Encyklopedia

Gorączka

Gorączka to regulowany wzrost temperatury ciała do wartości wyższej niż zwykle. Wywołują ją sygnały zapalne, które przez prostaglandynę E2 przestawiają ośrodek termoregulacji, a organizm zatrzymuje i wytwarza ciepło. Jest starą ewolucyjnie odpowiedzią obronną i częstym powodem szukania pomocy lekarskiej.
Poziom:
Czas czytania:
36 MIN
Ostatnia aktualizacja: 1 października, 2026
Udostępnij:
Spis Treści

W skrócie

  • Czym jest gorączka?
    Gorączka to stan, w którym podwzgórze podnosi temperaturę docelową ciała, a organizm zatrzymuje i wytwarza ciepło, dopóki jej nie osiągnie. Wywołują ją zakażenia, a także zapalenia bez udziału drobnoustrojów.
  • Od jakiej temperatury zaczyna się gorączka?
    Granica gorączki zależy od miejsca pomiaru, bo u zdrowych dorosłych temperatura pod pachą jest niższa niż w odbytnicy. W badaniach nad termometrami za próg gorączki przyjmowano zwykle 38 °C mierzone w odbytnicy.
  • Dlaczego przy gorączce są dreszcze?
    Dreszcze w gorączce pojawiają się, gdy podwzgórze ustawiło już wyższą temperaturę docelową, a ciało jest jeszcze chłodniejsze. Drżenie mięśni i skurcz naczyń skóry podnoszą wtedy temperaturę do nowej wartości.
  • Czy obniżanie gorączki pomaga w wyzdrowieniu?
    Obniżanie gorączki u dorosłych nie zmieniało ryzyka zgonu ani poważnych powikłań w metaanalizie 42 badań z randomizacją. Korzyść opisano w wybranych stanach ciężkich, takich jak wstrząs septyczny.
  • Jak działają leki na gorączkę?
    Leki na gorączkę, takie jak ibuprofen i kwas acetylosalicylowy, hamują cyklooksygenazę i zmniejszają wytwarzanie prostaglandyny E2, która w podwzgórzu podnosi temperaturę docelową. Paracetamol hamuje ten sam enzym inną drogą.
  • Czym różni się gorączka od przegrzania?
    Gorączka różni się od przegrzania tym, że temperaturę podnosi sam ośrodek termoregulacji. W przegrzaniu, na przykład w udarze cieplnym, ośrodek działa prawidłowo, ale organizm nie nadąża z oddawaniem ciepła.
  • Czy wysoka gorączka oznacza zakażenie bakteryjne?
    Wysoka gorączka wiąże się z większym ryzykiem ciężkiego zakażenia bakteryjnego głównie u niemowląt, a u starszych dzieci ryzyko jest tylko nieznacznie wyższe. Sama wysokość gorączki nie rozstrzyga o rodzaju zakażenia.

1. Charakterystyka procesu

1.1. Definicja i zakres procesu

Gorączka (łac. febris, ang. fever) to regulowany wzrost temperatury głębokiej ciała, do którego dochodzi, gdy ośrodek termoregulacji w podwzgórzu przestawia punkt nastawczy na wyższą wartość [1, 2]. Punkt nastawczy oznacza tu temperaturę, której broni sieć neuronów termoregulacyjnych, uruchamiając przy każdym odchyleniu wytwarzanie albo oddawanie ciepła [3]. Po przestawieniu nastawy dotychczasowa temperatura ciała staje się dla tej sieci zbyt niska. Organizm zatrzymuje więc ciepło i wytwarza je, dopóki temperatura głęboka nie zrówna się z nową wartością [2].

Gorączka należy do odpowiedzi ostrej fazy, czyli zespołu ogólnoustrojowych zmian towarzyszących zapaleniu i zakażeniu [4]. W tej grupie zjawisk stoi obok zmian stężenia białek osocza wytwarzanych przez wątrobę, obok senności i utraty łaknienia. Jest też odpowiedzią wspólną dla kręgowców. Występuje u zwierząt stałocieplnych i zmiennocieplnych, a jej mechanizm zachował się przez ponad 600 milionów lat ewolucji [5].

Od hipertermii, czyli przegrzania, gorączkę odróżnia stan punktu nastawczego. W hipertermii temperatura głęboka rośnie powyżej wartości ustalonej przez podwzgórze, ponieważ wytwarzanie ciepła przewyższa jego utratę [6]. Tak przebiega udar cieplny [7]. Hipertermia złośliwa jest reakcją na wziewne środki znieczulające lub sukcynylocholinę u osób z wariantami genów RYR1 albo CACNA1S, które kodują kanały wapniowe mięśni [8]. Do polekowych stanów hipertermicznych należą też zespół serotoninowy i złośliwy zespół neuroleptyczny [9].

Od gorączki różni się również prawidłowa zmienność dobowa temperatury. U 148 zdrowych osób w wieku 18–40 lat temperatura w jamie ustnej była najniższa około 6:00, a najwyższa między 16:00 a 18:00, przy średniej amplitudzie wahań 0,5 °C w ciągu doby [10]. Wahanie to odzwierciedla rytm dobowy, a nie zmianę nastawy wywołaną przez czynnik zapalny.

