznej [18]. Zmiana kształtu czujnika otwiera kanał RyR1 i jony wapnia wypływają z siateczki do cytoplazmy. Uwolniony wapń wiąże się z troponiną C na nitkach cienkich [9]. Troponina zmienia wtedy położenie tropomiozyny i odsłania miejsca wiązania na aktynie.

Główki miozyny przyłączają się do odsłoniętej aktyny i tworzą tak zwane mostki poprzeczne. Każda główka wykonuje ruch wiosłowy, który przesuwa nitkę cienką o niewielki odcinek w stronę środka sarkomeru. Następnie nowa cząsteczka ATP odłącza główkę od aktyny, a rozkład ATP napina główkę do kolejnego cyklu. Cykl powtarza się, dopóki w cytoplazmie utrzymuje się wysokie stężenie wapnia. Nitki nie zmieniają długości, tylko wsuwają się między siebie, więc linie Z zbliżają się i sarkomer się skraca [1, 2].

Rozkurcz również wymaga energii. Pompa wapniowa siateczki sarkoplazmatycznej, zwana SERCA, przenosi jony wapnia z powrotem do zbiorników kosztem ATP [19]. Gdy stężenie wapnia spada, tropomiozyna ponownie zasłania aktynę i mostki przestają się tworzyć. Mięsień zużywa zatem ATP zarówno do wytworzenia siły, jak i do jej wyłączenia.

Siła całego mięśnia zależy od liczby pobudzonych jednostek motorycznych i od częstotliwości ich pobudzeń. Przy słabym wysiłku układ nerwowy włącza najpierw małe jednostki złożone z włókien typu I, a przy rosnącym oporze dołącza jednostki coraz większe. Szybkie pobudzenia jednej jednostki nakładają się na siebie, bo kolejny impuls przychodzi, zanim wapń zdąży wrócić do siateczki. Dzięki temu ten sam mięsień może wykonać zarówno delikatny ruch palców, jak i skurcz unoszący cały ciężar ciała.

Mięsień szkieletowy — Sprzężenie elektromechaniczne — od potencjału do skurczu
Sprzężenie elektromechaniczne — od potencjału do skurczu
Sprzężenie elektromechaniczne przekłada potencjał czynnościowy na skurcz w pięciu krokach. Kluczowy jest wyrzut wapnia z magazynu wewnątrzkomórkowego.
2.1.2. Utrzymanie postawy

Utrzymanie wyprostowanej postawy wymaga stałej, niskiej aktywności mięśni przeciwdziałających sile ciężkości. Pracują przy tym głównie mięśnie grzbietu, pośladków, ud i łydek. Mięśnie te zawierają dużo włókien typu I, które długo utrzymują napięcie bez zmęczenia [14].

Stan wyjściowy to równowaga, w której środek ciężkości ciała leży nad podstawą stóp. Każde odchylenie tułowia rozciąga mięśnie po jednej stronie ciała. Rozciągnięcie pobudza wrzeciona mięśniowe, a sygnał z nich trafia włóknami czuciowymi do rdzenia kręgowego. Tam zakończenia czuciowe pobudzają bezpośrednio neurony ruchowe tego samego mięśnia, bez udziału mózgu. Mięsień kurczy się i przywraca położenie ciała. Ten łuk odruchowy działa w ułamku sekundy i nie wymaga świadomej uwagi.

Nad odruchami rdzeniowymi pracuje sterowanie ośrodkowe. Informacje z narządu równowagi, wzroku i czucia głębokiego zbiegają się w pniu mózgu i móżdżku, które dostosowują napięcie mięśni do położenia ciała. Postawa jest więc stanem czynnym, a nie biernym oparciem na kościach.

2.1.3. Wytwarzanie ciepła

Mięsień szkieletowy zamienia na pracę mechaniczną tylko część energii zużytego ATP. Reszta rozprasza się jako ciepło, dlatego wysiłek fizyczny podnosi temperaturę ciała. Przy dużej masie mięśni ten uboczny produkt pracy staje się ważnym źródłem ciepła dla całego organizmu.

W zimnie mięśnie wytwarzają ciepło celowo. Drżenie mięśniowe to szybkie, niezsynchronizowane skurcze włókien, które nie przesuwają kości, lecz zużywają ATP i uwalniają energię w postaci ciepła. Drugi sposób nie wymaga skurczu. Białko sarkolipina wiąże się z pompą SERCA i sprawia, że pompa rozkłada ATP bez pełnego przeniesienia jonów wapnia. Wapń wraca do cytoplazmy przez kanał RyR1, więc powstaje tak zwany cykl jałowy: pompa wielokrotnie przenosi te same jony, a energia ATP uwalnia się jako ciepło [19].

Myszy pozbawione sarkolipiny nie utrzymywały temperatury ciała 37 °C w temperaturze otoczenia 4 °C i szybciej przybierały na wadze na diecie wysokotłuszczowej [19]. Dane te pochodzą z modeli mysich, a udział sarkolipiny w termogenezie bez drżenia u człowieka pozostaje przedmiotem badań. Z danych zwierzęcych wynika hipoteza, że mięsień szkieletowy może regulować wydatek energetyczny także w spoczynku.

2.1.4. Wychwyt i magazynowanie glukozy

Mięsień szkieletowy jest największym narządem organizmu pod względem masy i głównym regulatorem stężenia glukozy we krwi [4]. W badaniu z cewnikowaniem naczyń mięśnie całego ciała pobrały w ciągu 5 godzin po posiłku mieszanym około 30% spożytych węglowodanów, a narządy jamy brzusznej około 39% [53]. Glukoza wnika do włókna przez transporter glukozy typu 4 (GLUT4), białko błonowe przechowywane w spoczynku w pęcherzykach wewnątrz komórki [20]. Wychwyt zależy więc od tego, ile transportera znajduje się w danej chwili na powierzchni włókna.

