Encyklopedia

Oreksyna (hipokretyna)

Oreksyna, nazywana też hipokretyną, to neuropeptyd wytwarzany w mózgu przez jedną niewielką populację neuronów bocznego podwzgórza. Działając przez dwa receptory sprzężone z białkami G, pobudza ośrodki czuwania w pniu mózgu i podwzgórzu. Jej niedobór wywołuje narkolepsję typu 1, a blokowanie jej receptorów stało się sposobem leczenia bezsenności.
Poziom:
Czas czytania:
31 MIN
Ostatnia aktualizacja: 30 września, 2026
Oreksyna (hipokretyna) — Peptyd stabilizujący czuwanie
Udostępnij:
Spis Treści

W skrócie

  • Czym jest oreksyna?
    Oreksyna to neuropeptyd wytwarzany przez około 74 300 neuronów bocznego podwzgórza, występujący w dwóch postaciach: oreksyny A i oreksyny B. Jej główną rolą w mózgu jest podtrzymywanie stabilnego, nieprzerywanego czuwania.
  • Za co odpowiada oreksyna?
    Oreksyna pobudza ośrodki czuwania w pniu mózgu i podwzgórzu oraz stabilizuje przechodzenie między jawą a snem. Uczestniczy też w regulacji łaknienia, wydatku energii, motywacji i reakcji na stres.
  • Jaki jest związek oreksyny z narkolepsją?
    Narkolepsja typu 1 powstaje najprawdopodobniej wtedy, gdy układ odpornościowy niszczy neurony wytwarzające oreksynę. U chorych brakuje 85–95% tych neuronów, a w płynie mózgowo-rdzeniowym oreksyny jest bardzo mało albo nie daje się jej wykryć.
  • Czym różni się oreksyna od hipokretyny?
    Oreksyna i hipokretyna to dwie nazwy tych samych neuropeptydów, nadane przez dwa zespoły badawcze, które opisały je niezależnie w 1998 roku. Oreksyna A odpowiada hipokretynie 1, a oreksyna B hipokretynie 2.
  • Czy oreksyna zwiększa apetyt?
    Oreksyna podana do komór mózgu zwiększa u gryzoni ilość zjadanego pokarmu i wydatek energii. U myszy neurony oreksynowe pobudza grelina, a hamują glukoza i leptyna, dzięki czemu głód nasila czuwanie i aktywność.
  • Jak działają leki blokujące receptory oreksyny?
    Leki blokujące oba receptory oreksynowe, czyli suworeksant, lemboreksant i daridoreksant, osłabiają sygnał czuwania. W badaniach z randomizacją skracały czas zasypiania i czas czuwania w nocy u chorych z bezsennością.
  • Jak zbadać poziom oreksyny?
    Oreksynę oznacza się jako hipokretynę-1 w płynie mózgowo-rdzeniowym pobranym przez nakłucie lędźwiowe. Wartość poniżej 110 pg/ml przemawia za narkolepsją typu 1, jednak oznaczenie we krwi nie wystarcza, by odróżnić chorych od osób zdrowych.

1. Profil substancji

1.1. Definicja i klasyfikacja

Oreksyny (ang. orexins), nazywane też hipokretynami (ang. hypocretins), to dwa neuropeptydy, oreksyna A i oreksyna B, należące do przekaźników peptydowych ośrodkowego układu nerwowego [1, 2]. W mózgu wytwarza je jedna populacja neuronów bocznego podwzgórza, których aksony docierają do większości ośrodków mózgowia i rdzenia kręgowego [3, 4]. Oba peptydy powstają z jednego białka prekursorowego, a podwójne nazewnictwo pochodzi od dwóch zespołów, które opisały je niezależnie [1, 2]. Hipokretyna 1 to ta sama cząsteczka co oreksyna A, a hipokretyna 2 to oreksyna B [5].

W klasyfikacji przekaźników oreksyny należą do neuropeptydów, czyli krótkich łańcuchów aminokwasów pełniących funkcję sygnałową między neuronami. W zakończeniach neuronów hipokretynowych peptyd występuje w dużych ziarnistych pęcherzykach [2]. Takie pęcherzyki są typowe dla neuropeptydów, a przekaźniki aminokwasowe gromadzą się w mniejszych pęcherzykach synaptycznych. Oreksyny działają przez dwa receptory sprzężone z białkami G, dlatego ich efekt rozwija się wolniej i trwa dłużej niż efekt przekaźnika otwierającego kanał jonowy [1, 6]. Pełnią więc funkcję neuromodulatora, który ustala poziom pobudliwości całych grup neuronów, a nie przenosi pojedynczego impulsu.

Nazwa oreksyny bywa mylona z ogólnym terminem „peptydy oreksygenne”, obejmującym wszystkie cząsteczki pobudzające apetyt. Oreksyny otrzymały nazwę od greckiego słowa orexis, czyli apetyt, ponieważ po podaniu do komór mózgu szczura zwiększały ilość zjadanego pokarmu [1, 7]. Ich główną funkcją okazało się jednak utrzymywanie czuwania, a nie sterowanie jedzeniem [7, 8]. Oreksyny różnią się też od greliny, hormonu krążącego we krwi, który nie jest wytwarzany przez neurony oreksynowe, lecz działa na nie z zewnątrz i je pobudza [9].

Najbliższym sąsiadem anatomicznym oreksyn jest hormon koncentrujący melaninę (ang. melanin-concentrating hormone, MCH), neuropeptyd bocznego podwzgórza sprzyjający snowi REM, czyli fazie snu z szybkimi ruchami gałek ocznych (ang. rapid eye movement). Neurony oreksynowe i neurony MCH leżą obok siebie, ale tworzą dwie rozłączne populacje [10]. Ich pobudzenie w czasie snu daje przeciwne skutki: stymulacja neuronów oreksynowych budzi zwierzę, a stymulacja neuronów MCH nasila sen REM [10]. Termin „układ oreksynowy” obejmuje oba peptydy, ich prekursor, dwa receptory i neurony, które je wytwarzają [7]. Oreksyna wymaga osobnego opisu, ponieważ utrata jej neuronów jest przyczyną narkolepsji typu 1, a jej receptory stały się punktem uchwytu nowej klasy leków [11, 12].

1.2. Budowa, trwałość i rozkład

Oreksyna A to peptyd złożony z 33 aminokwasów, a oreksyna B to peptyd liniowy złożony z 28 aminokwasów [7]. Cztery reszty cysteiny oreksyny A tworzą dwa wewnątrzcząsteczkowe mostki disiarczkowe. Sekwencja oreksyny A jest identyczna u człowieka, szczura, myszy, krowy, owcy, psa i świni [7]. Oreksyna B jest u szczura w 46% identyczna z oreksyną A [7].

Różnica w budowie przekłada się na trwałość obu peptydów poza neuronem. W badaniu na myszach oreksyna A podana dożylnie przenikała przez barierę krew-mózg na drodze prostej dyfuzji i docierała do tkanki mózgowej w postaci nienaruszonej [13]. Oreksyna B była natomiast szybko rozkładana we krwi i w nienaruszonej formie do mózgu nie docierała [13]. Autorzy powiązali tę różnicę z większą lipofilnością oreksyny A, czyli jej lepszą rozpuszczalnością w tłuszczach, z których zbudowane są błony komórkowe [13]. Wyniki te dotyczą modelu mysiego i nie są pomiarem przenikania oreksyn przez barierę u człowieka.