Granica między normą a gorączką zależy od miejsca pomiaru. W przeglądzie systematycznym 36 prac obejmujących 7636 zdrowych dorosłych zakres temperatury (średnia ± 2 odchylenia standardowe) wynosił 36,32–37,76 °C w odbytnicy i 35,73–37,41 °C w jamie ustnej [11]. Pod pachą zakres ten wynosił 35,01–36,93 °C i leżał niżej niż w odbytnicy [11]. W badaniach dokładności termometrów progiem gorączki była zwykle temperatura 38 °C w odbytnicy [12].

Pojęcie gorączki obejmuje każde przestawienie nastawy, niezależnie od przyczyny: zakażenia, niezakaźnej choroby zapalnej czy nowotworu [13, 14]. Nie obejmuje przegrzania przy prawidłowej nastawie ani fizjologicznych wahań dobowych. Gorączka jest jednym z najczęstszych powodów, dla których rodzice szukają dla dziecka pomocy lekarskiej [15]. Jej mechanizm pokazuje zarazem, jak sygnał z układu odpornościowego zmienia pracę ośrodka w mózgu.

1.2. Umiejscowienie

Gorączka rozpoczyna się poza mózgiem, w tkankach i we krwi, gdzie komórki odporności nieswoistej rozpoznają składniki drobnoustrojów [16]. Kończy się w podwzgórzu, w okolicy przedwzrokowej (łac. area praeoptica, ang. preoptic area, POA), czyli skupisku neuronów leżącym przed skrzyżowaniem wzrokowym. Okolica przedwzrokowa odbiera trzy rodzaje informacji: o temperaturze skóry z termoreceptorów, o temperaturze własnej tkanki z neuronów termowrażliwych i o zakażeniu w postaci prostaglandyny E2 [2]. Sygnał ze skóry dociera do niej przez rdzeń kręgowy i boczne jądro okołoramieniowe [2].

Z okolicy przedwzrokowej wychodzą hamujące neurony GABA-ergiczne, czyli wydzielające kwas γ-aminomasłowy [2]. Biegną one do jądra grzbietowo-przyśrodkowego podwzgórza oraz do przedniej części szwu rdzenia przedłużonego, gdzie leżą neurony sterujące wytwarzaniem ciepła [2]. Okolica przedwzrokowa steruje więc temperaturą przez hamowanie, a osłabienie tego hamowania podnosi temperaturę ciała.

Między krwią a okolicą przedwzrokową leży bariera krew–mózg, przez którą duże białka, takie jak cytokiny, przechodzą słabo. Hipoteza Blatteisa zakładała, że krążące pirogeny działają w narządzie naczyniowym blaszki krańcowej (łac. organum vasculosum laminae terminalis, OVLT) [17]. OVLT należy do narządów okołokomorowych, czyli obszarów o naczyniach pozbawionych szczelnej bariery, i sąsiaduje z okolicą przedwzrokową. Komórki śródbłonka OVLT wiążą krążące cytokiny, choć sam autor określał dalszy przebieg tego mechanizmu jako spekulatywny [17].

Badania na szczurach przesunęły uwagę na śródbłonek naczyń całego mózgu. Po dożylnym podaniu lipopolisacharydu (LPS), składnika ściany bakterii Gram-ujemnych, w komórkach śródbłonka naczyń całego mózgu szybko rosła transkrypcja genu IκBα [18]. Białko IκBα hamuje jądrowy czynnik kappa B (NF-κB), czynnik transkrypcyjny włączający geny odpowiedzi zapalnej, a wzrost transkrypcji IκBα odzwierciedla aktywność NF-κB [18]. W komórkach śródbłonka mózgu pojawiała się też cyklooksygenaza 2, enzym syntezy prostaglandyn [19]. Śródbłonek naczyń mózgu jest więc miejscem, w którym sygnał niesiony przez krew zamienia się w sygnał czytelny dla neuronów.

Efektory gorączki leżą na obwodzie: są to naczynia krwionośne skóry, mięśnie szkieletowe i brunatna tkanka tłuszczowa [3]. Steruje nimi część współczulna autonomicznego układu nerwowego oraz somatyczne drogi ruchowe [2]. Z tego rozmieszczenia wynika, że gorączka wymaga współpracy trzech poziomów: tkanki objętej zapaleniem, ściany naczyń mózgu i ośrodka w podwzgórzu.

1.3. Rys historyczny

Pomiar temperatury jako narzędzie kliniczne upowszechnił w XIX wieku niemiecki lekarz Carl Wunderlich [20]. Za średnią temperaturę w jamie ustnej uznał 37,0 °C, a 38,0 °C za górną granicę normy [10]. Wartości te zrewidował w 1992 roku zespół Mackowiaka, który u 148 zdrowych dorosłych ustalił średnią 36,8 °C, a 37,7 °C uznał za górną granicę normy [10]. Analiza trzech kohort mieszkańców Stanów Zjednoczonych z lat 1860–2017 wskazała później, że średnia temperatura ciała spadała o 0,03 °C z każdą dekadą urodzenia [21].

