Encyklopedia

Jądro nadskrzyżowaniowe (SCN)

Jądro nadskrzyżowaniowe to parzysta grupa neuronów przedniego podwzgórza, leżąca tuż nad skrzyżowaniem nerwów wzrokowych. Komórki tego jądra same odmierzają cykl trwający około doby i codziennie dostrajają go do światła odbieranego przez siatkówkę. Ich sygnał ustala porę snu, wydzielania hormonów i pracy narządów całego organizmu.
Poziom:
Czas czytania:
28 MIN
Ostatnia aktualizacja: 30 września, 2026
Jądro nadskrzyżowaniowe (SCN) — Zegar nadrzędny nad skrzyżowaniem wzrokowym
Udostępnij:
Spis Treści

W skrócie

  • Czym jest jądro nadskrzyżowaniowe?
    Jądro nadskrzyżowaniowe, w skrócie SCN, to para niewielkich skupisk neuronów w podwzgórzu, które działają jako główny zegar biologiczny ssaków i odmierzają rytm trwający około doby.
  • Gdzie znajduje się jądro nadskrzyżowaniowe?
    Jądro nadskrzyżowaniowe leży w przedniej części podwzgórza, po obu stronach komory trzeciej, bezpośrednio nad skrzyżowaniem nerwów wzrokowych, od którego wzięło nazwę.
  • Za co odpowiada jądro nadskrzyżowaniowe?
    Jądro nadskrzyżowaniowe wytwarza rytm okołodobowy, dostraja go do światła i przekazuje porę doby innym ośrodkom mózgu oraz narządom, wyznaczając porę snu oraz rytm kortyzolu i melatoniny.
  • Jak światło wpływa na jądro nadskrzyżowaniowe?
    Światło pobudza w siatkówce komórki zawierające melanopsynę, które przekazują sygnał do jądra nadskrzyżowaniowego. Światło wieczorem opóźnia rytm tego zegara, a światło nad ranem go przyspiesza.
  • Czym różni się jądro nadskrzyżowaniowe od szyszynki?
    Jądro nadskrzyżowaniowe jest zegarem, który odmierza czas, a szyszynka jest gruczołem wydzielającym w nocy melatoninę na sygnał przekazany z tego jądra przez jądro przykomorowe i układ współczulny.
  • Co się dzieje po uszkodzeniu jądra nadskrzyżowaniowego?
    Uszkodzenie jądra nadskrzyżowaniowego, na przykład przez guz okolicy skrzyżowania wzrokowego, zaburza dobowy rozkład snu i czuwania oraz rytm temperatury ciała, a u części chorych także nocne wydzielanie melatoniny.
  • Jak jądro nadskrzyżowaniowe zmienia się z wiekiem?
    Z wiekiem w jądrze nadskrzyżowaniowym ubywa neuronów wytwarzających wazopresynę, a rytmy jego komórek słabną. W chorobie Alzheimera ubytek komórek jest większy i wiąże się ze spłaszczeniem dobowego rytmu aktywności.

1. Charakterystyka

1.1. Definicja i nazewnictwo

Jądro nadskrzyżowaniowe (ang. suprachiasmatic nucleus, SCN) to parzyste jądro przedniej części podwzgórza, które pełni u ssaków rolę głównego zegara okołodobowego [1]. Łacińska nazwa nucleus suprachiasmaticus opisuje położenie jądra nad skrzyżowaniem wzrokowym, czyli miejscem, w którym część włókien nerwów wzrokowych przechodzi na stronę przeciwną. Każde z dwóch jąder, prawe i lewe, liczy około 10 tysięcy neuronów [1]. Mimo tak małej liczby komórek SCN wyznacza dobowe cykle zachowania i fizjologii całego organizmu [1].

W podziale anatomicznym SCN należy do jąder przedniej, nadwzrokowej okolicy podwzgórza. W podziale czynnościowym jest ośrodkiem układu okołodobowego, któremu podporządkowane są zegary komórkowe innych tkanek [2]. Z tego powodu SCN nie jest tożsame z rytmem dobowym ani z zegarem biologicznym rozumianym jako cały układ. Układ ten obejmuje także zegary wątroby, mięśni i tkanki tłuszczowej, a SCN stanowi jego ośrodek nadrzędny [2].

SCN bywa mylone z szyszynką, ponieważ obie struktury wiąże się z nocą i melatoniną. Kryterium różnicujące stanowi kierunek sygnału: szyszynka wydziela melatoninę dopiero wtedy, gdy otrzyma pobudzenie z SCN przekazane drogą wielosynaptyczną [3]. Od jądra przykomorowego podwzgórza SCN różni się zadaniem. Jądro przykomorowe steruje wydzielaniem hormonów i układem autonomicznym, natomiast SCN nadaje tym czynnościom porę doby, wysyłając do niego własne włókna [3, 4].

Pojęcie SCN obejmuje obie połowy jądra wraz z ich neuronami, astrocytami i siecią połączeń wewnętrznych. Nie obejmuje dróg doprowadzających, które zaczynają się w siatkówce i we wzgórzu. Znaczenie SCN wynika z połączenia dwóch cech: jego neurony same generują rytm, a zarazem otrzymują bezpośrednią informację o świetle z siatkówki [1, 5]. Dzięki temu SCN przekłada porę dnia w otoczeniu na sygnał czasu dla narządów, a jego obustronne zniszczenie znosi dobową organizację wielu czynności naraz [6].

1.2. Lokalizacja

SCN leży w przedniej, brzusznej części podwzgórza, po obu stronach dolnego odcinka komory trzeciej [1]. Od dołu każde z jąder przylega do górnej powierzchni skrzyżowania wzrokowego, a od przodu graniczy z okolicą przedwzrokową. Powyżej, przy ścianie komory, leży jądro przykomorowe, do którego SCN wysyła część włókien wyjściowych [3].

Takie położenie skraca drogę włóknom siatkówkowym. Odchodzą one od skrzyżowania i wnikają do jądra od strony brzusznej, gdzie kończą się w strefie odbierającej sygnał z siatkówki [7]. Bliskość skrzyżowania ma także następstwo kliniczne. Guzy okolicy siodła tureckiego, które uciskają skrzyżowanie, mogą jednocześnie zaburzać czynność SCN [8].

U człowieka kształt jądra różni się między płciami. W badaniu sekcyjnym, w którym jądro uwidoczniono barwieniem na wazopresynę, SCN kobiet było wydłużone, a SCN mężczyzn bardziej kuliste [9]. U myszy położenie i organizacja jądra są podobne jak u innych ssaków [10]. Wnioski anatomiczne z badań na gryzoniach przenosi się więc na człowieka stosunkowo pewnie, choć reakcje czynnościowe ludzkiego SCN bywają odmienne [11].