Podobnie jak w przypadku innych neuropeptydów, działanie oreksyny wygasa, gdy peptyd odłączy się od receptora i zostanie rozłożony przez enzymy proteolityczne. W diagnostyce oznacza się hipokretynę-1, czyli trwalszy z dwóch peptydów, w płynie mózgowo-rdzeniowym [14]. Różnica trwałości obu peptydów ma więc znaczenie nie tylko dla ich działania, ale też dla tego, co da się zmierzyć u pacjenta.

1.3. Rys historyczny

Przed 1998 rokiem boczne podwzgórze uchodziło za ośrodek głodu i pobudzenia, bo jego uszkodzenie u zwierząt wywoływało niedojadanie i spadek aktywności, ale nie znano przekaźnika, który za to odpowiada [7]. W styczniu 1998 roku zespół de Lecei opisał swoisty dla podwzgórza matrycowy RNA (mRNA), czyli cząsteczkę przenoszącą zapis genu do miejsca syntezy białka [2]. Kodował on prekursor dwóch peptydów podobnych do jelitowej sekretyny, które autorzy nazwali hipokretynami [2]. Kilka tygodni później zespół Sakuraiego zidentyfikował te same peptydy jako ligandy dwóch receptorów o nieznanym wcześniej ligandzie i nazwał je oreksynami [1]. W 1999 roku zespół Lin ustalił, że psią narkolepsję wywołuje mutacja genu receptora typu 2, a zespół Chemellego opisał objawy narkolepsji u myszy pozbawionych oreksyny [4, 15].

Nie było jednak jasne, czy ten sam mechanizm działa u człowieka, ponieważ ludzka narkolepsja rzadko występuje rodzinnie i nie wiązała się z mutacjami genów układu hipokretynowego [16]. Rozstrzygnięcie przyniósł 2000 rok. Nishino i współpracownicy nie wykryli hipokretyny w płynie mózgowo-rdzeniowym 7 z 9 chorych [17]. W mózgach zmarłych chorych zespół Peyron nie znalazł samych peptydów, a zespół Thannickala stwierdził utratę 85–95% neuronów hipokretynowych [16, 18]. Mutację genu prekursora znaleziono tylko u jednego chorego z bardzo wczesnym początkiem choroby [18].

1.4. Synteza i źródła oreksyny

Oreksyny powstają z białka prekursorowego nazywanego prepro-oreksyną, które u człowieka koduje gen HCRT [18]. Prekursor ulega w neuronie cięciu proteolitycznemu, a z jednego łańcucha powstają dwa peptydy [1]. Oreksyna A otrzymuje przy tym na końcu aminowym resztę piroglutaminową, a na końcu karboksylowym grupę amidową [7].

Neurony oreksynowe leżą w bocznym i tylnym podwzgórzu oraz w okolicy okołosklepieniowej, czyli wokół sklepienia – pęczka włókien łączącego hipokamp z ciałami suteczkowatymi [1, 18]. Część z nich leży też w podwzgórzu grzbietowo-przyśrodkowym [5]. U człowieka jest ich około 74 300, czyli znacznie mniej niż około 205 000 przewidywanych dla mózgu naczelnego o tej masie [19]. Populacja ta ma jednak u człowieka najbardziej złożony podział na skupiska spośród badanych naczelnych, z dodatkowym skupiskiem drobnokomórkowym w podwzgórzu grzbietowo-przyśrodkowym [19].

Neurony oreksynowe nie uwalniają wyłącznie oreksyny. U szczura 94% neuronów zawierających mRNA prepro-oreksyny wytwarza też mRNA prodynorfiny, czyli prekursora dynorfiny, peptydu opioidowego [20]. Neurony te zawierają również glutaminian, a sama oreksyna nasila jego uwalnianie z zakończeń presynaptycznych [7]. U myszy pozbawionych samego peptydu i u myszy pozbawionych całych neuronów obraz zaburzeń jest różny, co autorzy wiążą z możliwą utratą innych przekaźników tych komórek [20]. Zniszczenie neuronów oreksynowych odbiera więc mózgowi kilka przekaźników jednocześnie, a nie tylko oreksynę.

2. Mechanizm działania i funkcje

2.1. Receptory i punkty uchwytu

Receptor oreksynowy typu 1 (ang. orexin receptor 1, OX1R) to białko błonowe, które po związaniu oreksyny przekazuje sygnał przez białka G do wnętrza komórki [1, 7]. Na tej samej zasadzie działa receptor oreksynowy typu 2 (ang. orexin receptor 2, OX2R), kodowany przez odrębny gen [1, 15]. Oba należą do receptorów metabotropowych, więc nie tworzą kanału jonowego, tylko uruchamiają łańcuch reakcji enzymatycznych. Oreksyna A pobudza oba receptory, a oreksyna B działa głównie na OX2R [7]. OX1R odbiera zatem przede wszystkim oreksynę A, a OX2R sygnał od obu peptydów.

Oba receptory mają w mózgu rozmieszczenie w dużej mierze uzupełniające się [3]. OX1R występuje między innymi w korze przedczołowej, hipokampie, jądrze brzuszno-przyśrodkowym podwzgórza, jądrze grzbietowym szwu i miejscu sinawym [3]. OX2R dominuje w korze mózgu, jądrach przegrody, przyśrodkowych jądrach wzgórza, jądrach szwu i wielu jądrach podwzgórza, w tym w jądrze guzowo-suteczkowym [3]. Neurony noradrenergiczne miejsca sinawego mają spośród dwóch receptorów tylko OX1R, a neurony histaminergiczne jądra guzowo-suteczkowego OX2R [7].

Z rozmieszczenia wynika podział pracy między receptorami. Mutacja genu OX2R wywołuje u psów pełną narkolepsję, a myszy pozbawione OX1R mają jedynie niewielkie rozfragmentowanie snu i nie mają katapleksji [7, 15]. Autorzy mapy receptorów wiążą z tym szczególną rolę OX2R w utrzymaniu stabilności stanów snu i czuwania [3]. OX1R uczestniczy z kolei w reakcjach emocjonalnych: w szczurzym modelu paniki antagoniści OX1R znosili reakcje paniczne [21]. Na tej różnicy opiera się projektowanie leków działających wybiórczo na jeden receptor, takich jak agoniści OX2R [22].

2.2. Kaskada sygnałowa

Neuron docelowy oreksyny, na przykład komórka histaminergiczna jądra guzowo-suteczkowego, ma w spoczynku ujemny potencjał błonowy i wolne receptory oreksynowe na powierzchni. Bodźcem jest uwolnienie oreksyny z zakończeń aksonów, które docierają do tego jądra z bocznego podwzgórza [7]. Związanie peptydu zmienia kształt receptora, a ten aktywuje białka G związane z błoną od strony cytoplazmy. Receptory oreksynowe mogą przy tym sprzęgać się z białkami G należącymi do co najmniej trzech rodzin [6].

W drodze głównej białko G aktywuje fosfolipazę C, czyli enzym błonowy rozkładający fosfolipid błony na dwa przekaźniki wtórne [6]. Jeden z nich uwalnia jony wapnia z siateczki śródplazmatycznej, a drugi aktywuje kinazę białkową C. Wzrost stężenia wapnia w cytoplazmie jest głównym sygnałem przenoszonym przez oba receptory [23]. W komórkach z wprowadzonym receptorem OX2R sprzęgał się dodatkowo z białkiem G hamującym cyklazę adenylanową, czego nie stwierdzono dla OX1R [7].