Równolegle toczył się spór o źródło gorączki. Przez wiele lat sądzono, że produkty bakterii nie działają bezpośrednio na ośrodek termoregulacji, bo są zbyt liczne i zbyt różne budową [13]. Gorączkę miała wywoływać pośrednio cząsteczka wytwarzana przez gospodarza, nazwana pirogenem endogennym [13]. Już w 1948 roku Beeson opisał substancję otrzymaną z leukocytów wielojądrzastych, która podnosiła temperaturę ciała [22]. Pirogen endogenny zidentyfikowano później jako interleukinę 1, a jej rekombinowana postać wywoływała gorączkę u ludzi i zwierząt w stężeniach subnanomolowych [13]. Koncepcję tę podważyło spostrzeżenie, że zablokowanie interleukiny 1 lub czynnika martwicy nowotworów nie zmniejszało gorączki po LPS [13]. Wyjaśnienia dostarczyło odkrycie receptorów Toll-podobnych na naczyniach zaopatrujących ośrodek termoregulacji, a wspólnym ogniwem wszystkich dróg okazała się prostaglandyna E2 [13].

Trzecie rozstrzygnięcie dotyczyło sensu gorączki. W 1974 roku Vaughn, Bernheim i Kluger opisali gorączkę u pustynnej jaszczurki Dipsosaurus dorsalis, zwierzęcia zmiennocieplnego [23]. W kolejnym doświadczeniu jaszczurki tego gatunku zakażone bakterią Aeromonas hydrophila przeżywały częściej, gdy przebywały w wyższej temperaturze otoczenia [24]. Doświadczenie to powiązało w warunkach kontrolowanych wysokość temperatury ciała z przeżyciem zakażenia.

1.4. Warunki i bodźce uruchamiające

Gorączkę uruchamiają pirogeny, czyli substancje zdolne do przestawienia nastawy ośrodka termoregulacji. Dzieli się je na egzogenne, pochodzące spoza organizmu, i endogenne, wytwarzane przez komórki gospodarza [13]. Najlepiej poznanym pirogenem egzogennym jest LPS. Rozpoznaje go receptor Toll-podobny 4 (ang. Toll-like receptor 4, TLR4), białko błonowe, które przekazuje do wnętrza komórki sygnał o obecności bakterii [25]. Myszy z mutacją genu Tlr4 nie reagowały na endotoksynę, ale były bardzo podatne na zakażenie bakteriami Gram-ujemnymi [25].

Inne składniki drobnoustrojów działają przez własne receptory Toll-podobne. Dlatego gorączkę może wywołać każdy produkt drobnoustroju, który pobudza swój receptor tej rodziny [13]. Pobudzone przez LPS komórki jednojądrzaste krwi obwodowej, do których należą monocyty, wydzielają wtedy cytokiny pirogenne [26]. Należą do nich interleukina 1β (IL-1β), interleukina 6 (IL-6) i czynnik martwicy nowotworów alfa (TNF-α), białka sygnałowe koordynujące odpowiedź zapalną [13]. Wytwarzanie tych cytokin należy do pierwszych reakcji nieswoistej odpowiedzi immunologicznej na drobnoustrój [16].

Gorączka nie wymaga zakażenia. Jałowe zapalenie tkanek wywołane u myszy wstrzyknięciem terpentyny również podnosiło temperaturę ciała [27]. U ludzi gorączkę bez udziału drobnoustrojów wywołują między innymi choroby autoimmunologiczne, w których działają głównie cytokiny [13]. W zakażeniu działają łącznie cytokiny i receptory Toll-podobne [13].

Pirogeny różnią się pochodzeniem i receptorem, przez który uruchamiają proces.

Pirogen Pochodzenie Receptor Dane doświadczalne
LPS ściana bakterii Gram-ujemnych TLR4 mysz: mutacja Tlr4 znosi odpowiedź na endotoksynę [25]
IL-1β komórki jednojądrzaste krwi receptor IL-1 typu 1 na śródbłonku mózgu mysz: usunięcie receptora ze śródbłonka osłabia gorączkę [28]
IL-6 wytwarzanie obwodowe i w mózgu receptor IL-6 na śródbłonku mózgu mysz: brak IL-6 znosi gorączkę po LPS i IL-1β [29]
TNF-α komórki jednojądrzaste krwi receptory TNF gorączka po podaniu cytokiny rekombinowanej [13]

U myszy z miejscowym zapaleniem receptor interleukiny 1 był potrzebny na śródbłonku naczyń mózgu, a jego usunięcie z komórek nerwowych nie zmieniało gorączki [28]. Pirogeny endogenne działają więc na ścianę naczyń mózgu, a nie bezpośrednio na neurony, co tłumaczy, jak cząsteczki białkowe zatrzymywane przez barierę krew–mózg zmieniają pracę ośrodka termoregulacji.

2. Przebieg i regulacja

2.1. Etapy procesu

Przy prawidłowej nastawie neurony GABA-ergiczne okolicy przedwzrokowej stale hamują neurony jądra grzbietowo-przyśrodkowego podwzgórza i przedniej części szwu rdzenia przedłużonego [2]. Te ostatnie pobudzają wytwarzanie ciepła i zwężanie naczyń skóry, więc ich zahamowanie utrzymuje temperaturę głęboką na poziomie nastawy [2]. Bodźcem, który zmienia ten stan, jest pirogen obecny w tkankach lub we krwi.