1.3. Budowa komórkowa i podział

SCN zbudowane jest z drobnych, gęsto ułożonych neuronów, między którymi leżą astrocyty [1, 12]. Astrocyty to komórki glejowe, które regulują skład przestrzeni międzykomórkowej wokół neuronów. Niemal wszystkie neurony SCN wytwarzają kwas γ-aminomasłowy (GABA), czyli główny przekaźnik hamujący mózgu [13]. GABA występuje w nich razem z neuropeptydami, a rodzaj tych peptydów różni się między częściami jądra [10].

Na podstawie składu peptydów dzieli się SCN na rdzeń i otoczkę. Rdzeń zajmuje część brzuszną, przylegającą do skrzyżowania wzrokowego. Jego neurony zawierają wazoaktywny peptyd jelitowy (ang. vasoactive intestinal peptide, VIP), który przekazuje sygnał czasu innym komórkom jądra [4, 10]. Część z nich zawiera także peptyd uwalniający gastrynę (ang. gastrin-releasing peptide, GRP), również biorący udział w synchronizacji rytmów komórkowych [10, 14]. Do rdzenia docierają włókna z siatkówki, włókna zawierające neuropeptyd Y oraz włókna serotoninergiczne [10].

Otoczka obejmuje część grzbietową i przyśrodkową jądra. Jej neurony wytwarzają wazopresynę argininową (AVP), czyli peptyd, który w SCN służy jako jeden z sygnałów wyjściowych zegara [10, 15]. U człowieka rozmieszczenie jest podobne. W materiale sekcyjnym neurony z AVP leżą w otoczce, a neurony z VIP w rdzeniu, i obie populacje wykazują dobowe wahania liczby komórek zawierających peptyd [16].

Podział na rdzeń i otoczkę ma sens czynnościowy. Rdzeń jest miejscem wejścia sygnału świetlnego i synchronizacji komórek, a otoczka w większym stopniu wyznacza długość okresu rytmu [4]. Z tego podziału wynika kierunek przepływu informacji w jądrze: od komórek odbierających światło do komórek przekazujących rytm dalej.

1.4. Rozwój i pochodzenie

SCN powstaje z tkanki przyszłego podwzgórza we wczesnym okresie życia płodowego [17]. Zegar płodu działa jeszcze przed urodzeniem, choć nie odbiera światła. Jego rytm podąża wtedy za sygnałami niezwiązanymi ze światłem, które przekazuje organizm matki [17, 18].

Po porodzie głównym sygnałem ustawiającym zegar staje się cykl światła i ciemności [17]. Dojrzewanie jądra trwa jednak długo po urodzeniu. U człowieka populacje neuronów z AVP i VIP rozwijają się w dużej części dopiero po narodzinach [19]. Właściwości sieci SCN, w tym sposób sprzężenia komórek, zmieniają się także między kolejnymi okresami rozwoju [14]. Wcześniak traci przy tym rytmiczne sygnały od matki, bo zostaje przeniesiony z macicy do stałych warunków oddziału intensywnej terapii [17]. Noworodek ma więc działający oscylator, ale niedojrzały układ jego sygnałów wyjściowych.

1.5. Rys historyczny

Do początku lat siedemdziesiątych ubiegłego wieku nie wiedziano, która struktura mózgu ssaków generuje rytmy okołodobowe [14]. W 1972 roku dwie niezależne grupy opisały skutki zniszczenia SCN u szczura. Moore i Eichler stwierdzili utratę dobowego rytmu kortykosteronu nadnerczowego [20]. Stephan i Zucker opisali, że obustronne uszkodzenie SCN trwale znosi dobowy rytm picia i aktywności ruchowej, podczas gdy uszkodzenie sąsiedniej okolicy przedwzrokowej rytmu nie zmienia [6].

Uszkodzenie wskazywało miejsce, ale nie rozstrzygało, czy SCN wytwarza rytm, czy tylko go przekazuje. Rozstrzygnięcie przyniosło w 1990 roku doświadczenie Ralpha i współpracowników z przeszczepem SCN u chomików z mutacją skracającą okres rytmu [21]. Przeszczep przywracał rytm zwierzętom z usuniętym własnym jądrem, a przywrócony rytm zawsze miał okres dawcy [21].

Pozostawało pytanie, czy rytm powstaje w sieci neuronów, czy w pojedynczych komórkach. W 1995 roku Welsh i współpracownicy zarejestrowali wyładowania pojedynczych neuronów SCN szczura w hodowli. Rytmiczne neurony miały własne rytmy okołodobowe o fazach niezależnych od sąsiadów [22]. Od tego czasu SCN opisuje się jako zespół autonomicznych oscylatorów komórkowych, które sieć zespala w jeden sygnał [1].

2. Mechanizm działania

2.1. Połączenia wejściowe

SCN otrzymuje trzy główne rodzaje wejść: bezpośrednie z siatkówki, pośrednie ze wzgórza i serotoninergiczne z pnia mózgu [4]. Dociera do niego także informacja z innych okolic podwzgórza [4].

Najważniejszym wejściem jest droga siatkówkowo-podwzgórzowa, czyli pęczek włókien, który odgałęzia się od nerwu wzrokowego w skrzyżowaniu i kończy w brzusznej części SCN [7]. Tworzą ją aksony nielicznej grupy komórek zwojowych siatkówki, które zawierają barwnik melanopsynę i reagują na światło same, bez pośrednictwa czopków i pręcików [5]. Komórki te nazywa się komórkami zwojowymi siatkówki wewnętrznie światłoczułymi (ang. intrinsically photosensitive retinal ganglion cells, ipRGC), a ich rolą jest przekazywanie do zegara informacji o natężeniu światła [5]. W doświadczeniach na myszach synchronizacja rytmu ze światłem zachodziła nawet po utracie pręcików i czopków [5].

Zakończenia ipRGC uwalniają w SCN dwa przekaźniki [7]. Pierwszym jest glutaminian, a drugim przysadkowy peptyd aktywujący cyklazę adenylanową (ang. pituitary adenylate cyclase-activating polypeptide, PACAP), który moduluje odpowiedź neuronów na glutaminian [7]. Glutaminian podany do SCN w nocy przesuwa fazę rytmu podobnie jak światło. Zablokowanie receptorów glutaminianu znosi natomiast przesunięcia wywołane przez światło [7].