Równolegle oreksyna zmienia przepływ jonów przez błonę neuronu. Otwiera niespecyficzne kanały kationowe, hamuje kanały potasowe i pobudza wymiennik sodowo-wapniowy, a wszystkie trzy zmiany przesuwają potencjał błonowy w stronę depolaryzacji [6]. Kinaza białkowa C nasila dodatkowo prądy wapniowe przez kanały typu L [7]. Stanem końcowym jest neuron zdepolaryzowany, który łatwiej osiąga próg i częściej wyładowuje się potencjałami czynnościowymi.

Oreksyna działa też presynaptycznie, zwiększając uwalnianie przekaźników z zakończeń nerwowych, i modyfikuje plastyczność synaps [6]. W polu brzusznym nakrywki oreksyna A nasila przekaźnictwo zależne od receptorów NMDA (N-metylo-D-asparaginianowych), czyli jonotropowych receptorów glutaminianu uczestniczących w plastyczności synaps, przez wbudowywanie nowych receptorów do błony synapsy [7]. Przy dłuższej stymulacji receptory oreksynowe wywołują w niektórych komórkach trwałe zmiany plastyczne [6]. Oreksyna może więc zmieniać czynność synapsy na dłużej, niż trwa jej obecność przy receptorze.

2.3. Funkcje oreksyny

Neurony oreksynowe wysyłają aksony do ośrodków czuwania, łaknienia, nagrody i układu autonomicznego, dlatego jeden peptyd wpływa jednocześnie na kilka układów [7]. Układ oreksynowy dostosowuje poziom czuwania do stanu emocjonalnego, dostępności nagrody i bilansu energetycznego organizmu [24]. Poszczególne funkcje różnią się ośrodkiem docelowym, a nie samym mechanizmem komórkowym.

2.3.1. Stabilizacja czuwania

Czuwanie podtrzymują grupy neuronów pnia mózgu i podwzgórza, które uwalniają noradrenalinę, histaminę, serotoninę i acetylocholinę. Neurony te wyładowują się szybko w czasie czuwania i milkną w czasie snu [7]. Hamuje je jądro przedwzrokowe brzuszno-boczne, ośrodek snu wysyłający do ośrodków czuwania włókna uwalniające kwas γ-aminomasłowy (GABA), główny przekaźnik hamujący mózgu [7]. Wzajemne hamowanie ośrodków snu i czuwania działa jak przełącznik, który przechodzi szybko i w całości z jednego stanu w drugi [25].

Oreksyna pobudza jednocześnie monoaminergiczne i cholinergiczne ośrodki czuwania [7, 8]. Wzmacnia w ten sposób tę stronę przełącznika, która utrzymuje czuwanie, i zapobiega przypadkowym przejściom do snu [25]. U myszy optogenetyczne pobudzenie neuronów oreksynowych zwiększało prawdopodobieństwo przebudzenia ze snu REM i ze snu NREM, czyli snu bez szybkich ruchów gałek ocznych, a ich wyciszenie wywoływało sen NREM [7]. Za przebudzenie odpowiadało w dużej mierze miejsce sinawe, bo zahamowanie jego neuronów znosiło efekt stymulacji neuronów oreksynowych [7].

Główne ośrodki czuwania, na które działa oreksyna, różnią się przekaźnikiem, typem receptora oreksynowego i rolą w utrzymaniu czuwania.

Ośrodek docelowy Przekaźnik Działanie oreksyny Rola
Miejsce sinawe (most) noradrenalina pobudzenie przez OX1R [7] przebudzenie, czujność
Jądro guzowo-suteczkowe (podwzgórze tylne) histamina pobudzenie przez OX2R [7] podtrzymanie czuwania
Jądro grzbietowe szwu (pień mózgu) serotonina pobudzenie, obecne OX1R i OX2R [3, 7] aktywność w czuwaniu, milknięcie w śnie
Jądra nakrywki grzbietowo-boczne i konarowo-mostowe acetylocholina wzrost częstotliwości wyładowań [7] czuwanie i sen REM
Podstawa przodomózgowia acetylocholina bezpośrednie pobudzenie [7] pobudzenie kory

Oreksyna nie jest zatem jednym z wielu równorzędnych przekaźników czuwania, lecz sygnałem, który pobudza naraz neurony wszystkich wymienionych przekaźników. Dzięki temu dobowy rytm snu i czuwania obejmuje długi, zwarty okres czuwania, a nie krótkie epizody przerywane snem [7].

Oreksyna (hipokretyna) — Przełącznik snu i czuwania z ryglem
Przełącznik snu i czuwania
Oreksyna stabilizuje przełącznik snu i czuwania. Gdy jej brakuje, układ staje się chwiejny, a granice między snem a jawą zaczynają się zacierać.
2.3.2. Hamowanie przejścia do fazy snu REM

W regulacji snu REM i czuwania kluczową rolę odgrywają cholinergiczne jądra nakrywki grzbietowo-bocznej i konarowo-mostowej w pniu mózgu, a cechą snu REM jest zniesienie napięcia mięśni szkieletowych [7]. Oreksyna A zwiększa częstotliwość wyładowań tych neuronów cholinergicznych [7]. U kotów podanie oreksyny A do jądra nakrywki grzbietowo-bocznej wydłużało czuwanie i skracało sen REM [7]. Po podaniu oreksyny do jądra konarowo-mostowego wywołanie zwiotczenia mięśni wymagało silniejszego bodźca [7].

Oreksyna podtrzymuje równocześnie aktywność neuronów noradrenergicznych i serotoninergicznych, które w czasie snu REM milkną [7]. Sygnał oreksynowy utrzymuje w ten sposób granicę między czuwaniem a snem REM, a jej załamanie w narkolepsji wiąże się z rozpadem przełącznika stanów [8, 25]. Neurony oreksynowe otrzymują też wejścia z układu limbicznego, a hipoteza zakłada, że silne emocje zwiększają uwalnianie oreksyny w jądrze konarowo-mostowym i w ten sposób chronią przed utratą napięcia mięśni [7]. Konsekwencją braku tego zabezpieczenia jest katapleksja, czyli nagła utrata napięcia mięśni wywołana zwykle pozytywną emocją przy zachowanej świadomości [7].

2.3.3. Apetyt i gospodarka energetyczna

Oreksyny podane do komór mózgu szczura zwiększały ilość zjadanego pokarmu [1]. Nie zmniejszały przy tym tempa przemiany materii, lecz zwiększały jednocześnie spożycie i wydatek energii [7]. Autorzy przeglądu tłumaczą ten profil tym, że zwierzę szukające pokarmu musi być czujne i aktywne [7].

Działanie na łaknienie przebiega częściowo przez jądro łukowate podwzgórza. Oreksyna pobudza tam neurony wytwarzające neuropeptyd Y, który silnie zwiększa pobieranie pokarmu, i hamuje neurony proopiomelanokortynowe, które łaknienie tłumią [7]. Antagonista neuropeptydu Y tylko częściowo znosił jedzenie wywołane oreksyną, więc istnieją też inne drogi tego efektu [7].

Neurony oreksynowe łączą przy tym bilans energetyczny z czuwaniem [9]. Myszy pozbawione neuronów oreksynowych nie reagowały na głodzenie wzrostem czuwania i aktywności ruchowej, typowym dla zwierząt zdrowych [9]. Myszy z tego modelu jadły mniej niż zwierzęta kontrolne, a mimo to z wiekiem tyły [7, 20]. Autorzy przeglądu tłumaczą ten paradoks udziałem oreksyny w wydatkowaniu energii, między innymi przez wytwarzanie ciepła w brunatnej tkance tłuszczowej [7].