W pierwszym etapie komórki odporności nieswoistej rozpoznają pirogen egzogenny przez receptory Toll-podobne i po pewnym czasie zaczynają wytwarzać cytokiny pirogenne [16]. W modelu z LPS najwcześniejszym ogniwem jest układ dopełniacza. Jego składnik C5a wywołuje natychmiastową syntezę prostaglandyny E2, zanim komórki zdążą wytworzyć cytokiny [16]. W tej wczesnej fazie niezbędne wydają się makrofagi wątroby, zwane komórkami Kupffera [16].

W drugim etapie sygnał wędruje do mózgu drogą humoralną, czyli z krwią, oraz nerwową, przez włókna czuciowe nerwu błędnego, a w modelu z LPS droga nerwowa odpowiada za wczesną, a humoralna za późną fazę gorączki [16, 30]. Droga humoralna prowadzi przez komórki śródbłonka mózgu, które mają receptory IL-1 i IL-6. U myszy z miejscowym zapaleniem usunięcie tych receptorów ze śródbłonka osłabiało gorączkę [28].

W trzecim etapie pobudzone komórki śródbłonka wytwarzają cyklooksygenazę 2 (COX-2) [19]. Enzym ten przekształca kwas arachidonowy w nietrwałą prostaglandynę H2, substrat dla dalszych enzymów szlaku [31]. Następnie mikrosomalna syntaza prostaglandyny E 1 (mPGES-1) wytwarza z niej prostaglandynę E2 (PGE2) [32]. Myszy pozbawione mPGES-1 nie gorączkowały po obwodowym podaniu LPS, ale reagowały gorączką na PGE2 podaną bezpośrednio do mózgu [32]. Enzym ten działa zatem jak przełącznik między zapaleniem na obwodzie a ośrodkiem termoregulacji.

W czwartym etapie PGE2 wiąże się z receptorem prostaglandyny E typu 3 (EP3) na neuronach okolicy przedwzrokowej. U myszy wybiórcze usunięcie tego receptora z jądra przedwzrokowego pośrodkowego (ang. median preoptic nucleus) znosiło gorączkę [33]. Pobudzenie EP3 osłabia zstępujące hamowanie płynące z okolicy przedwzrokowej [2]. Odhamowane neurony jądra grzbietowo-przyśrodkowego i szwu rdzenia przedłużonego uruchamiają wtedy współczulne i somatyczne drogi ruchowe [2].

W piątym etapie włókna współczulne zwężają naczynia skóry, co zmniejsza utratę ciepła, a neurony ruchowe wywołują drżenie mięśni szkieletowych [2, 3]. Towarzyszy temu przyspieszenie czynności serca [2]. Temperatura ciała jest w tej fazie niższa od nowej nastawy, dlatego drżenie i skurcz naczyń skóry odczuwa się jako dreszcze i chłód. Brunatna tkanka tłuszczowa wytwarza ciepło dzięki białku rozprzęgającemu 1 (ang. uncoupling protein 1, UCP1), ale jej udział w gorączce jest sporny. U myszy pozbawionych UCP1 gorączka po LPS przebiegała tak samo jak u zwierząt z prawidłowym genem, a znosiły ją leki blokujące skurcz naczyń obwodowych [34]. Sieć termoregulacyjna steruje także zachowaniem, takim jak poszukiwanie ciepła [3].

W szóstym etapie temperatura głęboka osiąga nową nastawę, a wytwarzanie i utrata ciepła równoważą się. W miarę trwania gorączki organizm wytwarza antypiretyki endogenne, które ograniczają jej siłę i czas trwania [16]. Gdy okolica przedwzrokowa odzyskuje hamujący wpływ, naczynia skóry rozszerzają się, a termogeneza słabnie [2]. Ciepło oddawane przez skórę obniża wówczas temperaturę do wartości wyjściowej.

Kolejne ogniwa sygnału gorączkowego układają się w łańcuch, w którym strzałka oznacza przekazanie sygnału.

pirogen → cytokiny → śródbłonek naczyń mózgu (COX-2, mPGES-1) → PGE2 → receptor EP3 w okolicy przedwzrokowej → odhamowanie neuronów podwzgórza i rdzenia przedłużonego → skurcz naczyń skóry, drżenie mięśni → wzrost temperatury do nowej nastawy

Trzy fazy gorączki różnią się relacją temperatury głębokiej do nastawy i efektorami, które w danej fazie przeważają.

Faza Temperatura głęboka wobec nastawy Przeważające efektory
Narastanie niższa od nowej nastawy skurcz naczyń skóry, drżenie mięśni, przyspieszenie czynności serca
Plateau równa nowej nastawie wytwarzanie i utrata ciepła w równowadze
Spadek wyższa od przywróconej nastawy rozszerzenie naczyń skóry, pocenie

Z przebiegu tego wynika, że gorączka jest sterowana od początku do końca. Temperatura rośnie i spada nie dlatego, że organizm traci kontrolę nad ciepłem, lecz dlatego, że ośrodek zmienia wartość, której broni.