Po posiłku rośnie stężenie insuliny we krwi. Insulina wiąże się z receptorem na sarkolemie i uruchamia szlak sygnałowy, który przesuwa pęcherzyki z GLUT4 do błony komórkowej i kanalików T. Transporter wpuszcza glukozę do włókna, gdzie zostaje ona zużyta albo zmagazynowana jako glikogen. Stężenie glukozy we krwi wraca w ten sposób do wartości wyjściowej.

Skurcz mięśnia przemieszcza GLUT4 do błony niezależnie od insuliny. Sygnałem są zmiany towarzyszące pracy: wzrost stężenia wapnia, aktywacja kinazy aktywowanej przez AMP (AMPK), która wyczuwa niedobór energii oraz tlenek azotu [20]. Regularny wysiłek zwiększa ponadto ilość GLUT4 w mięśniu i jego zapasy glikogenu [20]. Pracujący mięsień pobiera więc glukozę nawet wtedy, gdy odpowiedź na insulinę jest osłabiona. Oporność mięśni na insulinę pozostaje jednak jednym z głównych ogniw insulinooporności całego organizmu [4].

2.1.5. Rezerwuar aminokwasów

Białka mięśni szkieletowych stanowią największy zasób białka w organizmie. Białko to nie jest nieruchomym magazynem, bo w każdej chwili część cząsteczek powstaje, a część ulega rozkładowi. Taka ciągła wymiana pozwala mięśniowi oddawać aminokwasy innym narządom, gdy ich podaż z przewodu pokarmowego ustaje.

Mięsień jest głównym rezerwuarem aminokwasów, który podtrzymuje syntezę białek w narządach niezbędnych do życia w okresach bez wchłaniania aminokwasów z jelit [5]. W czasie głodu, ciężkiej choroby albo urazu rozpad białek mięśniowych przeważa nad ich syntezą. Uwolnione aminokwasy trafiają z krwią do wątroby, która wykorzystuje je jako substraty glukoneogenezy, czyli wytwarzania glukozy z substancji niecukrowych [5].

Rozpad białek mięśniowych podtrzymuje więc czynność narządów życiowych kosztem masy mięśni. Ta sama cecha ma też skutek niekorzystny. Mała masa mięśniowa oznacza mniejszą rezerwę na wypadek choroby, a przewlekły katabolizm prowadzi do wyniszczenia opisanego w chorobach nowotworowych i przewlekłych [5].

2.2. Czynność wydzielnicza i endokrynna

Mięsień szkieletowy jest także narządem wydzielniczym. Cytokiny i inne peptydy wytwarzane i uwalniane przez włókna mięśniowe, działające na sam mięsień, na tkanki sąsiednie albo przez krew na odległe narządy, nazwano miokinami [6]. Wydzielina mięśnia obejmuje kilkaset peptydów, a wydzielanie wielu z nich zależy od skurczu [6].

Najlepiej poznaną miokiną jest interleukina 6, czyli IL-6, cytokina znana wcześniej głównie jako mediator stanu zapalnego. W badaniu, w którym zdrowi mężczyźni przez 5 godzin pracowali jedną nogą, stężenie IL-6 we krwi tętniczej wzrosło 19-krotnie [21]. Pracująca noga uwalniała IL-6, a spoczywająca nie, więc źródłem cytokiny był sam kurczący się mięsień. IL-6 z mięśnia nasila utlenianie tłuszczów i działa na wątrobę, tkankę tłuszczową i układ odpornościowy [6]. Autorzy badania łączą jej wydzielanie z utrzymaniem stężenia glukozy podczas długiego wysiłku [21].

Irysyna jest fragmentem białka błonowego FNDC5, odcinanym i uwalnianym do krwi. U myszy wysiłek zwiększał jej wydzielanie, a irysyna przekształcała białą tkankę tłuszczową w tkankę o cechach brunatnej i zwiększała wydatek energetyczny [22]. U ludzi dane są sporne. Przeciwciała z komercyjnych testów immunoenzymatycznych (ELISA) wiązały w surowicy białka niespecyficzne, co podważyło wcześniejsze pomiary irysyny [23]. Metoda spektrometrii mas wykazała natomiast obecność irysyny we krwi człowieka w stężeniu około 3,6 ng/ml, rosnącym do około 4,3 ng/ml po treningu interwałowym [24]. Rola irysyny w fizjologii człowieka pozostaje więc nieustalona.

Miostatyna hamuje wzrost samego mięśnia, czyli ogranicza masę narządu, który ją wytwarza. Myszy pozbawione genu miostatyny miały mięśnie 2–3 razy cięższe niż zwierzęta prawidłowe, co wynikało zarówno z przerostu, jak i ze zwiększenia liczby włókien [25]. U człowieka mutację genu miostatyny opisano u dziecka z wyraźnym przerostem mięśni [26]. Mięsień wytwarza też czynnik neurotroficzny pochodzenia mózgowego, czyli BDNF, białko wspierające przeżycie neuronów. Po wysiłku ilość BDNF w mięśniu człowieka rosła, lecz białko nie przedostawało się do krwi, a w samym mięśniu nasilało spalanie tłuszczów [27].

Cztery najlepiej opisane miokiny różnią się bodźcem wydzielania, działaniem i jakością danych u ludzi.

Miokina Bodziec wydzielania Działanie główne Dane u ludzi
IL-6 skurcz, długi wysiłek utlenianie tłuszczów, działanie na wątrobę i tkankę tłuszczową pomiary bezpośrednie w mięśniu i krwi
Irysyna wysiłek (u myszy) brunatnienie tkanki tłuszczowej (u myszy) sporne, zależne od metody pomiaru
Miostatyna stała ekspresja w mięśniu hamowanie wzrostu mięśnia mutacja u człowieka z przerostem
BDNF skurcz utlenianie tłuszczów w samym mięśniu nie przechodzi do krwi

Pojęcie miokiny obejmuje więc cząsteczki o bardzo różnym zasięgu, od działających tylko miejscowo po krążące we krwi. Wydzielanie wielu miokin zależy od skurczu, dlatego mała aktywność fizyczna zmienia profil wydzielniczy mięśnia. Autorzy przeglądu przedstawiają to jako hipotetyczne ogniwo między siedzącym trybem życia a chorobami przewlekłymi [6].