2.3.4. Układ nagrody i motywacja

Boczne podwzgórze od dawna łączono z motywacją i nagrodą, a neurony oreksynowe wysyłają włókna do jądra półleżącego i pola brzusznego nakrywki, czyli ośrodków układu nagrody [26]. Oreksyna bezpośrednio pobudza neurony dopaminowe pola brzusznego nakrywki [7, 23]. U szczurów aktywacja neuronów oreksynowych wiązała się z preferencją bodźców kojarzonych z narkotykiem i pokarmem [26].

Chemiczne pobudzenie neuronów oreksynowych przywracało u szczurów wygaszone wcześniej poszukiwanie morfiny, a antagonista oreksyny A całkowicie ten efekt znosił [26]. Podobny skutek dawało podanie samej oreksyny A do pola brzusznego nakrywki [26]. Neurony oreksynowe są też pobudzane przez oczekiwanie nagrody i bodźce ją zapowiadające [23]. U gryzoni około dwóch trzecich z nich zwiększa aktywność przed samodzielnie rozpoczętym biegiem i w odpowiedzi na bodźce czuciowe różnych rodzajów [10].

Oreksyna działa więc jako sygnał gotowości do działania, który łączy czuwanie z dążeniem do celu. Opisane doświadczenia wykonano na gryzoniach, więc ich przeniesienie na człowieka wymaga potwierdzenia w badaniach klinicznych.

Oreksyna (hipokretyna) — Integrator trzech osi — sen, głód, nagroda
Integracja trzech osi
Neurony oreksynowe integrują trzy osie: dobową, metaboliczną i nagrody. Oznacza to, że sygnały dotyczące głodu, pory dnia i motywacji zbiegają się w jednej, wyspecjalizowanej grupie komórek.
2.3.5. Reakcja na stres i układ autonomiczny

Neurony oreksynowe aktywują się nie tylko przy głodzie, ale też pod wpływem różnorodnych bodźców czuciowych, zarówno obojętnych, jak i kojarzonych z nagrodą lub zagrożeniem [27]. Do ich wyjść należą pobudzenie kory widoczne w zapisie elektroencefalograficznym, aktywacja układu współczulnego i zachowania eksploracyjne [27]. Hipoteza zakłada, że wspólnym mianownikiem tych bodźców jest stres rozumiany jako stan potencjalnego zagrożenia albo niedoboru nagrody [27].

Oreksyny podane do komór mózgu podnosiły u zwierząt ciśnienie tętnicze i częstość pracy serca [7]. Efekt ten znosiły leki blokujące receptory adrenergiczne alfa-1 i beta, co wskazuje na pośrednictwo współczulnej części autonomicznego układu nerwowego [7]. Myszy pozbawione oreksyny miały niższe ciśnienie niż zwierzęta kontrolne i słabiej reagowały wzrostem ciśnienia i tętna na stres emocjonalny [7].

Oreksyna przygotowuje zatem organizm do reakcji na zagrożenie, zwiększając jednocześnie czujność i gotowość krążenia. Ta sama cecha staje się niekorzystna, gdy układ oreksynowy pozostaje nadmiernie pobudzony w stanach lękowych [21].

2.3.6. Termoregulacja

Brunatna tkanka tłuszczowa wytwarza ciepło bez drżenia mięśniowego i jest jednym ze sposobów utrzymania temperatury ciała. U szczurów włókna oreksynowe biegnące do jądra bladego szwu nasilały wytwarzanie ciepła w brunatnej tkance tłuszczowej [7]. Termoregulacja należy do funkcji autonomicznych, w których udział układu hipokretynowego opisano również w przeglądzie klinicznym [5].

Dane od ludzi nie potwierdzają jednak prostego przeniesienia tego mechanizmu. W badaniu siedmiu chorych z narkolepsją typu 1 i siedmiu osób zdrowych aktywność brunatnej tkanki tłuszczowej po dwóch godzinach w chłodzie nie różniła się między grupami [28]. U chorych z narkolepsją typu 1 termogeneza w brunatnej tkance tłuszczowej działała więc po ekspozycji na chłód także bez neuronów oreksynowych. Znaczenie oreksyny dla termoregulacji człowieka pozostaje przez to nieustalone.

2.4. Regulacja wydzielania i zmienność dobowa

Aktywność neuronów oreksynowych zmienia się w rytmie dobowym i w odpowiedzi na stan odżywienia, a sterują nią wejścia z podwzgórza, pnia mózgu i układu limbicznego [7]. U zwierząt stężenie oreksyny w płynie mózgowo-rdzeniowym wykazuje wahania dobowe, które znikają po usunięciu jądra nadskrzyżowaniowego, czyli głównego zegara biologicznego [7]. Zegar ten unerwia neurony oreksynowe bezpośrednio tylko w niewielkim stopniu, a głównie przez jądro grzbietowo-przyśrodkowe podwzgórza [7, 29]. U szczurów uszkodzenie jądra grzbietowo-przyśrodkowego osłabiało dobowy rytm czuwania, jedzenia i aktywności ruchowej o 78–89% [29].

Neurony oreksynowe są też hamowane przez ośrodki snu. U myszy neurony GABA-ergiczne i galaninowe jądra przedwzrokowego brzuszno-bocznego tworzą bezpośrednie synapsy na neuronach oreksynowych [30]. GABA silnie hamuje neurony oreksynowe przez oba typy swoich receptorów [7]. Hamują je też serotonina, noradrenalina i dopamina, a sama oreksyna pobudza sąsiednie neurony oreksynowe przez OX2R, co tworzy lokalne dodatnie sprzężenie zwrotne [7].

Drugą grupą sygnałów są wskaźniki bilansu energetycznego. W preparatach od myszy glukoza i leptyna hamowały izolowane neurony oreksynowe, a grelina je pobudzała [9]. Aminokwasy pokarmowe również aktywują te neurony i osłabiają ich odpowiedź na glukozę, a insulina nie działa na nie bezpośrednio [7]. U szczurów głodzenie zwiększało ekspresję mRNA prepro-oreksyny w podwzgórzu [1].

Neurony oreksynowe sumują więc informacje o porze doby, stanie odżywienia i bodźcach z otoczenia. Wynikiem tej integracji jest poziom czuwania dopasowany do bieżącej potrzeby organizmu.

Oferta NeuroExpert
NeuroExpert · bez reklam
Masz dość reklam?
Wyłącz banery, przerywniki i dolną belkę. Subskrypcja daje także pełny dostęp do bazy wiedzy NeuroExpert oraz treści premium.
Bez reklam
Pełny dostęp
Treści premium
Wyłącz reklamy

3. Zaburzenia i modyfikacja poziomu

3.1. Niedobór – przyczyny i następstwa

Niedobór oreksyny u człowieka wynika niemal zawsze z utraty neuronów, które ją wytwarzają, a nie z defektu genu prekursora [18]. U chorych z narkolepsją liczba neuronów hipokretynowych jest zmniejszona o 85–95%, podczas gdy przemieszane z nimi neurony MCH zachowują prawidłową liczebność [16]. Mutacja genu prekursora jest przyczyną wyjątkową, opisaną u jednego chorego z bardzo wczesnym początkiem choroby [18].