Drugie wejście pochodzi z listka międzykolankowego, położonego w obrębie ciała kolankowatego bocznego wzgórza. Jego neurony wysyłające włókna do SCN zawierają GABA oraz neuropeptyd Y, peptyd uwalniany tu razem z GABA jako współprzekaźnik [13]. Trzecie wejście tworzą włókna serotoninergiczne z jąder szwu, które kończą się w rdzeniu SCN [4, 10]. Światło ma zatem do SCN drogę jednosynaptyczną, a pozostałe sygnały docierają przez stacje pośrednie we wzgórzu i w pniu mózgu [4, 7].

Jądro nadskrzyżowaniowe (SCN) — Wejście świetlne — droga siatkówkowo-podwzgórzowa
Wejście świetlne — droga siatkówkowo-podwzgórzowa
Światło dociera do zegara dobowego osobną drogą siatkówkowo-podwzgórzową, niezależną od widzenia. Osoba niewidoma może mieć zachowaną synchronizację tego zegara.

2.2. Połączenia wyjściowe

Włókna wyjściowe SCN są krótkie i kończą się głównie w przyśrodkowym podwzgórzu, od okolicy przedwzrokowej do podwzgórza tylnego [10]. Główne ich cele to strefa podprzykomorowa, jądro przykomorowe podwzgórza i okolica przedwzrokowa [4]. Poza podwzgórzem włókna SCN docierają do jądra przykomorowego wzgórza i do przegrody bocznej [10].

Ważnym przekaźnikiem pośrednim jest jądro grzbietowo-przyśrodkowe podwzgórza, które otrzymuje sygnał z SCN bezpośrednio oraz przez strefę podprzykomorową [23]. Jądro to wysyła włókna GABA-ergiczne do jądra przedwzrokowego brzuszno-bocznego, sprzyjającego zasypianiu. Do podwzgórza bocznego, w tym do neuronów oreksynowych podtrzymujących czuwanie, kieruje natomiast włókna glutaminianergiczne [23].

Najlepiej poznaną drogą wyjściową jest droga do szyszynki. SCN przekazuje sygnał do jądra przykomorowego podwzgórza, skąd włókna schodzą do słupa pośrednio-bocznego piersiowej części rdzenia kręgowego [3]. Następnie włókna przedzwojowe układu współczulnego biegną do zwoju szyjnego górnego, a jego włókna zazwojowe docierają do szyszynki [3]. Neurony tego zwoju uwalniają w szyszynce noradrenalinę, która pobudza syntezę melatoniny [24]. SCN wywiera na tę drogę wpływ zarówno hamujący, jak i pobudzający. Dlatego po jego zniszczeniu u szczurów wytwarzanie melatoniny traci różnicę dnia i nocy i utrzymuje się na niskim, stałym poziomie [24].

Poza połączeniami nerwowymi SCN wysyła sygnały dyfuzyjne. Przeszczep SCN zamknięty w półprzepuszczalnej kapsule, która uniemożliwiała wyrastanie aksonów, przywracał chomikom z usuniętym jądrem rytm aktywności ruchowej [25]. Część takich sygnałów może docierać do narządów okołokomorowych przez lokalne połączenia naczyniowe [26]. Jednym z przekaźników wyjściowych jest AVP, która u gryzoni zapowiada zbliżanie się fazy spoczynku i obniża wydzielanie kortykosteronu [15]. Wyjścia SCN są więc nieliczne i krótkie, a zasięg ogólnoustrojowy zegar uzyskuje dzięki stacjom pośrednim w podwzgórzu i w układzie autonomicznym [2].

2.3. Działanie neuroprzekaźników

Neurochemia SCN łączy jeden przekaźnik wspólny dla prawie wszystkich neuronów z kilkoma neuropeptydami, które różnicują populacje komórek [13, 14]. GABA jest przekaźnikiem wszystkich lub prawie wszystkich neuronów jądra [13]. Większość połączeń wewnątrz SCN ma zatem charakter GABA-ergiczny, a o odrębności populacji decydują peptydy.

VIP działa jak sygnał synchronizujący. U myszy pozbawionych VIP albo jego receptora rytm wyładowań zanikał w około połowie neuronów SCN, a neurony nadal rytmiczne traciły zgodność fazy [27]. Codzienne podawanie substancji pobudzającej receptor VIP przywracało rytmiczność i synchronię neuronom pozbawionym samego peptydu [27]. AVP wpływa na długość okresu zegara, a GRP, podobnie jak VIP i AVP, należy do peptydów synchronizujących rytmy komórkowe [4, 14]. Stężenie glutaminianu i GABA w przestrzeni międzykomórkowej SCN regulują także astrocyty, zgodnie z rytmem własnego zegara [12].

Pięć przekaźników SCN różni się położeniem i rolą w pracy zegara.

Przekaźnik Główne położenie w SCN Rola w pracy zegara
GABA niemal wszystkie neurony połączenia wewnętrzne i wyjścia
VIP rdzeń synchronizacja neuronów, utrzymanie ich rytmiczności
GRP rdzeń synchronizacja rytmów komórkowych
AVP otoczka wpływ na długość okresu, sygnał wyjściowy
glutaminian zakończenia z siatkówki, astrocyty przekazanie sygnału świetlnego, regulacja aktywności neuronów

Wspólny przekaźnik, GABA, nadaje wyjściom SCN jednolity charakter. Peptydy decydują natomiast o tym, które komórki synchronizują sieć, a które wyznaczają okres rytmu.

2.4. Funkcje jądra nadskrzyżowaniowego

SCN wykonuje pięć zadań: generuje rytm, dostraja go do światła, przekazuje porę doby tkankom obwodowym, ustala porę snu i czuwania oraz odmierza długość dnia w ciągu roku [1, 2, 28]. Wszystkie wynikają z połączenia oscylatora komórkowego z wejściem świetlnym i siecią wyjściową.

2.4.1. Generowanie rytmu okołodobowego

SCN określa się jako tak zwany zegar nadrzędny (ang. master clock), czyli oscylator, który utrzymuje rytm bez sygnałów z otoczenia i nadaje fazę pozostałym zegarom organizmu [1]. Wyizolowane SCN zachowuje rytm w hodowli tkankowej przez czas nieograniczony [1].

Rytm powstaje w pojedynczych komórkach dzięki pętli sprzężenia zwrotnego między genami a białkami. Białka CLOCK i BMAL1 łączą się w czynnik transkrypcyjny, który uruchamia geny Per i Cry [29]. Powstałe z nich białka PER i CRY gromadzą się w cytoplazmie, wracają do jądra komórkowego i hamują czynnik, który je wytworzył [29]. Po rozkładzie PER i CRY hamowanie ustępuje, a cykl zaczyna się od nowa w ciągu około doby. Za opisanie molekularnego mechanizmu tej pętli Hall, Rosbash i Young otrzymali Nagrodę Nobla w dziedzinie fizjologii lub medycyny za 2017 rok [30].