Oferta NeuroExpert
NeuroExpert · bez reklam
Masz dość reklam?
Wyłącz banery, przerywniki i dolną belkę. Subskrypcja daje także pełny dostęp do bazy wiedzy NeuroExpert oraz treści premium.
Bez reklam
Pełny dostęp
Treści premium
Wyłącz reklamy
Mięsień szkieletowy — Mięsień jako narząd wydzielania — miokiny
Mięsień jako narząd wydzielania
Kurczący się mięsień wydziela miokiny działające na mózg, tkankę tłuszczową i kość. Ruch jest sygnałem o charakterze endokrynnym.

2.3. Regulacja czynności narządu

Masa i siła mięśnia szkieletowego wynikają z bilansu dwóch stale zachodzących procesów: syntezy i rozpadu białek. Gdy synteza przeważa, mięsień rośnie, a gdy przeważa rozpad, zanika. Na ten bilans wpływają sygnały nerwowe, obciążenie mechaniczne, dostępność aminokwasów i hormony.

Sygnał nerwowy steruje nie tylko skurczem, lecz także charakterem włókien. Wzorzec pobudzeń docierających z neuronu ruchowego uruchamia we włóknie szlaki sygnałowe, które zmieniają ekspresję izoform miozyny i enzymów metabolicznych [14]. Mięsień pozbawiony unerwienia traci więc nie tylko zdolność skurczu, ale też swoją strukturę.

Obciążenie mechaniczne, aminokwasy z posiłku i insulina pobudzają syntezę białek mięśniowych. Sygnały te zbiegają się we włóknie na kompleksie mTORC1, kinazie, która uruchamia produkcję białek w rybosomach [28]. Rozpad białek zachodzi głównie w układzie ubikwityna-proteasom. W tym szlaku białko przeznaczone do rozkładu zostaje oznaczone łańcuchem ubikwityny i trawione przez proteasom. W wielu modelach zaniku mięśni u zwierząt wzrastała ekspresja dwóch ligaz ubikwitynowych, MuRF1 i MAFbx, a myszy pozbawione którejkolwiek z nich były odporne na zanik [29]. Obie ligazy uznaje się za wspólne ogniwo różnych postaci zaniku, choć dane pochodzą głównie z badań na zwierzętach.

Cztery hormony o największym wpływie na mięsień różnią się działaniem, kierunkiem i podstawą dowodową.

Hormon Główne działanie na mięsień Kierunek Podstawa
Insulina przemieszczenie GLUT4 do błony, wychwyt glukozy ↑ wychwyt glukozy przegląd [4, 20]
Testosteron wzrost przekroju i siły mięśni ↑ masa i siła badanie z randomizacją [30]
IGF-1 hamowanie czynnika FOXO i genów zaniku ↑ masa przegląd [31]
Kortyzol nasilenie rozpadu, hamowanie syntezy białek ↓ masa przegląd [28]

W badaniu z randomizacją wysokie, ponadfizjologiczne dawki testosteronu zwiększały przekrój i siłę mięśni zdrowych mężczyzn nawet bez treningu, a w połączeniu z treningiem efekt był największy [30]. Insulinopodobny czynnik wzrostu 1, czyli IGF-1, pośredniczy w dużej części w działaniu hormonu wzrostu. IGF-1 hamuje czynnik transkrypcyjny FOXO, który włącza geny zaniku, i w ten sposób przeciwdziała katabolicznemu działaniu glikokortykoidów [31]. Kortyzol i inne glikokortykoidy nasilają rozpad w układzie ubikwityna-proteasom i hamują syntezę białek, a zanik obejmuje przede wszystkim szybkie włókna typu II [28]. Masa mięśnia jest więc wypadkową sygnałów anabolicznych i katabolicznych, a ich przewaga w jedną stronę zmienia ją w ciągu dni lub tygodni.

2.4. Oś mięsień-mózg

Mięsień i mózg wymieniają informacje dwiema drogami: nerwową i krwionośną. Droga nerwowa przekazuje do ośrodkowego układu nerwowego stan mięśnia w czasie rzeczywistym. Droga krwionośna przenosi cząsteczki wydzielane przez mięsień, które docierają do mózgu wolniej, ale działają dłużej.

Wolne zakończenia nerwowe w mięśniu wysyłają sygnały włóknami czuciowymi grupy III i IV, czyli cienkimi włóknami reagującymi na metabolity i odkształcenie. Sygnały te nasilają oddychanie i pracę serca, dostosowując dostawę tlenu do pracującego mięśnia [32]. Jednocześnie hamują pobudzenie neuronów ruchowych w rdzeniu kręgowym, co ogranicza wysiłek i składa się na zmęczenie pochodzenia ośrodkowego [32]. Sygnały z mięśnia wpływają więc na to, jak długo ośrodkowy układ nerwowy podtrzymuje intensywny wysiłek.

Droga krwionośna łączy mięsień z hipokampem, strukturą mózgu ważną dla pamięci. Przegląd badań opisuje katepsynę B, enzym wydzielany przez mięsień, który przenika przez barierę krew-mózg i zwiększa wytwarzanie BDNF w mózgu [33]. Wzrost BDNF sprzyja neurogenezie i uczeniu się, przy czym dowody pochodzą głównie z badań na zwierzętach. Mięsień wpływa więc na BDNF w mózgu pośrednio, przez inne wydzielane cząsteczki. IL-6 wydzielana przez mięsień może dodatkowo hamować ośrodkowe mechanizmy łaknienia [33].