2.2. Białka i enzymy kluczowe

Przełożenie zapalenia na zmianę nastawy wymaga łańcucha białek, z których każde przekazuje sygnał następnemu ogniwu. Pierwszym ogniwem jest receptor rozpoznający drobnoustrój, ostatnim receptor na neuronie ośrodka termoregulacji. Między nimi działają cytokiny i dwa enzymy syntezy PGE2.

IL-1β działa przez receptor IL-1 typu 1 (IL-1R1), białko błony komórkowej, które przekazuje sygnał cytokiny do wnętrza komórki. U myszy z miejscowym zapaleniem usunięcie IL-1R1 z całego organizmu znosiło gorączkę, a jego usunięcie z samego śródbłonka mózgu ją osłabiało [28]. IL-6 działa za IL-1β w tym samym łańcuchu. Myszy bez genu IL-6 nie gorączkowały ani po LPS, ani po IL-1β, a reagowały gorączką na IL-6 podaną do komór mózgu [29].

Cyklooksygenaza występuje w dwóch izoformach: konstytutywnej COX-1, obecnej w tkankach stale, i indukowanej COX-2, której ilość rośnie pod wpływem mediatorów zapalnych [35]. Gorączka wywołana przez IL-1, TNF-α, IL-6 lub ligandy receptorów Toll-podobnych wymaga COX-2 [13]. Kolejny enzym, mPGES-1, jest indukowalną izomerazą obecną w komórkach śródbłonka mózgu wrażliwych na cytokiny [32]. Receptor EP3 zamyka łańcuch na neuronach jądra przedwzrokowego pośrodkowego [33].

Rolę tych białek ustalono głównie na myszach pozbawionych poszczególnych genów.

Białko Miejsce działania Funkcja w gorączce Skutek braku u myszy
TLR4 komórki odporności nieswoistej rozpoznanie LPS brak odpowiedzi na endotoksynę [25]
IL-1R1 śródbłonek naczyń mózgu odbiór sygnału IL-1β brak gorączki przy usunięciu z całego organizmu, osłabienie przy usunięciu ze śródbłonka [28]
IL-6 mózg, osocze przekaźnik za IL-1β brak gorączki po LPS i IL-1β [29]
mPGES-1 śródbłonek naczyń mózgu synteza PGE2 brak gorączki po LPS [32]
EP3 neurony jądra przedwzrokowego pośrodkowego odbiór sygnału PGE2 brak gorączki [33]
UCP1 brunatna tkanka tłuszczowa termogeneza bez drżenia gorączka bez zmian [34, 36]

U myszy wyłączenie IL-6, mPGES-1 albo EP3 wystarczało do zniesienia gorączki w badanych modelach, więc ogniwa między cytokiną a neuronem nie zastępują się nawzajem [29, 32, 33]. Wyłączenie efektora UCP1 gorączki nie zatrzymywało, bo temperaturę podnosił skurcz naczyń obwodowych [34]. U myszy bez UCP1 odpowiedź gorączkowa na IL-1β nie różniła się od odpowiedzi zwierząt typowych [36].

2.3. Czynniki nasilające

Gorączka już uruchomiona może narastać i trwać dłużej dzięki mechanizmom, które wzmacniają pierwotny sygnał pirogenny. Działają one na różnych poziomach: we krwi, w ścianie naczyń mózgu i w samym mózgu.

Pierwszym wzmocnieniem jest kaskada cytokin. LPS wywołuje we krwi falę kolejnych cytokin, która narasta mniej więcej równocześnie z gorączką [37]. Blokowanie IL-1β lub TNF-α osłabiało jednak w modelach zwierzęcych głównie późniejsze etapy gorączki, a nie jej początek [37]. Cytokiny odpowiadają więc raczej za podtrzymanie gorączki niż za jej zapoczątkowanie.

Drugim wzmocnieniem jest wielość dróg prowadzących do tego samego efektu. Drobnoustroje pobudzają receptory Toll-podobne na naczyniach zaopatrujących ośrodek termoregulacji, więc gorączka w zakażeniu może powstać także bez udziału IL-1 i TNF [13]. Przy zapaleniu miejscowym u myszy PGE2 powstawała w ognisku zapalnym i krążyła we krwi [28]. Cytokiny działające na śródbłonek mózgu prawdopodobnie ułatwiały wówczas jej przenikanie do mózgu [28]. Enzymy syntezy PGE2 w śródbłonku nie były w tym modelu potrzebne, inaczej niż przy zapaleniu ogólnoustrojowym [28].

Z tych danych wynika, że gorączka opiera się na kilku równoległych ścieżkach. Tłumaczy to, dlaczego blokada jednego mediatora zapalnego osłabia gorączkę najwyżej częściowo, a skuteczne okazuje się działanie na wspólne ogniwo, jakim jest synteza PGE2 [32, 35].

2.4. Czynniki hamujące

Wzrost temperatury w gorączce ma własne ograniczniki, nazywane antypiretykami endogennymi. Są to cząsteczki wytwarzane na obwodzie i w mózgu, które ograniczają siłę i czas trwania gorączki [16].