Pojedynczy neuron SCN jest jednak oscylatorem nieprecyzyjnym. U myszy z wyłączonym genem Per1 albo Cry1 rozdzielone neurony SCN traciły trwały rytm [31]. Te same neurony połączone w skrawku jądra zachowywały rytmiczność, podobnie jak zachowanie zwierząt [31]. Sprzężenie komórek w sieci chroni więc zegar przed zaburzeniami genetycznymi i synchronizuje fazy oscylatorów komórkowych [31].

Częścią zegara są także astrocyty. U myszy, u których działał wyłącznie zegar astrocytów SCN, jądro podtrzymywało oscylacje molekularne, a zwierzęta zachowywały rytm aktywności [32]. Astrocyty przywracały rytm neuronom za pomocą sygnałów glutaminianowych [32]. Przez dziesięciolecia SCN traktowano jako zegar wyłącznie neuronalny, a to przekonanie zmieniło odkrycie roli astrocytów [1]. Rytm SCN jest zatem własnością trzech poziomów naraz: pętli genowej w komórce, sprzężenia neuronów w sieci i współpracy neuronów z astrocytami [1, 12].

Jądro nadskrzyżowaniowe (SCN) — Pętla molekularna — synteza, hamowanie, rozkład
Pętla molekularna — synteza, hamowanie, rozkład
Biologicznym fundamentem zegara molekularnego jest pętla sprzężenia zwrotnego. Wyprodukowane białka stopniowo blokują aktywność własnych genów, a cały ten proces automatycznie resetuje się i powtarza co około 24 godziny.
2.4.2. Synchronizacja zegara dobowego ze światłem

Codzienna korekta zegara jest potrzebna, ponieważ jego własny okres u człowieka odbiega od 24 godzin, co ujawnia się u osób niewidomych bez percepcji światła [33]. Rolę korektora pełni światło, które SCN odbiera przez ipRGC.

Światło padające na siatkówkę pobudza ipRGC, a ich zakończenia uwalniają w rdzeniu SCN glutaminian i PACAP [7]. W neuronach rdzenia sygnał ten uruchamia w nocy ekspresję genów Per1 i Per2, czyli elementów pętli zegarowej [7]. Wzrost ilości białka PER przestawia fazę oscylatora w tych komórkach. Neurony rdzenia przekazują następnie zmianę fazy pozostałym komórkom jądra, w czym udział ma VIP [4].

Kierunek przesunięcia zależy od pory ekspozycji i opisuje go krzywa odpowiedzi fazowej. Światło wieczorem i w pierwszej połowie nocy opóźnia rytm, a światło nad ranem go przyspiesza [34, 35]. W badaniu z krótką ekspozycją na jasne białe światło różnica między największym opóźnieniem a największym przyspieszeniem wyniosła 2,2 godziny [34]. Przy świetle przyćmionym, poniżej 3 luksów, krzywej nie stwierdzono [34]. Zegar człowieka, którego okres odbiega od doby, wraca w ten sposób codziennie do zgodności z cyklem światła i ciemności.

Oferta NeuroExpert
NeuroExpert · bez reklam
Masz dość reklam?
Wyłącz banery, przerywniki i dolną belkę. Subskrypcja daje także pełny dostęp do bazy wiedzy NeuroExpert oraz treści premium.
Bez reklam
Pełny dostęp
Treści premium
Wyłącz reklamy
2.4.3. Synchronizacja zegarów obwodowych

Zegary komórkowe działają w niemal wszystkich tkankach, a SCN ustala ich wspólną fazę [12]. Zegary te pracują także poza kontrolą SCN. U zwierząt z usuniętym jądrem ujawniają się oscylatory związane z przemianą materii, na przykład przy ograniczeniu pory karmienia [36].

SCN wyrównuje fazy tkanek trzema drogami [2]. Droga nerwowa biegnie przez układ autonomiczny, a droga hormonalna przez dobowe rytmy kortyzolu i melatoniny. Droga behawioralna działa przez porę jedzenia, snu i aktywności, które SCN również porządkuje w czasie [2]. W ten sposób narządy otrzymują informację o porze doby, choć same nie odbierają światła.

Zegary obwodowe mogą jednak odejść od fazy SCN, gdy sygnały lokalne nie zgadzają się z sygnałem centralnym [36]. U ludzi rytmy lipidów i białek wątrobowych przesuwały się pod wpływem światła i posiłków według krzywej odpowiedzi fazowej innej niż krzywa melatoniny [37]. Faza tkanek jest więc wypadkową sygnału z SCN i sygnałów lokalnych, a ich rozbieżność określa się jako desynchronizację wewnętrzną [36].

Jądro nadskrzyżowaniowe (SCN) — Zegary obwodowe i ich rozsynchronizowanie
Zegary obwodowe i ich rozsynchronizowanie
Zegary obwodowe w wątrobie, mięśniach i jelitach mają własne regulatory – reagują przede wszystkim na pory posiłków. Stąd łatwo o ich rozejście się z zegarem centralnym w mózgu.
2.4.4. Kontrola pory snu i czuwania

SCN nie wywołuje snu bezpośrednio, lecz ustala porę, w której sen jest najbardziej prawdopodobny. W modelu dwuprocesowym regulacji snu składnik okołodobowy, nazywany procesem C, pochodzi z SCN i współdziała z narastającą w czasie czuwania potrzebą snu, czyli procesem S [36]. Zapisy aktywności elektrycznej SCN wskazują, że oba procesy oddziałują na siebie w sposób ciągły [36].

Ważną stacją przekazującą sygnał SCN do ośrodków snu i czuwania jest jądro grzbietowo-przyśrodkowe podwzgórza [23]. U szczurów zniszczenie tego jądra zmniejszało dobowe rytmy czuwania, jedzenia, aktywności ruchowej i kortykosteroidów o 78–89% [23]. Obniżała się przy tym także całkowita dobowa ilość tych czynności [23]. U szczurów rytm snu i czuwania wymaga więc zarówno sprawnego zegara, jak i nienaruszonej stacji przekazującej jego sygnał.