Trzecia droga dotyczy kynureniny, metabolitu tryptofanu, który przenika do mózgu i w nadmiarze sprzyja zmianom typowym dla depresji. U myszy trenowany mięsień zwiększał ilość enzymów przekształcających kynureninę w kwas kynureninowy, który nie przechodzi przez barierę krew-mózg [34]. Zwierzęta z takim mięśniem były odporne na zmiany podobne do depresji wywołane przewlekłym stresem. Dane te pochodzą z modeli mysich, a u ludzi mechanizm opisywany jest jako jeden z możliwych szlaków działania wysiłku na nastrój [33].

3. Uszkodzenie i patologia

3.1. Następstwa uszkodzenia

Mięsień szkieletowy może zostać uszkodzony mechanicznie, metabolicznie albo przez utratę unerwienia. Skutek zależy od tego, czy zniszczeniu ulega samo włókno, czy jego źródło sterowania i odbudowy. Odpowiedzią na uszkodzenie jest regeneracja, zanik albo, przy rozległym rozpadzie, zaburzenia ogólnoustrojowe.

Drobne uszkodzenie włókna uruchamia regenerację. Do miejsca urazu napływają komórki odpornościowe, które usuwają martwe fragmenty i wydzielają sygnały pobudzające komórki satelitarne [17]. Komórki satelitarne namnażają się, różnicują w mioblasty i zlewają z uszkodzonym włóknem. Przy braku komórek satelitarnych regeneracja nie zachodzi [17].

Rozległy rozpad włókien nazywa się rabdomiolizą. Z rozerwanych komórek do krwi przechodzą mioglobina, potas i enzymy mięśniowe, w tym kinaza kreatynowa [35]. Mioglobina uszkadza kanaliki nerkowe i może wywołać ostre uszkodzenie nerek, a nagły wzrost potasu grozi zaburzeniami rytmu serca [35]. Przyczyną bywają zmiażdżenia, długie unieruchomienie w jednej pozycji, skrajny wysiłek, niektóre leki i zatrucia [35].

Utrata unerwienia prowadzi do szybkiego zaniku, ponieważ włókno bez sygnału nerwowego nie utrzymuje syntezy białek na dawnym poziomie. W stwardnieniu zanikowym bocznym obumieranie neuronów ruchowych powoduje postępujący zanik i osłabienie mięśni. Pierwotna przyczyna nie leży wtedy w samym mięśniu, lecz w utracie źródła sterowania.

Zanik z bezczynności pojawia się szybko. Nawet krótkie okresy zmniejszonej aktywności obniżają masę i siłę mięśni, tempo syntezy białek mięśniowych oraz wrażliwość na insulinę [36]. Podczas unieruchomienia rozpad białek przyspiesza, a synteza zwalnia, przy czym udział w rozpadzie mają kalpainy i autofagia związane ze stresem oksydacyjnym [37]. W metaanalizie badań z randomizacją dodatkowa podaż białka lub aminokwasów nie chroniła przed zanikiem mięśni wywołanym unieruchomieniem [38]. Wynik ten jest zgodny z hipotezą, że o zaniku decyduje głównie brak skurczu, a nie niedobór substratu.

3.2. Choroby mięśni szkieletowych

Choroby mięśni szkieletowych dzielą się na pierwotne, w których wada leży w samym włóknie, i wtórne, w których mięsień cierpi z powodu choroby innego narządu lub leczenia. Wspólnym obrazem jest osłabienie i ubytek masy, lecz mechanizm i przebieg są różne.

Sarkopenia według konsensusu Europejskiej Grupy Roboczej ds. Sarkopenii u Osób Starszych (EWGSOP2) jest chorobą mięśni, czyli niewydolnością mięśniową narastającą w ciągu życia [39]. Podstawowym kryterium jest mała siła mięśni. Rozpoznanie potwierdza mała ilość lub jakość tkanki mięśniowej, a słaba sprawność fizyczna oznacza postać ciężką [39]. Sarkopenia występuje najczęściej u osób starszych, lecz może pojawić się wcześniej, na przykład w przebiegu chorób przewlekłych.

Kacheksja nowotworowa to zespół z postępującą utratą masy mięśni szkieletowych, z utratą tkanki tłuszczowej lub bez niej, której nie da się w pełni odwrócić standardowym leczeniem żywieniowym [40]. Kryterium rozpoznania jest utrata ponad 5% masy ciała albo ponad 2% u osób ze wskaźnikiem masy ciała poniżej 20 kg/m² lub z sarkopenią [40]. Mechanizmem jest ujemny bilans białkowo-energetyczny, łączący zmniejszone spożycie z zaburzonym metabolizmem.

Dystrofia mięśniowa Duchenne’a jest chorobą genetyczną wywołaną mutacjami genu dystrofiny, które znoszą wytwarzanie tego białka w mięśniu [11]. W 1987 roku zidentyfikowano dystrofinę jako produkt genu odpowiedzialnego za tę chorobę i wykazano jej brak w mięśniach chorych chłopców [10]. Włókna bez dystrofiny łatwiej ulegają uszkodzeniu przy skurczu. Stopniowo zastępuje je tkanka łączna i tłuszczowa, co prowadzi do utraty chodzenia, niewydolności oddechowej i kardiomiopatii [11].

Miopatie polekowe najczęściej wiążą się z glikokortykoidami i statynami. Miopatia posteroidowa obejmuje głównie szybkie włókna typu II i wynika z nasilonego rozpadu i zahamowanej syntezy białek [28]. Ciężka miopatia statynowa ze znacznym wzrostem kinazy kreatynowej dotyczy od 1 na 1000 do 1 na 10 000 osób przyjmujących standardowe dawki [41]. Bóle mięśni zgłasza wprawdzie 7–29% pacjentów w rejestrach i badaniach obserwacyjnych [41], ale w metaanalizie badań z podwójnie ślepą próbą tylko jedno na 15 takich zgłoszeń w pierwszym roku leczenia wynikało z działania statyny [42]. Pozostałe dolegliwości występowały równie często w grupie placebo.