Interleukina 10 (IL-10) to cytokina przeciwzapalna, która hamuje wytwarzanie IL-1β, IL-6 i TNF-α [27]. Myszy pozbawione IL-10 reagowały na małą dawkę LPS gorączką silniejszą i dłuższą niż zwierzęta typowe, a stężenie IL-6 w ich osoczu było wyższe [27]. Podanie rekombinowanej IL-10 chroniło myszy przed gorączką po LPS [27].

Hormony glikokortykosteroidowe, takie jak kortyzol, tworzą drugą pętlę hamującą. Szczury po usunięciu nadnerczy gorączkowały po endotoksynie silniej i miały więcej IL-6 i PGE2 w osoczu i w płynie mózgowo-rdzeniowym [38]. Autorzy uznali te wyniki za potwierdzenie hipotezy, że glikokortykosteroidy wytwarzane przez organizm tworzą hamujące sprzężenie zwrotne ograniczające gorączkę [38].

W mózgu działają neuropeptydy. Wazopresyna uwalniana w brzusznej okolicy przegrody uczestniczy u szczurów w obniżaniu gorączki. Antagonista jej receptora V1 podany w to miejsce znosił przeciwgorączkowe działanie ibuprofenu i indometacyny [39]. Hormon melanotropowy alfa (α-MSH), peptyd z rodziny melanokortyn, hamował u szczurów gorączkę po LPS przez receptor melanokortynowy typu 4 [40]. Melanokortyny i kortykoliberyna działają w zapaleniu ogólnoustrojowym jako antypiretyki endogenne [41].

Dane o antypiretykach endogennych pochodzą głównie z badań na gryzoniach, więc ich znaczenie u ludzi pozostaje wnioskiem z modeli zwierzęcych. Wyniki te wskazują, że wysokość gorączki wynika z oddziaływania sygnałów podnoszących i obniżających nastawę, a nie z samego natężenia zakażenia [16].

2.5. Powiązania z innymi szlakami

Gorączka jest połączona z innymi odpowiedziami organizmu na zapalenie, ponieważ korzysta z tych samych cytokin i tych samych komórek. Punkty styku dotyczą regulacji genów w śródbłonku, wątroby, osi stresu i snu.

NF-κB był u szczurów aktywny w śródbłonku naczyń mózgu po podaniu LPS, IL-1β i TNF-α, a po jałowym zapaleniu mięśnia wyłącznie w tym śródbłonku [18]. U myszy promotor genu COX-2 zawiera miejsce wiązania NF-κB [42]. W makrofagach myszy do indukcji tego genu niezbędny jest jednak także C/EBPβ, czyli białko wiążące sekwencję wzmacniającą CCAAT, inny czynnik transkrypcyjny, a w fibroblastach indukcja COX-2 przebiegała bez niego, więc mechanizm włączania tego genu zależy od typu komórki [42]. U królików związki hamujące NF-κB, podane dożylnie przed LPS, osłabiały gorączkę lub wzrost stężenia cytokin pirogennych w surowicy [26].

IL-6 łączy gorączkę z reakcją ostrej fazy w wątrobie, gdzie pobudza syntezę białek ostrej fazy, takich jak białko C-reaktywne [4]. U szczurów IL-1 działała na śródbłonek naczyń jądra przykomorowego podwzgórza, a zahamowanie cyklooksygenazy znosiło pobudzenie neuronów tego jądra po LPS [19]. W ten sposób sygnał zapalny uruchamia oś podwzgórze–przysadka–nadnercza, której końcowy hormon, kortyzol, ogranicza gorączkę zwrotnie [19, 38].

Zakażenie zmienia również sen. Imeri i Opp przedstawili hipotezę, że zmiany budowy snu w zakażeniu wspierają wytwarzanie gorączki [43]. U myszy pozbawionych UCP1 zapalenie nie wydłużało snu NREM, czyli snu bez szybkich ruchów gałek ocznych, choć gorączka pojawiała się normalnie [44]. Sen i gorączka korzystają więc z tych samych sygnałów zapalnych, ale mają częściowo odrębne efektory.

Oferta NeuroExpert
NeuroExpert · bez reklam
Masz dość reklam?
Wyłącz banery, przerywniki i dolną belkę. Subskrypcja daje także pełny dostęp do bazy wiedzy NeuroExpert oraz treści premium.
Bez reklam
Pełny dostęp
Treści premium
Wyłącz reklamy

3. Fizjologia a patologia

3.1. Rola w warunkach prawidłowych

Gorączka jest odpowiedzią obronną, która w zakażeniu zwiększa szanse przeżycia [5]. Sygnał cieplny gorączki pobudza odporność wrodzoną i nabytą, a IL-6 uczestniczy zarówno w wywołaniu gorączki, jak i w kierowaniu limfocytów do narządów limfatycznych, w których rozwija się odpowiedź swoista [5]. Szlaki adrenergiczne uruchamiane przy termogenezie wpływają ponadto na czynność komórek odpornościowych [5].