2.4.5. Odmierzanie długości dnia

SCN rejestruje nie tylko porę świtu i zmierzchu, lecz także długość dnia, co pozwala zwierzętom przygotować się do zmian sezonowych [28]. Hipoteza podwójnego oscylatora, sformułowana przez Pittendrigha, zakłada, że zegar składa się z dwóch sprzężonych oscylatorów [28]. Jeden z nich śledzi świt, a drugi zmierzch, więc odstęp między ich fazami koduje długość dnia [28].

Połączenie hamującego i pobudzającego wpływu SCN na syntezę melatoniny może pozwalać na dopasowanie jej nocnego wydzielania do długości nocy [24]. U człowieka liczba neuronów SCN zawierających wazopresynę zmienia się nie tylko w cyklu dobowym, ale także w cyklu rocznym [19]. Hipoteza zakłada, że te roczne wahania wiążą się z rocznymi zmianami nastroju i snu u ludzi [19].

3. Uszkodzenie i patologia

3.1. Skutki uszkodzenia jądra nadskrzyżowaniowego

Opisane u człowieka uszkodzenia SCN dotyczą głównie chorych z guzami okolicy siodła tureckiego i skrzyżowania wzrokowego, takimi jak czaszkogardlak i gruczolak przysadki [8, 38]. Obraz zaburzeń odpowiada skutkom doświadczalnego zniszczenia jądra u zwierząt [6].

Opis przypadku z 1991 roku dotyczył chorej z ograniczonym uszkodzeniem przedniego podwzgórza. Zaburzeniu uległ u niej dobowy rozkład snu i czuwania, rytm temperatury ciała oraz funkcje poznawcze [39]. W przeglądzie systematycznym 32 prac o dzieciach z czaszkogardlakiem opisywano rozregulowanie rytmu snu i czuwania. Wśród jego mechanizmów wymieniano uszkodzenie SCN i niskie stężenie melatoniny [38]. Częstości tych zaburzeń nie udało się ustalić z powodu braku danych [38].

W badaniu 17 chorych po operacji gruczolaka przysadki, który uciskał skrzyżowanie wzrokowe, wydzielanie melatoniny było często nieprawidłowe [8]. U 12 z nich co najmniej jeden nocny parametr rytmu dobowego odbiegał od normy [8]. Różnica w wydzielaniu melatoniny względem grupy kontrolnej nie osiągnęła jednak istotności statystycznej [8]. Podobne wzorce zaburzeń stwierdzono u chorych leczonych z powodu czaszkogardlaka [8]. Ogniskowe uszkodzenie okolicy SCN u człowieka wiąże się więc z rozchwianiem pory snu i rytmu temperatury ciała, a u części chorych także z nieprawidłowym wydzielaniem melatoniny.

3.2. Udział jądra nadskrzyżowaniowego w chorobach

W chorobie Alzheimera objętość SCN i liczba jego komórek są wyraźnie zmniejszone. Sąsiednie jądra przykomorowe i nadwzrokowe zachowują natomiast liczbę komórek [40]. W badaniu sekcyjnym chorych z ciężkim otępieniem w przebiegu choroby Alzheimera liczba neuronów z wazopresyną w grzbietowej części SCN była mniejsza niż w grupie kontrolnej, wynosząc 9,75 wobec 16,7 w polu pomiarowym [41]. Rósł przy tym stosunek astrocytów do neuronów [41]. Zmiany neuronalne i glejowe w SCN opisano także w innych tauopatiach [42].

Ubytek komórek ma odbicie w zachowaniu. Amplituda dobowego rytmu aktywności ruchowej, mierzona za życia, korelowała z liczbą neuronów VIP w SCN zarówno u chorych z chorobą Alzheimera, jak i u osób bez otępienia [43]. Choroba Alzheimera wiązała się ponadto z opóźnieniem fazy rytmu [43]. Z zaburzeniami rytmu łączy się tak zwane zjawisko zachodu słońca (ang. sundowning), czyli wieczorne nasilenie niepokoju i dezorientacji u chorych z otępieniem [44]. Jego częstość w różnych badaniach wynosi od 1,6% do 66%, a mechanizm obejmuje neurodegenerację, zaburzenia snu, rytmu okołodobowego i nastroju [44].

Drugą grupę stanowią zaburzenia rytmu okołodobowego snu i czuwania, w których zegar traci zgodność z dobą. Ich najwyraźniejszy przykład dotyczy osób niewidomych bez percepcji światła. W badaniu 49 osób niewidomych rytm melatoniny był swobodnie biegnący, czyli przesuwający się każdego dnia względem doby, u 17 z 30 osób bez percepcji światła [33]. Okres tego rytmu wynosił od 24,13 do 24,79 godziny, podczas gdy 14 z 19 osób zachowujących percepcję światła miało rytm prawidłowo zsynchronizowany [33].

U większości osób całkowicie niewidomych występuje zaburzenie rytmu snu i czuwania innego niż 24-godzinny [45]. W pierwszym z dwóch badań z randomizacją tazymelteon, agonista obu receptorów melatoninowych, zsynchronizował rytm po miesiącu u 20% chorych wobec 3% w grupie placebo [45]. W drugim utrzymanie efektu wymagało kontynuacji leczenia [45]. Choroby dotykające SCN albo jego wejścia świetlnego mają więc wspólny skutek: zegar traci amplitudę lub zgodność z dobą, a objawy przenoszą się na sen, zachowanie i wydzielanie hormonów.

3.3. Badanie funkcjonowania jądra nadskrzyżowaniowego

Czynność SCN u człowieka ocenia się pośrednio, przez rytmy, którymi jądro steruje [46]. Bezpośrednie obrazowanie tak małej struktury wymaga czynnościowego rezonansu magnetycznego o bardzo wysokiej rozdzielczości przestrzennej i pozostaje metodą badawczą [11]. W takim badaniu ludzkie SCN odpowiadało na światło spadkiem sygnału, czyli zmniejszeniem aktywności, odwrotnie niż u gryzoni nocnych [11].

Najdokładniejszym markerem fazy zegara jest początek wydzielania melatoniny w przyćmionym świetle (ang. dim light melatonin onset, DLMO), czyli pora, o której stężenie melatoniny w ślinie lub osoczu zaczyna wieczorem rosnąć [46]. Pomiar wykonuje się w przyćmionym świetle, ponieważ światło hamuje wydzielanie melatoniny [47]. DLMO pozwala odróżnić rytm zsynchronizowany z dobą od swobodnie biegnącego i ocenić przesunięcie fazy [46]. Zamiennie oznacza się rytm wydalania z moczem 6-sulfatoksymelatoniny, głównego metabolitu melatoniny [33, 46].