Brak oreksyny odbiera przełącznikowi snu i czuwania stabilizację, więc oba stany zaczynają się przeplatać [25]. Narkolepsja typu 1 obejmuje nadmierną senność dzienną i katapleksję, a także omamy przy zasypianiu, porażenie przysenne i rozfragmentowany sen nocny [11]. Okresy snu REM pojawiają się u chorych wkrótce po zaśnięciu, co jest zgodne z utratą hamującego wpływu oreksyny na przejście do snu REM [11].

Skutki niedoboru wykraczają poza sen. Narkolepsja typu 1 wpływa również na funkcje ruchowe, psychiczne, emocjonalne, poznawcze, metaboliczne i autonomiczne [11]. W metaanalizie 48 badań chorzy z narkolepsją częściej niż osoby bez niej mieli otyłość, cukrzycę, nadciśnienie tętnicze i zaburzenia lipidowe oraz wyższy wskaźnik masy ciała [31]. Obraz ten przypomina otyłość zwierząt pozbawionych neuronów oreksynowych mimo mniejszego spożycia pokarmu [7].

Oreksyna (hipokretyna) — Narkolepsja typu 1 — ubytek komórek
Narkolepsja typu 1 — ubytek komórek
W narkolepsji typu 1 ginie ponad 90% neuronów oreksynowych. Objawy wynikają z utraty stabilizacji między stanem czuwania a snem.

3.2. Nadmiar – przyczyny i następstwa

Nadmierną aktywność układu oreksynowego opisano dotąd przede wszystkim w modelach zwierzęcych oraz w pojedynczych badaniach u ludzi [21, 23]. W szczurzym modelu napadów paniki pobudzenie neuronów oreksynowych było warunkiem rozwoju stanu podatności na panikę [21]. Wyciszenie genu oreksyny w podwzgórzu albo podanie antagonistów OX1R znosiło reakcje paniczne [21]. U ludzi z lękiem panicznym stężenie oreksyny w płynie mózgowo-rdzeniowym było wyższe niż u osób bez takiego lęku [21].

W przeglądzie zaburzeń motywacji nadmierne pobudzenie neuronów oreksynowych wiąże się z objadaniem się, zaburzeniami lękowymi i uzależnieniami [23]. Zaburzenia z obniżoną motywacją, takie jak depresja, autorzy wiążą z kolei z osłabieniem tego układu [23]. Zmiany aktywności neuronów oreksynowych w zaburzeniach lękowych i w depresji opisano w innym przeglądzie jako element hipotezy, według której neurony te sygnalizują stres [27].

Odrębną sprawą jest bezsenność. Antagoniści receptorów oreksynowych skracają czas zasypiania i czuwania w nocy, ponieważ osłabiają sygnał czuwania w porze snu [32, 33].

3.3. Rola oreksyny w patogenezie chorób

Narkolepsja typu 1 jest chorobą, w której oreksyna stanowi ogniwo centralne, a jej brak jest najprawdopodobniej skutkiem procesu autoimmunologicznego [5, 34]. Choroba dotyka około 1 na 2000 osób [14]. Allel HLA-DQB106:02, czyli wariant genu cząsteczki głównego układu zgodności tkankowej prezentującej limfocytom fragmenty białek, występował u 93% chorych z typową katapleksją i u 17% osób z grupy kontrolnej [14]. Prawie wszyscy chorzy z katapleksją mają jednocześnie allele DQA101:02 i DQB106:02, a nosicielstwo dwóch kopii DQB106:02 zwiększa ryzyko jeszcze bardziej [35].

Bezpośredni dowód udziału układu odpornościowego przyniosło badanie limfocytów T. Limfocyty T pomocnicze rozpoznające hipokretynę wykryto u wszystkich 19 badanych chorych, a limfocyty rozpoznające białko TRIB2, inny antygen neuronów hipokretynowych, u 8 z 13 [34]. Limfocyty T cytotoksyczne swoiste wobec hipokretyny znaleziono we krwi i w płynie mózgowo-rdzeniowym części chorych [34]. Autoreaktywne limfocyty nie reagowały krzyżowo z antygenami wirusa grypy [34].

Czynnikiem wyzwalającym bywa infekcja albo szczepienie. W Finlandii badano szczepionkę przeciw grypie pandemicznej wywołanej wirusem grypy A podtypu H1N1, zawierającą adiuwant AS03, czyli dodatek wzmacniający odpowiedź odpornościową. Zapadalność na narkolepsję wśród zaszczepionych osób w wieku 4–19 lat była 12,7 razy wyższa niż wśród niezaszczepionych [36]. W Chinach liczba zachorowań wzrosła trzykrotnie po pandemii grypy H1N1 z 2009 roku, choć szczepienie pamiętało tylko 5,6% chorych [37]. Początek choroby miał tam charakter sezonowy i następował 5–7 miesięcy po szczycie infekcji górnych dróg oddechowych [37].

Częściowy niedobór oreksyny opisano też w innych chorobach neurologicznych, w tym w chorobie Alzheimera, Parkinsona i Huntingtona, stwardnieniu rozsianym i zespole Pradera-Williego [5]. Może on współodpowiadać za zaburzenia snu w tych chorobach [5]. W uzależnieniach oreksyna działa jako ogniwo nawrotu poszukiwania substancji, co opisano w modelach zwierzęcych [23, 26].

3.4. Punkt uchwytu leków

Receptory oreksynowe stały się celem leków w obu kierunkach: antagonistów w bezsenności i agonistów w narkolepsji. Podwójni antagoniści receptorów oreksynowych (ang. dual orexin receptor antagonists) blokują oba receptory, a tym samym osłabiają sygnał czuwania w porze nocnej. Pierwszym lekiem działającym na układ oreksynowy, który zarejestrowała amerykańska Agencja Żywności i Leków, był suworeksant [12]. W rocznym badaniu z randomizacją suworeksant był dobrze tolerowany i w pierwszym miesiącu wydłużał subiektywny czas snu oraz skracał czas zasypiania [33]. Najczęstszym działaniem niepożądanym była senność, zgłaszana przez 13% leczonych i 3% osób z grupy placebo [33].

Lemboreksant utrzymywał skuteczność przez 12 miesięcy, a po odstawieniu nie obserwowano bezsenności z odbicia ani objawów odstawiennych [38]. Daridoreksant w dwóch badaniach fazy 3 skracał czas czuwania po zaśnięciu, w pierwszym z nich także czas do zaśnięcia, a w wyższej dawce badanej poprawiał funkcjonowanie dzienne [32]. W metaanalizie sieciowej 154 badań lemboreksant miał korzystny profil skuteczności, choć dane o jego bezpieczeństwie uznano za niejednoznaczne [39]. Ta sama analiza oceniła daridoreksant i suworeksant jako skuteczne w leczeniu doraźnym, zgłaszając zastrzeżenia dotyczące tolerancji albo brak danych o działaniu długotrwałym [39].

Drugi kierunek to agoniści OX2R, którzy mają zastąpić brakujący sygnał u chorych z narkolepsją typu 1. TAK-994 poprawiał czuwanie i zmniejszał liczbę napadów katapleksji, ale badanie przerwano z powodu działań niepożądanych dotyczących wątroby [40]. U 3 chorych uszkodzenie wątroby spełniało kryteria Hy’a, czyli kryteria ciężkiego polekowego uszkodzenia tego narządu [40]. Oveporexton (TAK-861) w badaniu fazy 2 poprawiał czuwanie i senność bez działania hepatotoksycznego [22]. W dwóch badaniach fazy 3 mediana zmniejszenia liczby napadów katapleksji wyniosła 79,0–88,8% wobec 27,7–39,1% w grupie placebo [41].