Mięsień szkieletowy uczestniczy też w chorobach metabolicznych. Oporność mięśni na insulinę jest wczesnym ogniwem cukrzycy typu 2, bo narząd będący głównym regulatorem stężenia glukozy przestaje skutecznie reagować na hormon [4]. W miastenii zaburzenie dotyczy złącza nerwowo-mięśniowego, a nie samego włókna. Przekazywanie pobudzenia słabnie przy kolejnych impulsach, dlatego osłabienie narasta w trakcie powtarzanych skurczów.

3.3. Wsparcie suplementacyjne

Kilka substancji dostępnych jako suplementy zmienia skład chemiczny włókna mięśniowego, a niektóre także siłę mięśnia. Punkt uchwytu tych substancji leży w samym mięśniu: zmieniają zawartość fosfokreatyny lub karnozyny we włóknie albo siłę skurczu, a nie tylko wynik sportowy.

Kreatyna trafia do mięśnia i odkłada się w nim jako fosfokreatyna, rezerwa pozwalająca szybko odtwarzać ATP. W badaniu klinicznym suplementacja podniosła całkowitą zawartość kreatyny w mięśniu czworogłowym, u niektórych osób nawet o 50%, a około 20% pobranej kreatyny występowało jako fosfokreatyna [43]. W metaanalizie badań z udziałem starszych dorosłych kreatyna łączona z treningiem oporowym zwiększała beztłuszczową masę ciała i siłę bardziej niż placebo [44]. Bezpośrednie pomiary przerostu mięśni wykazały jednak efekt bardzo mały [45].

Beta-alanina jest substratem do syntezy karnozyny, dipeptydu buforującego jony wodorowe we włóknie. Przegląd systematyczny wykazał, że suplementacja beta-alaniną zwiększa zawartość karnozyny w mięśniu praktycznie u wszystkich badanych, a stosowane schematy nie wysycają mięśnia karnozyną [46]. Cholekalcyferol, czyli witamina D3, w metaanalizie 30 badań z randomizacją dał mały wzrost siły mięśni bez wpływu na ich masę, wyraźniejszy przy niedoborze witaminy D i u osób po 65. roku życia [47]. Kwasy tłuszczowe omega-3 w metaanalizie dały bardzo mały wzrost siły, także bez wpływu na masę mięśni [48].

Cztery substancje różnią się punktem uchwytu w mięśniu, kierunkiem działania i siłą dowodu.

Substancja Mechanizm wpływu Kierunek Siła dowodu
Kreatyna wzrost zawartości fosfokreatyny, większy przyrost masy beztłuszczowej przy treningu oporowym ↑ fosfokreatyna, ↑ masa beztłuszczowa A [44, 45], B [43]
Beta-alanina substrat syntezy karnozyny w mięśniu ↑ zawartość karnozyny A [46]
Cholekalcyferol mały wzrost siły, wyraźniejszy przy niedoborze ↑ siła, ~ masa A [47]
Kwasy omega-3 bardzo mały wzrost siły ↑ siła, ~ masa A [48]

Silny i spójny wpływ na samą tkankę mięśniową mają kreatyna i beta-alanina, natomiast witamina D i kwasy omega-3 zmieniają siłę w stopniu niewielkim. Dawkowanie, interakcje i przeciwwskazania opisują karty poszczególnych substancji w dziale Suplementy.

4. Uwagi praktyczne

4.1. Jak to zbadać

Stan mięśni szkieletowych ocenia się badaniami krwi, pomiarami siły i masy, badaniami elektrofizjologicznymi i obrazowymi oraz biopsją. Każda z tych metod odpowiada na inne pytanie, a wybór zależy od podejrzewanego problemu.

Kinaza kreatynowa, czyli CK, to enzym włókien mięśniowych, który przechodzi do krwi przy uszkodzeniu błony komórkowej. Jej aktywność w surowicy podaje się w jednostkach na litr (U/l). Wynik zależy od wieku, płci, pochodzenia etnicznego, masy mięśniowej i aktywności fizycznej [49, 50]. Wysiłek, zwłaszcza nieprzywykły, podnosi aktywność CK nawet u zdrowych osób, dlatego górne granice normy ustalone dla populacji ogólnej nie pasują do osób trenujących [50]. Utrzymująca się wysoka aktywność CK po odpoczynku, bez innych wyjaśnień, jest wskazaniem do pełnej diagnostyki [49].

Siłę mięśni mierzy się najprościej dynamometrem ręcznym. Według kryteriów EWGSOP2 na małą siłę wskazuje siła chwytu poniżej 27 kg u mężczyzn i poniżej 16 kg u kobiet [39]. W prospektywnym badaniu PURE (ang. Prospective Urban Rural Epidemiology), obejmującym 139 691 osób z 17 krajów, każde 5 kg mniejszej siły chwytu wiązało się z 16% większym ryzykiem zgonu z dowolnej przyczyny [7]. Siła chwytu przewidywała umieralność lepiej niż skurczowe ciśnienie tętnicze [7].

Masę mięśni ocenia się densytometrią rentgenowską (DXA) albo bioimpedancją elektryczną (BIA). DXA mierzy masę beztłuszczową kończyn na podstawie pochłaniania promieniowania, a BIA szacuje ją z oporu elektrycznego tkanek. Konsensus EWGSOP2 przyjmuje jako próg małej masy mięśni kończyn wartość poniżej 20 kg u mężczyzn i 15 kg u kobiet albo poniżej 7,0 i 5,5 kg/m² po przeliczeniu na kwadrat wzrostu [39]. Najdokładniej masę mięśni określa rezonans magnetyczny całego ciała, stosowany głównie w badaniach naukowych [3].