Aktygrafia, czyli ciągły zapis ruchów ciała czujnikiem noszonym na nadgarstku, rejestruje rytm aktywności i odpoczynku [43]. Każdy z tych pomiarów opisuje wyjście zegara, a nie samo jądro. Nieprawidłowy wynik może więc wynikać także z zaburzeń wejścia świetlnego, czynności szyszynki albo trybu życia.

3.4. Czynniki wpływające na stan jądra nadskrzyżowaniowego

Stan SCN zmienia się pod wpływem czynników niemodyfikowalnych, takich jak wiek, oraz sygnałów z otoczenia, które przesuwają fazę zegara. Wiek zmienia budowę i sprawność sieci jądra, a sygnały z otoczenia przesuwają porę jego rytmu.

Z wiekiem dobowe wahania liczby neuronów z wazopresyną w ludzkim SCN słabną po 50. roku życia, a liczba tych neuronów maleje po 80. roku życia [19]. U starzejących się myszy neurony SCN tracą zgodność fazy, część z nich osiąga szczyt aktywności w przeciwfazie, a rytm całego jądra ma mniejszą amplitudę [48]. U człowieka zmianom w SCN towarzyszy ponadto mniejszy dopływ sygnału świetlnego do zegara [49].

Jasne światło jest podstawowym sygnałem synchronizującym zegar okołodobowy [50]. W badaniu 116 zdrowych osób oświetlenie pokojowe przed snem opóźniało początek wydzielania melatoniny u 99% badanych i skracało czas jej wydzielania o około 90 minut [47]. Pora posiłków działa inaczej. Opóźnienie posiłków o 5 godzin przesunęło rytm glukozy w osoczu o około 5,7 godziny, ale nie zmieniło rytmu melatoniny i kortyzolu, czyli markerów fazy SCN [51].

Wysiłek fizyczny przesuwa fazę rytmu melatoniny zależnie od pory. W badaniu 99 osób wysiłek rano i wczesnym popołudniem przyspieszał rytm, a wieczorem go opóźniał [50]. Wielkość tych przesunięć była porównywalna z oczekiwaną dla jasnego światła o tym samym czasie trwania [50]. Melatonina podana z zewnątrz działa na zegar według własnej krzywej odpowiedzi fazowej. Po południu, kilka godzin przed wieczornym wzrostem własnej melatoniny, przyspiesza rytm, a rano po przebudzeniu go opóźnia [52]. W pierwszej połowie nocy prawie nie przesuwa fazy [52]. Zmiany strukturalne SCN opisano dotąd w związku z wiekiem i chorobami neurodegeneracyjnymi [42, 49].

4. Na co warto zwrócić uwagę

Szyszynka i melatonina nie są zegarem organizmu. Z budowy drogi wyjściowej SCN wynika, że rytm melatoniny odzwierciedla fazę zegara, ale jej nie tworzy [3, 24]. Melatonina wpływa zwrotnie na SCN tylko w określonych porach doby, więc pełni rolę sygnału korygującego, a nie źródła rytmu [52]. Z tego samego powodu pomiar melatoniny służy do oceny fazy zegara, a nie do oceny szyszynki jako narządu.

Przekonanie, że na zegar działa wyłącznie światło niebieskie, jest uproszczeniem. W badaniu czynnościowym rezonansem magnetycznym aktywność ludzkiego SCN zmieniało światło niebieskie, zielone i pomarańczowe [11]. Większą wrażliwość na fale krótkie potwierdza natomiast badanie, w którym światło niebieskie o natężeniu około 11 luksów przesuwało fazę rytmu z siłą około 75% efektu światła białego o natężeniu 10 tysięcy luksów [35]. Dla zegara liczy się więc barwa, a także natężenie i pora ekspozycji, bo zwykłe oświetlenie pokojowe wieczorem przesuwa wydzielanie melatoniny także bez udziału ekranów [47].

Zaburzenia rytmu w chorobie Alzheimera nie wynikają wyłącznie z ubytku neuronów SCN. Przegląd badań sekcyjnych wskazuje na ograniczony zanik jądra u części chorych [53]. Doświadczenia z przeszczepami płodowego SCN pokazały ponadto, że wiele funkcji zegara utrzymuje się nawet przy szczątkowej tkance SCN [53]. W grę wchodzą także słabszy dopływ światła do zegara oraz zaburzenia snu i nastroju [44, 49]. Melatonina w przeglądzie systematycznym badań z randomizacją nie poprawiała głównych parametrów snu u chorych z chorobą Alzheimera, przy niskiej pewności danych [54]. W tym samym przeglądzie antagoniści receptorów oreksynowych, blokujący sygnał podtrzymujący czuwanie, z umiarkowaną pewnością wydłużali całkowity czas snu nocnego [54].

Dane o sprzężeniu neuronów, roli VIP i zegarze astrocytów pochodzą z badań na myszach i szczurach [27, 31, 32]. U człowieka SCN bada się głównie w materiale sekcyjnym i przez markery pośrednie [16, 46]. Gryzonie laboratoryjne są zwierzętami nocnymi, więc wnioski o reakcji ich zegara na światło nie przenoszą się na człowieka wprost [11]. Treść ma charakter edukacyjny, a utrwalone przesunięcie pory snu lub rozchwianie rytmu dobowego jest wskazaniem do konsultacji lekarskiej.

Najważniejsze ustalenia - Jądro nadskrzyżowaniowe (SCN)

Pojedynczy neuron jądra nadskrzyżowaniowego, oddzielony od sieci i hodowany osobno, utrzymuje własny rytm wyładowań bliski dobie, więc zegar działa już na poziomie pojedynczej komórki [22]. Przeszczep jądra nadskrzyżowaniowego od chomika z mutacją skracającą okres rytmu dobowego narzucał zwierzęciu biorcy rytm dawcy, niezależnie od genotypu [21]. W chorobie Alzheimera jądro nadskrzyżowaniowe traci objętość i komórki, podczas gdy leżące obok jądra przykomorowe i nadwzrokowe zachowują liczbę komórek [40]. Opóźnienie posiłków o 5 godzin przesunęło w badaniach rytm…

Dostęp dla subskrybentów
Ta treść jest dostępna po zalogowaniu.
Masz już konto? Zaloguj się
Wykup dostęp

Źródła wyszukane w PubMed (NLM/NCBI). Przy każdej pozycji podano identyfikator PMID i odnośnik DOI.