Leki działające na receptory oreksynowe różnią się kierunkiem działania, wskazaniem i zaawansowaniem badań klinicznych.

Lek Mechanizm Wskazanie badane Stan wiedzy
Suworeksant antagonista OX1R i OX2R bezsenność zarejestrowany w USA [12], badanie roczne [33]
Lemboreksant antagonista OX1R i OX2R bezsenność badanie 12-miesięczne, brak bezsenności z odbicia [38]
Daridoreksant antagonista OX1R i OX2R bezsenność dwa badania fazy 3 [32]
TAK-994 agonista OX2R narkolepsja typu 1 badanie przerwane z powodu hepatotoksyczności [40]
Oveporexton (TAK-861) agonista OX2R narkolepsja typu 1 badania fazy 2 i 3 [22, 41]

Blokowanie sygnału oreksynowego ma zatem już zastosowanie kliniczne, a jego odtwarzanie agonistami pozostaje na etapie badań. Dawkowanie i przeciwwskazania tych leków określają ich charakterystyki produktu leczniczego.

3.5. Czynniki wpływające na działanie oreksyny

Na stan układu oreksynowego wpływają czynniki niemodyfikowalne, związane z genotypem i wiekiem, oraz czynniki zależne od pory doby, odżywienia i otoczenia. Najsilniejszym znanym czynnikiem niemodyfikowalnym jest nosicielstwo allelu HLA-DQB1*06:02, szczególnie w dwóch kopiach [35]. Wiek ma znaczenie przy czynnikach wyzwalających, bo zwiększona zapadalność po szczepieniu w Finlandii dotyczyła osób w wieku 4–19 lat [36]. W chińskiej grupie chorych dzieci stanowiły 86% [37].

Obok genotypu działają allele ochronne. W badaniu obejmującym trzy grupy etniczne allele DQB106:01 i DQB105:01 zmniejszały ryzyko narkolepsji z katapleksją [35]. Autorzy uznali, że poza genami układu zgodności tkankowej istnieją też inne, nieznane jeszcze miejsca podatności w genomie [35].

Z czynników zależnych od trybu życia na neurony oreksynowe działają pora doby, głód i skład posiłku oraz bodźce z otoczenia [7, 9, 10]. Ich działanie opisano jednak na zwierzętach i w preparatach tkankowych.

Punkt uchwytu na układzie oreksynowym opisano też dla kilku substancji pochodzenia pokarmowego i roślinnego, wyłącznie w badaniach przedklinicznych. Glicyna podana dootrzewnowo myszom hamowała neurony oreksynowe przez receptory glicynowe na ich błonie i skracała czuwanie w okresie aktywności [42]. W badaniu in vitro hesperydyna i nobiletyna, flawonoidy ze skórki mandarynki, aktywowały OX1R, ale nie OX2R [43]. U starych szczurów pozbawianych snu wyciąg alkoholowy z żeń-szenia wydłużał sen i obniżał stężenie oreksyny w podwzgórzu [44]. Wyniki te nie pochodzą z badań klinicznych i nie pozwalają ocenić działania tych substancji u ludzi.

U ludzi zależności tych nie da się sprawdzić prostym pomiarem, bo stężenie hipokretyny-1 we krwi nie różni się nawet między chorymi z narkolepsją typu 1 a osobami zdrowymi [45]. Wpływ głodu i składu posiłku na układ oreksynowy człowieka jest więc wnioskiem z badań na zwierzętach, a nie wynikiem pomiaru u ludzi. Najlepiej udokumentowanym u człowieka czynnikiem zmieniającym czynność tego układu pozostają leki działające na receptory oreksynowe [39, 41].

4. Uwagi praktyczne

4.1. Jak to zbadać

Oreksyny nie oznacza się w rutynowych badaniach krwi, lecz w płynie mózgowo-rdzeniowym pobranym przez nakłucie lędźwiowe [14, 45]. Oznaczenie dotyczy hipokretyny-1, czyli oreksyny A, a w badaniu, które ustaliło progi diagnostyczne, wszystkie próbki analizowano w jednym ośrodku [14]. W badaniu 274 pacjentów z zaburzeniami snu i 296 osób kontrolnych stężenie poniżej 110 pg/ml okazało się diagnostyczne dla narkolepsji, a wartości powyżej 200 pg/ml uznano za prawidłowe [14]. Wynik podaje się w pikogramach na mililitr (pg/ml).

Wynik pośredni, między 110 a 200 pg/ml, stwierdzano u części chorych z nadmierną sennością oraz w różnych ostrych stanach neurologicznych [14]. Autorzy uznali oznaczenie za rozstrzygające tylko przy interpretacji w kontekście klinicznym [14]. Największą wartość ma ono u chorych z katapleksją oraz wtedy, gdy trudno ocenić wynik testu wielokrotnej latencji snu (ang. multiple sleep latency test, MSLT), czyli badania mierzącego, jak szybko pacjent zasypia w ciągu dnia [14]. Dotyczy to na przykład pacjentów przyjmujących leki psychoaktywne [14].

Niedobór oreksyny w płynie mózgowo-rdzeniowym jest jednym z trzech biomarkerów wspierających rozpoznanie narkolepsji typu 1, obok wczesnych okresów snu REM i obecności allelu HLA-DQB1*06:02 [11]. MSLT i polisomnografia oceniają skutki niedoboru dla snu, a nie samo stężenie oreksyny. Oznaczenie hipokretyny-1 we krwi nie ma wartości diagnostycznej, bo nawet po specjalnym przygotowaniu próbki wyniki chorych z narkolepsją typu 1 nie różniły się od wyników osób zdrowych [45].

4.2. Na co warto zwrócić uwagę

Skuteczność antagonistów receptorów oreksynowych nie dowodzi, że bezsenność wynika z nadmiaru oreksyny. Badania rejestracyjne suworeksantu i daridoreksantu oceniały sen i funkcjonowanie dzienne chorych, a nie stężenie oreksyny [32, 33]. Lek blokujący receptor osłabia sygnał czuwania bez względu na to, czy jest on nadmierny, czy prawidłowy. Poprawa snu po leczeniu nie jest więc informacją o pierwotnym stanie układu oreksynowego chorego.

Związek szczepienia z narkolepsją dotyczy konkretnej sytuacji, a nie szczepień w ogóle. Ryzyko przypisywane szczepionce oszacowano w Finlandii na jeden przypadek na 16 000 zaszczepionych osób w wieku 4–19 lat i dotyczyło jednego preparatu z adiuwantem AS03 [36]. Równoległe dane z Chin wskazują, że samo zakażenie wirusem grypy może wyzwolić chorobę, bo większość chorych nie była szczepiona [37]. Mechanizm łączący grypę z atakiem na neurony hipokretynowe pozostaje niewyjaśniony, a limfocyty autoreaktywne opisane u chorych nie reagowały krzyżowo z antygenami wirusa [34].