Najmocniejsze dowody na przystosowawczy charakter gorączki pochodzą z badań na zwierzętach. U jaszczurek zakażonych bakteriami wyższa temperatura ciała wiązała się z częstszym przeżyciem [24]. U myszy pozbawionych IL-10, u których odpowiedź na dużą dawkę LPS przybierała postać głębokiej hipotermii zamiast gorączki, przeżyło 30% zwierząt wobec 100% zwierząt typowych [27]. W tym modelu brak gorączki szedł więc w parze z gorszym przeżyciem, choć zależność ta nie przesądza o przyczynie zgonów.

U ludzi korzyść z gorączki pozostaje wnioskiem pośrednim. Przegląd Waltera i współautorów wiąże ją z gorączką w sepsie, ale nie z gorączką o przyczynie nieinfekcyjnej [6]. W warunkach prawidłowych gorączka jest zatem odpowiedzią ograniczoną w czasie, sterowaną przez podwzgórze i hamowaną przez antypiretyki endogenne, które nie dopuszczają do jej nieograniczonego narastania [16].

3.2. Nasilenie nadmierne – następstwa

Gorączka ma koszt energetyczny, bo utrzymanie wyższej temperatury wymaga wytwarzania dodatkowego ciepła. U 12 chorych oddziału intensywnej terapii wentylowanych mechanicznie obniżenie temperatury z 39,4 do 37,0 °C zmniejszyło zużycie tlenu z 359 do 295 ml na minutę [45]. U 7 z nich, u których mierzono rzut serca, spadł on z 8,4 do 6,5 l na minutę [45]. Autorzy wnioskowali, że u chorego z ograniczoną dostawą tlenu lub niewydolnością oddechową gorączka obciąża układ krążenia i oddychania [45].

Drugim następstwem są drgawki gorączkowe, które w krajach zachodnich występują u 2–5% małych dzieci [46].

Trzecim zagrożeniem jest bardzo wysoka temperatura głęboka, gdy wytwarzanie ciepła przekracza jego utratę. Wtedy pojawiają się zaburzenia czynności komórek, tkanek i narządów, które przy dużym nasileniu lub długim trwaniu mogą doprowadzić do zgonu [6]. Przegląd Waltera wiąże ten mechanizm z sytuacją, w której temperatura przekracza wartość ustaloną przez podwzgórze, czyli z hipertermią [6]. W gorączce antypiretyki endogenne ograniczają siłę i czas trwania wzrostu temperatury, co odróżnia ją od przegrzania [16].

3.3. Nasilenie niedostateczne – następstwa

Brak gorączki w zakażeniu jest niekorzystny, bo może opóźniać rozpoznanie [47] i towarzyszy cięższemu przebiegowi choroby [48]. Zjawisko to dotyczy szczególnie osób starszych i chorych z ciężką sepsą.

U osób starszych gorączka nie pojawia się albo jest osłabiona w 20–30% zakażeń [47]. Wytyczne Amerykańskiego Towarzystwa Chorób Zakaźnych (ang. Infectious Diseases Society of America, IDSA) podają, że u ponad połowy mieszkańców placówek opieki długoterminowej z ciężkim zakażeniem typowo definiowana gorączka nie występuje [49]. Temperatura wyjściowa osób po 60. roku życia jest przy tym średnio o 0,23 °C niższa niż u młodszych dorosłych [11]. Ten sam próg liczbowy oznacza więc u osoby starszej większy wzrost ponad jej własną normę. Gdy jednak gorączka się pojawi, u osoby starszej częściej niż u osoby młodej wskazuje na poważne zakażenie wirusowe lub bakteryjne [47].

W ciężkiej sepsie brak gorączki wiąże się z gorszym rokowaniem. W wieloośrodkowym badaniu prospektywnym 624 chorych temperatura ciała do 36,5 °C włącznie wiązała się z 28-dniową śmiertelnością 38,1% wobec 17,9% u chorych bez hipotermii [48]. Temperatura od 37,6 °C wzwyż nie wiązała się w tym badaniu z większą śmiertelnością niż temperatura w zakresie 36,6–37,5 °C, przyjętym za odniesienie [48]. Obniżona temperatura w sepsie jest więc sygnałem cięższego przebiegu, a nie oznaką łagodnego zakażenia.

3.4. Udział gorączki w chorobach

Gorączka towarzyszy większości zakażeń, ale bywa też głównym objawem choroby, której przyczyny nie udaje się szybko ustalić. Dla takich sytuacji medycyna wypracowała pojęcie gorączki o nieznanej przyczynie.

W 1961 roku Petersdorf i Beeson opublikowali analizę 100 przypadków gorączki o niewyjaśnionej przyczynie [50]. W 1991 roku Durack i Street poddali to pojęcie ponownej ocenie i nowej definicji [51]. Kryteria rozpoznania nie są dziś jednolite, a ich wybór wpływa na wynik diagnostyki [14]. W metaanalizie badań prospektywnych kryteria ilościowe, oparte na czasie trwania badań, wiązały się z większym odsetkiem rozpoznanych zakażeń, a kryteria jakościowe, oparte na minimalnym zestawie badań, z większym odsetkiem przypadków nierozpoznanych [14]. Przyczyny grupuje się w pięć kategorii: zakażenia, niezakaźne choroby zapalne, nowotwory, choroby różne i przypadki bez rozpoznania [14]. W metaanalizie obejmującej 16 884 chorych z gorączką lub zapaleniem o nieznanej przyczynie choroby reumatyczne odpowiadały za 22,2% przypadków, a najczęstszą z nich była choroba Stilla dorosłych [52].