  1. Hastings MH, Maywood ES, Brancaccio M. Generation of circadian rhythms in the suprachiasmatic nucleus. Nat Rev Neurosci. 2018;19(8):453-469. DOI · PMID: 29934559
  2. Gu Y, Vidal-Puig A, Xu Y. The suprachiasmatic nucleus: a central pacemaker for temporal coordination of energy metabolic homeostasis. Rev Endocr Metab Disord. 2026;27(3):407-419. DOI · PMID: 41979826
  3. Moore RY. Neural control of the pineal gland. Behav Brain Res. 1996;73(1-2):125-130. DOI · PMID: 8788489
  4. Tsuno Y, Mieda M. Circadian rhythm mechanism in the suprachiasmatic nucleus and its relation to the olfactory system. Front Neural Circuits. 2024;18:1385908. DOI · PMID: 38590628
  5. Hattar S, Liao HW, Takao M, Berson DM, Yau KW. Melanopsin-containing retinal ganglion cells: architecture, projections, and intrinsic photosensitivity. Science. 2002;295(5557):1065-1070. DOI · PMID: 11834834
  6. Stephan FK, Zucker I. Circadian rhythms in drinking behavior and locomotor activity of rats are eliminated by hypothalamic lesions. Proc Natl Acad Sci U S A. 1972;69(6):1583-1586. DOI · PMID: 4556464
  7. Hannibal J. Neurotransmitters of the retino-hypothalamic tract. Cell Tissue Res. 2002;309(1):73-88. DOI · PMID: 12111538
  8. Joustra SD, Thijs RD, van den Berg R, van Dijk M, Pereira AM, Lammers GJ, et al. Alterations in diurnal rhythmicity in patients treated for nonfunctioning pituitary macroadenoma: a controlled study and literature review. Eur J Endocrinol. 2014;171(2):217-228. DOI · PMID: 24826835
  9. Swaab DF, Fliers E, Partiman TS. The suprachiasmatic nucleus of the human brain in relation to sex, age and senile dementia. Brain Res. 1985;342(1):37-44. DOI · PMID: 4041816
  10. Abrahamson EE, Moore RY. Suprachiasmatic nucleus in the mouse: retinal innervation, intrinsic organization and efferent projections. Brain Res. 2001;916(1-2):172-191. DOI · PMID: 11597605
  11. Schoonderwoerd RA, de Rover M, Janse JAM, Hirschler L, Willemse CR, Scholten L, et al. The photobiology of the human circadian clock. Proc Natl Acad Sci U S A. 2022;119(13):e2118803119. DOI · PMID: 35312355
  12. Smyllie NJ, Hastings MH, Patton AP. Neuron-astrocyte interactions and circadian timekeeping in mammals. Neuroscientist. 2025;31(1):65-79. DOI · PMID: 38602223
  13. Moore RY, Speh JC. GABA is the principal neurotransmitter of the circadian system. Neurosci Lett. 1993;150(1):112-116. DOI · PMID: 8097023
  14. Ono D, Weaver DR, Hastings MH, Honma KI, Honma S, Silver R. The suprachiasmatic nucleus at 50: looking back, then looking forward. J Biol Rhythms. 2024;39(2):135-165. DOI · PMID: 38366616
  15. Buijs RM, Hurtado-Alvarado G, Soto-Tinoco E. Vasopressin: an output signal from the suprachiasmatic nucleus to prepare physiology and behaviour for the resting phase. J Neuroendocrinol. 2021;33(7):e12998. DOI · PMID: 34189788
  16. Hofman MA. Circadian oscillations of neuropeptide expression in the human biological clock. J Comp Physiol A Neuroethol Sens Neural Behav Physiol. 2003;189(11):823-831. DOI · PMID: 13680134
  17. Serón-Ferré M, Torres-Farfán C, Forcelledo ML, Valenzuela GJ. The development of circadian rhythms in the fetus and neonate. Semin Perinatol. 2001;25(6):363-370. DOI · PMID: 11778907
  18. Christ E, Korf HW, von Gall C. When does it start ticking? Ontogenetic development of the mammalian circadian system. Prog Brain Res. 2012;199:105-118. DOI · PMID: 22877661
  19. Swaab DF, Van Someren EJ, Zhou JN, Hofman MA. Biological rhythms in the human life cycle and their relationship to functional changes in the suprachiasmatic nucleus. Prog Brain Res. 1996;111:349-368. DOI · PMID: 8990925
  20. Moore RY, Eichler VB. Loss of a circadian adrenal corticosterone rhythm following suprachiasmatic lesions in the rat. Brain Res. 1972;42(1):201-206. DOI · PMID: 5047187
  21. Ralph MR, Foster RG, Davis FC, Menaker M. Transplanted suprachiasmatic nucleus determines circadian period. Science. 1990;247(4945):975-978. DOI · PMID: 2305266
  22. Welsh DK, Logothetis DE, Meister M, Reppert SM. Individual neurons dissociated from rat suprachiasmatic nucleus express independently phased circadian firing rhythms. Neuron. 1995;14(4):697-706. DOI · PMID: 7718233
  23. Chou TC, Scammell TE, Gooley JJ, Gaus SE, Saper CB, Lu J. Critical role of dorsomedial hypothalamic nucleus in a wide range of behavioral circadian rhythms. J Neurosci. 2003;23(33):10691-10702. DOI · PMID: 14627654
  24. Perreau-Lenz S, Kalsbeek A, Garidou ML, Wortel J, van der Vliet J, van Heijningen C, et al. Suprachiasmatic control of melatonin synthesis in rats: inhibitory and stimulatory mechanisms. Eur J Neurosci. 2003;17(2):221-228. DOI · PMID: 12542658
  25. Silver R, LeSauter J, Tresco PA, Lehman MN. A diffusible coupling signal from the transplanted suprachiasmatic nucleus controlling circadian locomotor rhythms. Nature. 1996;382(6594):810-813. DOI · PMID: 8752274
  26. Silver R, Yao Y, Myung J. Global clock coordination by the brain clock in the suprachiasmatic nucleus through relay and amplification of diffusible and neural signaling. Eur J Neurosci. 2025;61(8):e70097. DOI · PMID: 40275778
  27. Aton SJ, Colwell CS, Harmar AJ, Waschek J, Herzog ED. Vasoactive intestinal polypeptide mediates circadian rhythmicity and synchrony in mammalian clock neurons. Nat Neurosci. 2005;8(4):476-483. DOI · PMID: 15750589
  28. Evans JA, Schwartz WJ. On the origin and evolution of the dual oscillator model underlying the photoperiodic clockwork in the suprachiasmatic nucleus. J Comp Physiol A Neuroethol Sens Neural Behav Physiol. 2024;210(4):503-511. DOI · PMID: 37481773