Część funkcji oreksyny opisano dotąd tylko w doświadczeniach na zwierzętach. Udział w nawrocie poszukiwania narkotyku wykazano u szczurów [26]. U ludzi z lękiem panicznym stwierdzono jedynie podwyższone stężenie oreksyny w płynie mózgowo-rdzeniowym, które nie rozstrzyga o przyczynie lęku [21]. W termoregulacji dane od chorych z narkolepsją typu 1 nie potwierdziły wyników uzyskanych na gryzoniach [28]. Przenoszenie wyników z modeli zwierzęcych na człowieka wymaga więc ostrożności także przy interpretacji objawów narkolepsji.

Nie jest też rozstrzygnięty sam charakter uszkodzenia neuronów. W jednym badaniu pośmiertnym stwierdzono w okolicy neuronów hipokretynowych glejozę, czyli bliznę glejową świadczącą o procesie niszczącym [16]. W innym, obejmującym sześć mózgów, utracie hipokretyn nie towarzyszyły ani glejoza, ani cechy zapalenia [18]. Obecność autoreaktywnych limfocytów T u chorych przemawia za mechanizmem autoimmunologicznym, ale przebieg niszczenia neuronów nie został bezpośrednio opisany [34].

Agoniści OX2R łagodzą objawy narkolepsji typu 1, ale mają własny profil działań niepożądanych. Częstsze oddawanie moczu i przemijająca bezsenność wystąpiły w badaniach fazy 3 u większości leczonych oveporextonem [41]. Uszkodzenie wątroby opisano natomiast przy TAK-994, a w badaniu fazy 2 oveporextonu nie wystąpiło, co sugeruje, że zależy ono od budowy cząsteczki [22, 40]. Rozpoznanie narkolepsji i wybór leczenia należą do lekarza specjalisty medycyny snu, a oznaczenie oreksyny jest tylko jednym z elementów tej oceny.

Najważniejsze ustalenia - Oreksyna (hipokretyna)

Oreksynę wytwarza u człowieka tylko około 74 300 neuronów bocznego podwzgórza, choć początkowo dla mózgu o tej masie przewidywano około 205 000 takich komórek [19]. W narkolepsji ubywa 85–95% neuronów oreksynowych, a przemieszane z nimi neurony hormonu koncentrującego melaninę, drugiego neuropeptydu bocznego podwzgórza, zachowują prawidłową liczebność [16]. Oreksyna działa przez dwa receptory, ale u psów do wywołania pełnej narkolepsji wystarcza mutacja genu tylko jednego z nich, receptora oreksynowego typu 2 [15]. Myszy pozbawione neuronów oreksynowych…

Dostęp dla subskrybentów
Ta treść jest dostępna po zalogowaniu.
Masz już konto? Zaloguj się
Wykup dostęp

Źródła wyszukane w PubMed (NLM/NCBI). Przy każdej pozycji podano identyfikator PMID i odnośnik DOI.