Elektromiografia (EMG) rejestruje czynność elektryczną mięśnia elektrodą igłową lub powierzchniową. Badanie odróżnia osłabienie wynikające z choroby samego mięśnia od osłabienia spowodowanego uszkodzeniem nerwu lub złącza nerwowo-mięśniowego. Biopsja mięśnia pozwala ocenić pod mikroskopem budowę włókien, udział typów włókien i obecność białek takich jak dystrofina [11, 14]. Metody te różnią się przedmiotem pomiaru i badanym materiałem.

Metoda Co mierzy Materiał lub warunki
Kinaza kreatynowa uszkodzenie błony włókien surowica, najlepiej po kilku dniach bez intensywnego wysiłku
Siła chwytu siłę mięśni dynamometr ręczny
DXA, BIA masę mięśni kończyn badanie całego ciała
EMG czynność elektryczną mięśnia i nerwu elektroda igłowa lub powierzchniowa
Biopsja budowę i skład włókien wycinek mięśnia

Żadne pojedyncze badanie nie opisuje stanu mięśni w całości. Siła, masa i marker uszkodzenia mogą zmieniać się niezależnie, dlatego ocena opiera się na zestawieniu kilku wyników z obrazem klinicznym.

4.2. Na co warto zwrócić uwagę

Zakwasy nie są wynikiem zalegania kwasu mlekowego w mięśniu. Potoczna nazwa dotyczy opóźnionej bolesności mięśni, którą wywołują skurcze ekscentryczne, czyli praca mięśnia podczas jego wydłużania, oraz nieprzywykły wysiłek [51]. Za główny mechanizm uznaje się obecnie drobne uszkodzenia struktury włókien, po których następują rozpad białek i miejscowy odczyn zapalny [51]. Ból osiąga szczyt 48–72 godziny po wysiłku [51]. Hipoteza kwasu mlekowego była tylko jedną z sześciu proponowanych teorii [52], a obecny model wiąże objawy z uszkodzeniem i zapaleniem rozwijającymi się przez kolejne dni [51].

Podwyższona kinaza kreatynowa nie oznacza sama w sobie choroby mięśni. Aktywność CK rośnie po wysiłku u zdrowych osób, a jej wartość zależy od masy mięśniowej i pochodzenia etnicznego [50]. Interpretacja wymaga więc informacji o wysiłku z ostatnich dni. Jednocześnie bardzo wysoka CK z ciemnym moczem i osłabieniem po wysiłku może oznaczać rabdomiolizę, która grozi uszkodzeniem nerek [35].

Masa mięśni i siła mięśni to dwie różne cechy. Konsensus EWGSOP2 uznał małą siłę za podstawową cechę sarkopenii właśnie dlatego, że lepiej niż masa przewiduje niekorzystne następstwa [39]. Wynik DXA lub BIA w normie nie wyklucza więc osłabienia mięśni. Masa beztłuszczowa obejmuje ponadto wodę, kości i narządy wewnętrzne, dlatego jej zmiana nie jest równoznaczna ze zmianą ilości włókien mięśniowych.

Działanie miokin na mózg i odległe narządy opisano w dużej części na modelach zwierzęcych [33]. Korzystny wpływ wysiłku przekazywany przez miokiny jest więc mechanizmem prawdopodobnym, ale u ludzi zmierzonym tylko dla części cząsteczek, takich jak IL-6.

Nagłe osłabienie mięśni, ciemne zabarwienie moczu po wysiłku albo zanik mięśni bez uchwytnej przyczyny są objawami wymagającymi oceny lekarskiej.

Najważniejsze ustalenia - Mięsień szkieletowy

Mięsień szkieletowy stanowi średnio 38% masy ciała mężczyzn i 31% masy ciała kobiet, a względny ubytek mięśni zaczyna się już w trzeciej dekadzie życia [3]. Mięsień szkieletowy pobiera po posiłku mieszanym około 30% spożytych węglowodanów, a więc podobną ich część jak wątroba i jelita [53]. Mięsień szkieletowy skraca się, choć żadne z jego białek kurczliwych nie zmienia długości: nitki aktyny i miozyny jedynie przesuwają się względem siebie, jak ustalono w 1954 roku [1, 2]. Pracujący…

Dostęp dla subskrybentów
Ta treść jest dostępna po zalogowaniu.
Masz już konto? Zaloguj się
Wykup dostęp

Źródła wyszukane w PubMed (NLM/NCBI). Przy każdej pozycji podano identyfikator PMID i odnośnik DOI.