  29. Takahashi JS. Transcriptional architecture of the mammalian circadian clock. Nat Rev Genet. 2017;18(3):164-179. DOI · PMID: 27990019
  30. Moreira AC, Antonini SR, de Castro M. Mechanisms in endocrinology: a sense of time of the glucocorticoid circadian clock: from the ontogeny to the diagnosis of Cushing’s syndrome. Eur J Endocrinol. 2018;179(1):R1-R18. DOI · PMID: 29661784
  31. Liu AC, Welsh DK, Ko CH, Tran HG, Zhang EE, Priest AA, et al. Intercellular coupling confers robustness against mutations in the SCN circadian clock network. Cell. 2007;129(3):605-616. DOI · PMID: 17482552
  32. Brancaccio M, Edwards MD, Patton AP, Smyllie NJ, Chesham JE, Maywood ES, et al. Cell-autonomous clock of astrocytes drives circadian behavior in mammals. Science. 2019;363(6423):187-192. DOI · PMID: 30630934
  33. Lockley SW, Skene DJ, Arendt J, Tabandeh H, Bird AC, Defrance R. Relationship between melatonin rhythms and visual loss in the blind. J Clin Endocrinol Metab. 1997;82(11):3763-3770. DOI · PMID: 9360538
  34. St Hilaire MA, Gooley JJ, Khalsa SBS, Kronauer RE, Czeisler CA, Lockley SW. Human phase response curve to a 1 h pulse of bright white light. J Physiol. 2012;590(13):3035-3045. DOI · PMID: 22547633
  35. Rüger M, St Hilaire MA, Brainard GC, Khalsa SBS, Kronauer RE, Czeisler CA, et al. Human phase response curve to a single 6.5 h pulse of short-wavelength light. J Physiol. 2013;591(1):353-363. DOI · PMID: 23090946
  36. Borbély AA, Daan S, Wirz-Justice A, Deboer T. The two-process model of sleep regulation: a reappraisal. J Sleep Res. 2016;25(2):131-143. DOI · PMID: 26762182
  37. Kent BA, Rahman SA, St Hilaire MA, Grant LK, Rüger M, Czeisler CA, et al. Circadian lipid and hepatic protein rhythms shift with a phase response curve different than melatonin. Nat Commun. 2022;13(1):681. DOI · PMID: 35115537
  38. Cordani R, Veneruso M, Napoli F, Di Iorgi N, Milanaccio C, Consales A, et al. Sleep disturbances in pediatric craniopharyngioma: a systematic review. Front Neurol. 2022;13:876011. DOI · PMID: 35651342
  39. Cohen RA, Albers HE. Disruption of human circadian and cognitive regulation following a discrete hypothalamic lesion: a case study. Neurology. 1991;41(5):726-729. DOI · PMID: 2027490
  40. Goudsmit E, Hofman MA, Fliers E, Swaab DF. The supraoptic and paraventricular nuclei of the human hypothalamus in relation to sex, age and Alzheimer’s disease. Neurobiol Aging. 1990;11(5):529-536. DOI · PMID: 2234284
  41. Stopa EG, Volicer L, Kuo-Leblanc V, Harper D, Lathi D, Tate B, et al. Pathologic evaluation of the human suprachiasmatic nucleus in severe dementia. J Neuropathol Exp Neurol. 1999;58(1):29-39. DOI · PMID: 10068311
  42. Son G, Neylan TC, Grinberg LT. Neuronal and glial vulnerability of the suprachiasmatic nucleus in tauopathies: evidence from human studies and animal models. Mol Neurodegener. 2024;19(1):4. DOI · PMID: 38195580
  43. Wang JL, Lim AS, Chiang WY, Hsieh WH, Lo MT, Schneider JA, et al. Suprachiasmatic neuron numbers and rest-activity circadian rhythms in older humans. Ann Neurol. 2015;78(2):317-322. DOI · PMID: 25921596
  44. Reimus M, Siemiński M. Sundowning syndrome in dementia: mechanisms, diagnosis, and treatment. J Clin Med. 2025;14(4). DOI · PMID: 40004689
  45. Lockley SW, Dressman MA, Licamele L, Xiao C, Fisher DM, Flynn-Evans EE, et al. Tasimelteon for non-24-hour sleep-wake disorder in totally blind people (SET and RESET): two multicentre, randomised, double-masked, placebo-controlled phase 3 trials. Lancet. 2015;386(10005):1754-1764. DOI · PMID: 26466871
  46. Pandi-Perumal SR, Smits M, Spence W, Srinivasan V, Cardinali DP, Lowe AD, et al. Dim light melatonin onset (DLMO): a tool for the analysis of circadian phase in human sleep and chronobiological disorders. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 2007;31(1):1-11. DOI · PMID: 16884842
  47. Gooley JJ, Chamberlain K, Smith KA, Khalsa SBS, Rajaratnam SMW, Van Reen E, et al. Exposure to room light before bedtime suppresses melatonin onset and shortens melatonin duration in humans. J Clin Endocrinol Metab. 2011;96(3):E463-E472. DOI · PMID: 21193540
  48. Farajnia S, Michel S, Deboer T, vanderLeest HT, Houben T, Rohling JHT, et al. Evidence for neuronal desynchrony in the aged suprachiasmatic nucleus clock. J Neurosci. 2012;32(17):5891-5899. DOI · PMID: 22539850
  49. Hofman MA, Swaab DF. Living by the clock: the circadian pacemaker in older people. Ageing Res Rev. 2006;5(1):33-51. DOI · PMID: 16126012
  50. Youngstedt SD, Elliott JA, Kripke DF. Human circadian phase-response curves for exercise. J Physiol. 2019;597(8):2253-2268. DOI · PMID: 30784068
  51. Wehrens SMT, Christou S, Isherwood C, Middleton B, Gibbs MA, Archer SN, et al. Meal timing regulates the human circadian system. Curr Biol. 2017;27(12):1768-1775.e3. DOI · PMID: 28578930
  52. Burgess HJ, Revell VL, Eastman CI. A three pulse phase response curve to three milligrams of melatonin in humans. J Physiol. 2008;586(2):639-647. DOI · PMID: 18006583
  53. Fernandez FX, Kaladchibachi S, Negelspach DC. Resilience in the suprachiasmatic nucleus: implications for aging and Alzheimer’s disease. Exp Gerontol. 2021;147:111258. DOI · PMID: 33516909
  54. McCleery J, Sharpley AL. Pharmacotherapies for sleep disturbances in dementia. Cochrane Database Syst Rev. 2020;11(11):CD009178. DOI · PMID: 33189083

Podobne wpisy