  1. Sakurai T, Amemiya A, Ishii M, Matsuzaki I, Chemelli RM, Tanaka H, et al. Orexins and orexin receptors: a family of hypothalamic neuropeptides and G protein-coupled receptors that regulate feeding behavior. Cell. 1998;92(4):573-85. DOI · PMID: 9491897
  2. de Lecea L, Kilduff TS, Peyron C, Gao X, Foye PE, Danielson PE, et al. The hypocretins: hypothalamus-specific peptides with neuroexcitatory activity. Proc Natl Acad Sci U S A. 1998;95(1):322-7. DOI · PMID: 9419374
  3. Marcus JN, Aschkenasi CJ, Lee CE, Chemelli RM, Saper CB, Yanagisawa M, et al. Differential expression of orexin receptors 1 and 2 in the rat brain. J Comp Neurol. 2001;435(1):6-25. DOI · PMID: 11370008
  4. Chemelli RM, Willie JT, Sinton CM, Elmquist JK, Scammell T, Lee C, et al. Narcolepsy in orexin knockout mice: molecular genetics of sleep regulation. Cell. 1999;98(4):437-51. DOI · PMID: 10481909
  5. Fronczek R, Schinkelshoek M, Shan L, Lammers GJ. The orexin/hypocretin system in neuropsychiatric disorders: Relation to signs and symptoms. Handb Clin Neurol. 2021;180:343-58. DOI · PMID: 34225940
  6. Kukkonen JP, Leonard CS. Orexin/hypocretin receptor signalling cascades. Br J Pharmacol. 2014;171(2):314-31. DOI · PMID: 23902572
  7. Inutsuka A, Yamanaka A. The physiological role of orexin/hypocretin neurons in the regulation of sleep/wakefulness and neuroendocrine functions. Front Endocrinol (Lausanne). 2013;4:18. DOI · PMID: 23508038
  8. Mieda M. The roles of orexins in sleep/wake regulation. Neurosci Res. 2017;118:56-65. DOI · PMID: 28526554
  9. Yamanaka A, Beuckmann CT, Willie JT, Hara J, Tsujino N, Mieda M, et al. Hypothalamic orexin neurons regulate arousal according to energy balance in mice. Neuron. 2003;38(5):701-13. DOI · PMID: 12797956
  10. Concetti C, Burdakov D. Orexin/Hypocretin and MCH Neurons: Cognitive and Motor Roles Beyond Arousal. Front Neurosci. 2021;15:639313. DOI · PMID: 33828450
  11. Bassetti CLA, Adamantidis A, Burdakov D, Han F, Gay S, Kallweit U, et al. Narcolepsy – clinical spectrum, aetiopathophysiology, diagnosis and treatment. Nat Rev Neurol. 2019;15(9):519-39. DOI · PMID: 31324898
  12. Ten-Blanco M, Flores Á, Cristino L, Pereda-Pérez I, Berrendero F. Targeting the orexin/hypocretin system for the treatment of neuropsychiatric and neurodegenerative diseases: From animal to clinical studies. Front Neuroendocrinol. 2023;69:101066. DOI · PMID: 37015302
  13. Kastin AJ, Akerstrom V. Orexin A but not orexin B rapidly enters brain from blood by simple diffusion. J Pharmacol Exp Ther. 1999;289(1):219-23. PMID: 10087007
  14. Mignot E, Lammers GJ, Ripley B, Okun M, Nevsimalova S, Overeem S, et al. The role of cerebrospinal fluid hypocretin measurement in the diagnosis of narcolepsy and other hypersomnias. Arch Neurol. 2002;59(10):1553-62. DOI · PMID: 12374492
  15. Lin L, Faraco J, Li R, Kadotani H, Rogers W, Lin X, et al. The sleep disorder canine narcolepsy is caused by a mutation in the hypocretin (orexin) receptor 2 gene. Cell. 1999;98(3):365-76. DOI · PMID: 10458611
  16. Thannickal TC, Moore RY, Nienhuis R, Ramanathan L, Gulyani S, Aldrich M, et al. Reduced number of hypocretin neurons in human narcolepsy. Neuron. 2000;27(3):469-74. DOI · PMID: 11055430
  17. Nishino S, Ripley B, Overeem S, Lammers GJ, Mignot E. Hypocretin (orexin) deficiency in human narcolepsy. Lancet. 2000;355(9197):39-40. DOI · PMID: 10615891
  18. Peyron C, Faraco J, Rogers W, Ripley B, Overeem S, Charnay Y, et al. A mutation in a case of early onset narcolepsy and a generalized absence of hypocretin peptides in human narcoleptic brains. Nat Med. 2000;6(9):991-7. DOI · PMID: 10973318
  19. Malungo IB, Ngwenya A, Bertelsen MF, Spocter MA, Thannickal TC, Siegel JM, et al. The Complexly Parcellated, Yet Quantitatively Reduced, Orexinergic/Hypocretinergic System of Humans. J Comp Neurol. 2025;533(2):e70032. DOI · PMID: 40008540
  20. Chou TC, Lee CE, Lu J, Elmquist JK, Hara J, Willie JT, et al. Orexin (hypocretin) neurons contain dynorphin. J Neurosci. 2001;21(19):RC168. DOI · PMID: 11567079
  21. Johnson PL, Truitt W, Fitz SD, Minick PE, Dietrich A, Sanghani S, et al. A key role for orexin in panic anxiety. Nat Med. 2010;16(1):111-5. DOI · PMID: 20037593
  22. Dauvilliers Y, Plazzi G, Mignot E, Lammers GJ, Del Río Villegas R, Khatami R, et al. Oveporexton, an Oral Orexin Receptor 2-Selective Agonist, in Narcolepsy Type 1. N Engl J Med. 2025;392(19):1905-16. DOI · PMID: 40367374
  23. Mohammadkhani A, Mitchell C, James MH, Borgland SL, Dayas CV. Contribution of hypothalamic orexin (hypocretin) circuits to pathologies of motivation. Br J Pharmacol. 2024;181(22):4430-49. DOI · PMID: 39317446
  24. Sakurai T. The neural circuit of orexin (hypocretin): maintaining sleep and wakefulness. Nat Rev Neurosci. 2007;8(3):171-81. DOI · PMID: 17299454
  25. Saper CB, Fuller PM, Pedersen NP, Lu J, Scammell TE. Sleep state switching. Neuron. 2010;68(6):1023-42. DOI · PMID: 21172606
  26. Harris GC, Wimmer M, Aston-Jones G. A role for lateral hypothalamic orexin neurons in reward seeking. Nature. 2005;437(7058):556-9. DOI · PMID: 16100511
  27. Peleg-Raibstein D, Burdakov D. Do orexin/hypocretin neurons signal stress or reward? Peptides. 2021;145:170629. DOI · PMID: 34416308
  28. Enevoldsen LH, Tindborg M, Hovmand NL, Christoffersen C, Ellingsgaard H, Suetta C, et al. Functional brown adipose tissue and sympathetic activity after cold exposure in humans with type 1 narcolepsy. Sleep. 2018;41(8). DOI · PMID: 29771387
  29. Chou TC, Scammell TE, Gooley JJ, Gaus SE, Saper CB, Lu J. Critical role of dorsomedial hypothalamic nucleus in a wide range of behavioral circadian rhythms. J Neurosci. 2003;23(33):10691-702. DOI · PMID: 14627654
  30. Prokofeva K, Saito YC, Niwa Y, Mizuno S, Takahashi S, Hirano A, et al. Structure and Function of Neuronal Circuits Linking Ventrolateral Preoptic Nucleus and Lateral Hypothalamic Area. J Neurosci. 2023;43(22):4075-92. DOI · PMID: 37117013
  31. Mohammadi S, Moosaie F, Saghazadeh A, Mahmoudi M, Rezaei N. Metabolic profile in patients with narcolepsy: a systematic review and meta-analysis. Sleep Med. 2021;81:268-84. DOI · PMID: 33740593
  32. Mignot E, Mayleben D, Fietze I, Leger D, Zammit G, Bassetti CLA, et al. Safety and efficacy of daridorexant in patients with insomnia disorder: results from two multicentre, randomised, double-blind, placebo-controlled, phase 3 trials. Lancet Neurol. 2022;21(2):125-39. DOI · PMID: 35065036
  33. Michelson D, Snyder E, Paradis E, Chengan-Liu M, Snavely DB, Hutzelmann J, et al. Safety and efficacy of suvorexant during 1-year treatment of insomnia with subsequent abrupt treatment discontinuation: a phase 3 randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet Neurol. 2014;13(5):461-71. DOI · PMID: 24680372
  34. Latorre D, Kallweit U, Armentani E, Foglierini M, Mele F, Cassotta A, et al. T cells in patients with narcolepsy target self-antigens of hypocretin neurons. Nature. 2018;562(7725):63-8. DOI · PMID: 30232458
  35. Mignot E, Lin L, Rogers W, Honda Y, Qiu X, Lin X, et al. Complex HLA-DR and -DQ interactions confer risk of narcolepsy-cataplexy in three ethnic groups. Am J Hum Genet. 2001;68(3):686-99. DOI · PMID: 11179016
  36. Nohynek H, Jokinen J, Partinen M, Vaarala O, Kirjavainen T, Sundman J, et al. AS03 adjuvanted AH1N1 vaccine associated with an abrupt increase in the incidence of childhood narcolepsy in Finland. PLoS One. 2012;7(3):e33536. DOI · PMID: 22470453
  37. Han F, Lin L, Warby SC, Faraco J, Li J, Dong SX, et al. Narcolepsy onset is seasonal and increased following the 2009 H1N1 pandemic in China. Ann Neurol. 2011;70(3):410-7. DOI · PMID: 21866560
  38. Yardley J, Kärppä M, Inoue Y, Pinner K, Perdomo C, Ishikawa K, et al. Long-term effectiveness and safety of lemborexant in adults with insomnia disorder: results from a phase 3 randomized clinical trial. Sleep Med. 2021;80:333-42. DOI · PMID: 33636648
  39. De Crescenzo F, D’Alò GL, Ostinelli EG, Ciabattini M, Di Franco V, Watanabe N, et al. Comparative effects of pharmacological interventions for the acute and long-term management of insomnia disorder in adults: a systematic review and network meta-analysis. Lancet. 2022;400(10347):170-84. DOI · PMID: 35843245
  40. Dauvilliers Y, Mignot E, Del Río Villegas R, Du Y, Hanson E, Inoue Y, et al. Oral Orexin Receptor 2 Agonist in Narcolepsy Type 1. N Engl J Med. 2023;389(4):309-21. DOI · PMID: 37494485
  41. Dauvilliers Y, Mignot E, Antczak J, Arnulf I, Barateau L, Buntinx E, et al. Oveporexton for Narcolepsy Type 1 – Results from Two Phase 3 Trials. N Engl J Med. 2026. DOI · PMID: 42714024
  42. Hondo M, Furutani N, Yamasaki M, Watanabe M, Sakurai T. Orexin neurons receive glycinergic innervations. PLoS One. 2011;6(9):e25076. DOI · PMID: 21949857
  43. Ohshima K, Miyano K, Nonaka M, Aiso S, Fukuda M, Furuya S, et al. The Flavonoids and Monoterpenes from Citrus unshiu Peel Contained in Ninjinyoeito Synergistically Activate Orexin 1 Receptor: A Possible Mechanism of the Orexigenic Effects of Ninjinyoeito. Biomolecules. 2025;15(4). DOI · PMID: 40305263
  44. Lin H, Xu Y, Xiong H, Wang L, Shi Y, Wang D, et al. Mechanism of action of Panax ginseng alcohol extract based on orexin-mediated autophagy in the treatment of sleep and cognition in aged sleep-deprived rats. J Ethnopharmacol. 2024;337(Pt 2):118907. DOI · PMID: 39389397
  45. Ægidius HM, Kruse L, Christensen GL, Lorentzen MP, Jørgensen NR, Moresco M, et al. Pre-treatment of blood samples reveal normal blood hypocretin/orexin signal in narcolepsy type 1. Brain Commun. 2021;3(2):fcab050. DOI · PMID: 33977264

Podobne wpisy