  1. Huxley AF, Niedergerke R. Structural changes in muscle during contraction; interference microscopy of living muscle fibres. Nature. 1954;173(4412):971-3. DOI · PMID: 13165697
  2. Huxley H, Hanson J. Changes in the cross-striations of muscle during contraction and stretch and their structural interpretation. Nature. 1954;173(4412):973-6. DOI · PMID: 13165698
  3. Janssen I, Heymsfield SB, Wang ZM, Ross R. Skeletal muscle mass and distribution in 468 men and women aged 18-88 yr. J Appl Physiol (1985). 2000;89(1):81-8. DOI · PMID: 10904038
  4. Merz KE, Thurmond DC. Role of skeletal muscle in insulin resistance and glucose uptake. Compr Physiol. 2020;10(3):785-809. DOI · PMID: 32940941
  5. Wolfe RR. The underappreciated role of muscle in health and disease. Am J Clin Nutr. 2006;84(3):475-82. DOI · PMID: 16960159
  6. Pedersen BK, Febbraio MA. Muscles, exercise and obesity: skeletal muscle as a secretory organ. Nat Rev Endocrinol. 2012;8(8):457-65. DOI · PMID: 22473333
  7. Leong DP, Teo KK, Rangarajan S, Lopez-Jaramillo P, Avezum A, Orlandini A, et al. Prognostic value of grip strength: findings from the Prospective Urban Rural Epidemiology (PURE) study. Lancet. 2015;386(9990):266-73. DOI · PMID: 25982160
  8. Linke WA. Stretching the story of titin and muscle function. J Biomech. 2023;152:111553. DOI · PMID: 36989971
  9. Bolaños P, Calderón JC. Excitation-contraction coupling in mammalian skeletal muscle: blending old and last-decade research. Front Physiol. 2022;13:989796. DOI · PMID: 36117698
  10. Hoffman EP, Brown RH, Kunkel LM. Dystrophin: the protein product of the Duchenne muscular dystrophy locus. Cell. 1987;51(6):919-28. DOI · PMID: 3319190
  11. Duan D, Goemans N, Takeda S, Mercuri E, Aartsma-Rus A. Duchenne muscular dystrophy. Nat Rev Dis Primers. 2021;7(1):13. DOI · PMID: 33602943
  12. Mauro A. Satellite cell of skeletal muscle fibers. J Biophys Biochem Cytol. 1961;9(2):493-5. DOI · PMID: 13768451
  13. Engquist EN, Zammit PS. The satellite cell at 60: the foundation years. J Neuromuscul Dis. 2021;8(s2):S183-S203. DOI · PMID: 34459412
  14. Schiaffino S, Reggiani C. Fiber types in mammalian skeletal muscles. Physiol Rev. 2011;91(4):1447-531. DOI · PMID: 22013216
  15. Shirakawa T, Toyono T, Inoue A, Matsubara T, Kawamoto T, Kokabu S. Factors regulating or regulated by myogenic regulatory factors in skeletal muscle stem cells. Cells. 2022;11(9):1493. DOI · PMID: 35563799
  16. Davis RL, Weintraub H, Lassar AB. Expression of a single transfected cDNA converts fibroblasts to myoblasts. Cell. 1987;51(6):987-1000. DOI · PMID: 3690668
  17. Schmidt M, Schüler SC, Hüttner SS, von Eyss B, von Maltzahn J. Adult stem cells at work: regenerating skeletal muscle. Cell Mol Life Sci. 2019;76(13):2559-2570. DOI · PMID: 30976839
  18. Shishmarev D. Excitation-contraction coupling in skeletal muscle: recent progress and unanswered questions. Biophys Rev. 2020;12(1):143-153. DOI · PMID: 31950344
  19. Bal NC, Maurya SK, Sopariwala DH, Sahoo SK, Gupta SC, Shaikh SA, et al. Sarcolipin is a newly identified regulator of muscle-based thermogenesis in mammals. Nat Med. 2012;18(10):1575-9. DOI · PMID: 22961106
  20. Richter EA, Hargreaves M. Exercise, GLUT4, and skeletal muscle glucose uptake. Physiol Rev. 2013;93(3):993-1017. DOI · PMID: 23899560
  21. Steensberg A, van Hall G, Osada T, Sacchetti M, Saltin B, Klarlund Pedersen B. Production of interleukin-6 in contracting human skeletal muscles can account for the exercise-induced increase in plasma interleukin-6. J Physiol. 2000;529 Pt 1:237-42. DOI · PMID: 11080265
  22. Boström P, Wu J, Jedrychowski MP, Korde A, Ye L, Lo JC, et al. A PGC1-α-dependent myokine that drives brown-fat-like development of white fat and thermogenesis. Nature. 2012;481(7382):463-8. DOI · PMID: 22237023
  23. Albrecht E, Norheim F, Thiede B, Holen T, Ohashi T, Schering L, et al. Irisin – a myth rather than an exercise-inducible myokine. Sci Rep. 2015;5:8889. DOI · PMID: 25749243
  24. Jedrychowski MP, Wrann CD, Paulo JA, Gerber KK, Szpyt J, Robinson MM, et al. Detection and quantitation of circulating human irisin by tandem mass spectrometry. Cell Metab. 2015;22(4):734-740. DOI · PMID: 26278051
  25. McPherron AC, Lawler AM, Lee SJ. Regulation of skeletal muscle mass in mice by a new TGF-beta superfamily member. Nature. 1997;387(6628):83-90. DOI · PMID: 9139826
  26. Schuelke M, Wagner KR, Stolz LE, Hübner C, Riebel T, Kömen W, et al. Myostatin mutation associated with gross muscle hypertrophy in a child. N Engl J Med. 2004;350(26):2682-8. DOI · PMID: 15215484
  27. Matthews VB, Aström MB, Chan MH, Bruce CR, Krabbe KS, Prelovsek O, et al. Brain-derived neurotrophic factor is produced by skeletal muscle cells in response to contraction and enhances fat oxidation via activation of AMP-activated protein kinase. Diabetologia. 2009;52(7):1409-18. DOI · PMID: 19387610
  28. Schakman O, Kalista S, Barbé C, Loumaye A, Thissen JP. Glucocorticoid-induced skeletal muscle atrophy. Int J Biochem Cell Biol. 2013;45(10):2163-72. DOI · PMID: 23806868
  29. Bodine SC, Latres E, Baumhueter S, Lai VK, Nunez L, Clarke BA, et al. Identification of ubiquitin ligases required for skeletal muscle atrophy. Science. 2001;294(5547):1704-8. DOI · PMID: 11679633
  30. Bhasin S, Storer TW, Berman N, Callegari C, Clevenger B, Phillips J, et al. The effects of supraphysiologic doses of testosterone on muscle size and strength in normal men. N Engl J Med. 1996;335(1):1-7. DOI · PMID: 8637535
  31. Schakman O, Gilson H, Thissen JP. Mechanisms of glucocorticoid-induced myopathy. J Endocrinol. 2008;197(1):1-10. DOI · PMID: 18372227
  32. Amann M, Wan HY, Thurston TS, Georgescu VP, Weavil JC. On the influence of group III/IV muscle afferent feedback on endurance exercise performance. Exerc Sport Sci Rev. 2020;48(4):209-216. DOI · PMID: 32658041
  33. Pedersen BK. Physical activity and muscle-brain crosstalk. Nat Rev Endocrinol. 2019;15(7):383-392. DOI · PMID: 30837717
  34. Agudelo LZ, Femenía T, Orhan F, Porsmyr-Palmertz M, Goiny M, Martinez-Redondo V, et al. Skeletal muscle PGC-1α1 modulates kynurenine metabolism and mediates resilience to stress-induced depression. Cell. 2014;159(1):33-45. DOI · PMID: 25259918
  35. Bosch X, Poch E, Grau JM. Rhabdomyolysis and acute kidney injury. N Engl J Med. 2009;361(1):62-72. DOI · PMID: 19571284
  36. Sarto F, Bottinelli R, Franchi MV, Porcelli S, Simunič B, Pišot R, et al. Pathophysiological mechanisms of reduced physical activity: insights from the human step reduction model and animal analogues. Acta Physiol (Oxf). 2023;238(3):e13986. DOI · PMID: 37178372
  37. Powers SK, Ozdemir M, Hyatt H. Redox control of proteolysis during inactivity-induced skeletal muscle atrophy. Antioxid Redox Signal. 2020;33(8):559-569. DOI · PMID: 31941357
  38. Hughes AK, Francis T, Rooney J, Pollock R, Witard OC. The effect of protein or amino acid provision on immobilization-induced muscle atrophy in healthy adults: a systematic review and meta-analysis. Exp Physiol. 2024;109(6):873-888. DOI · PMID: 38424716
  39. Cruz-Jentoft AJ, Bahat G, Bauer J, Boirie Y, Bruyère O, Cederholm T, et al. Sarcopenia: revised European consensus on definition and diagnosis. Age Ageing. 2019;48(1):16-31. DOI · PMID: 30312372
  40. Fearon K, Strasser F, Anker SD, Bosaeus I, Bruera E, Fainsinger RL, et al. Definition and classification of cancer cachexia: an international consensus. Lancet Oncol. 2011;12(5):489-95. DOI · PMID: 21296615
  41. Stroes ES, Thompson PD, Corsini A, Vladutiu GD, Raal FJ, Ray KK, et al. Statin-associated muscle symptoms: impact on statin therapy-European Atherosclerosis Society Consensus Panel Statement on Assessment, Aetiology and Management. Eur Heart J. 2015;36(17):1012-22. DOI · PMID: 25694464
  42. Cholesterol Treatment Trialists’ Collaboration. Effect of statin therapy on muscle symptoms: an individual participant data meta-analysis of large-scale, randomised, double-blind trials. Lancet. 2022;400(10355):832-845. DOI · PMID: 36049498
  43. Harris RC, Söderlund K, Hultman E. Elevation of creatine in resting and exercised muscle of normal subjects by creatine supplementation. Clin Sci (Lond). 1992;83(3):367-74. DOI · PMID: 1327657
  44. Forbes SC, Candow DG, Ostojic SM, Roberts MD, Chilibeck PD. Meta-analysis examining the importance of creatine ingestion strategies on lean tissue mass and strength in older adults. Nutrients. 2021;13(6):1912. DOI · PMID: 34199420
  45. Burke R, Piñero A, Coleman M, Mohan A, Sapuppo M, Augustin F, et al. The effects of creatine supplementation combined with resistance training on regional measures of muscle hypertrophy: a systematic review with meta-analysis. Nutrients. 2023;15(9):2116. DOI · PMID: 37432300
  46. Rezende NS, Swinton P, de Oliveira LF, da Silva RP, da Eira Silva V, Nemezio K, et al. The muscle carnosine response to beta-alanine supplementation: a systematic review with Bayesian individual and aggregate data E-max model and meta-analysis. Front Physiol. 2020;11:913. DOI · PMID: 32922303
  47. Beaudart C, Buckinx F, Rabenda V, Gillain S, Cavalier E, Slomian J, et al. The effects of vitamin D on skeletal muscle strength, muscle mass, and muscle power: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. J Clin Endocrinol Metab. 2014;99(11):4336-45. DOI · PMID: 25033068
  48. Santo André HC, Esteves GP, Barreto GHC, Longhini F, Dolan E, Benatti FB. The influence of n-3PUFA supplementation on muscle strength, mass, and function: a systematic review and meta-analysis. Adv Nutr. 2023;14(1):115-127. DOI · PMID: 36811583
  49. Brancaccio P, Maffulli N, Buonauro R, Limongelli FM. Serum enzyme monitoring in sports medicine. Clin Sports Med. 2008;27(1):1-18, vii. DOI · PMID: 18206566
  50. Baird MF, Graham SM, Baker JS, Bickerstaff GF. Creatine-kinase- and exercise-related muscle damage implications for muscle performance and recovery. J Nutr Metab. 2012;2012:960363. DOI · PMID: 22288008
  51. Hotfiel T, Freiwald J, Hoppe MW, Lutter C, Forst R, Grim C, et al. Advances in delayed-onset muscle soreness (DOMS): Part I: pathogenesis and diagnostics. Sportverletz Sportschaden. 2018;32(4):243-250. DOI · PMID: 30537791
  52. Cheung K, Hume P, Maxwell L. Delayed onset muscle soreness: treatment strategies and performance factors. Sports Med. 2003;33(2):145-64. DOI · PMID: 12617692
  53. Capaldo B, Gastaldelli A, Antoniello S, Auletta M, Pardo F, Ciociaro D, et al. Splanchnic and leg substrate exchange after ingestion of a natural mixed meal in humans. Diabetes. 1999;48(5):958-66. DOI · PMID: 10331398

Podobne wpisy