W chorobach autozapalnych gorączka powstaje bez udziału drobnoustrojów. W rodzinnej gorączce śródziemnomorskiej (ang. familial Mediterranean fever, FMF) napady zapalne nie ustępują pod wpływem kolchicyny u 10–20% chorych [53]. W badaniu z randomizacją u 25 takich chorych anakinra, lek blokujący interleukinę 1, zmniejszyła liczbę napadów z 3,5 do 1,7 na miesiąc [53]. Anakinra jest antagonistą receptora IL-1, czyli zajmuje receptor IL-1R1 bez przekazywania sygnału [53]. Skuteczność tej blokady wskazuje, że w FMF ogniwem napadów jest interleukina 1.

Podatność na blokadę jednej cytokiny odróżnia gorączkę autozapalną od gorączki w zakażeniu, w której drobnoustrój działa także przez receptory Toll-podobne [13]. Gorączka w chorobach autozapalnych jest przy tym jednym z przejawów szerszego stanu zapalnego, obejmującego również stawy [53].

3.5. Punkt uchwytu leków

Leki przeciwgorączkowe działają na ogniwa łańcucha, który prowadzi od cytokiny do receptora EP3. Różnią się miejscem, w którym przerywają sygnał.

Niesteroidowe leki przeciwzapalne (NLPZ) i kwas acetylosalicylowy hamują cyklooksygenazę, a więc syntezę prostaglandyn, które wywołują między innymi gorączkę. Mechanizm ten opisał Vane w 1971 roku [35]. Hamowanie tego samego enzymu zmniejsza też wytwarzanie prostaglandyn chroniących błonę śluzową żołądka i podtrzymujących czynność nerek, co wyjaśnia wspólne działania niepożądane tej grupy [35]. U szczurów ibuprofen zmniejszał zawartość PGE2 w płynie mózgowo-rdzeniowym po LPS, a jego działanie przeciwgorączkowe zależało też od uwalniania wazopresyny w mózgu [39].

Paracetamol działa inaczej. Hamuje syntazę prostaglandyny H jako kosubstrat redukujący w jej miejscu peroksydazowym, przez co zmniejsza dostępność utlenionej formy hemu potrzebnej do aktywacji miejsca cyklooksygenazowego [31]. W komórkach z dużą ilością nadtlenków efekt ten słabnie, a autor przeglądu tłumaczy tym brak obwodowego działania przeciwbólowego, przeciwpłytkowego i przeciwzapalnego paracetamolu [31]. Część działania paracetamolu przypisuje się też jego metabolitowi AM404, który działa na receptory kannabinoidowe [31].

Kwas acetylosalicylowy wiąże się u dzieci z zespołem Reye’a, czyli encefalopatią ze stłuszczeniem wątroby, zwykle po grypie lub ospie wietrznej [54]. W Stanach Zjednoczonych po ostrzeżeniach z 1980 roku liczba zgłoszonych przypadków spadła z 555 w 1980 roku do najwyżej 36 rocznie od 1987 roku [54]. U 82% chorych wykrywano we krwi salicylany [54].

Glikokortykosteroidy działają wyżej w łańcuchu. U szczurów syntetyczny glikokortykosteroid deksametazon hamował gorączkę po endotoksynie oraz wzrost stężenia IL-6 i PGE2 w płynie mózgowo-rdzeniowym [38]. Anakinra przerywa sygnał wcześniej, na receptorze interleukiny 1 [53]. Punkt uchwytu wszystkich tych leków leży przed receptorem EP3, w ogniwach wytwarzających sygnał pirogenny, a nie w efektorach wytwarzających ciepło.

3.6. Modyfikacja fizyczna i behawioralna

Temperaturę ciała w gorączce obniża też odbieranie ciepła z powierzchni skóry, bez udziału leków. Chłodzenie fizyczne nie zmienia jednak nastawy ośrodka termoregulacji, więc organizm odpowiada na nie próbą odzyskania ciepła.

W przeglądzie Cochrane obejmującym 7 badań i 467 dzieci w jednym małym badaniu samo chłodzenie fizyczne nie różniło się od placebo odsetkiem dzieci bez gorączki po godzinie [55]. W dwóch badaniach, w których wszystkie dzieci otrzymały lek przeciwgorączkowy, dodanie obmywania letnią wodą zwiększało odsetek dzieci bez gorączki po godzinie [55]. Dreszcze i gęsia skórka występowały przy chłodzeniu częściej (ryzyko względne 5,09) [55]. Te działania niepożądane są zgodne z mechanizmem gorączki, bo chłodzenie oddala temperaturę ciała od nastawy, której broni podwzgórze.

U dorosłych we wstrząsie septycznym chłodzenie przyniosło korzyść w badaniu z randomizacją. W badaniu tym u 200 chorych chłodzenie zewnętrzne zmniejszało zapotrzebowanie na leki obkurczające naczynia po 12 godzinach, ale nie po 48 godzinach [56]. Śmiertelność 14-dniowa wyniosła 19% wobec 34% w grupie bez chłodzenia [56].

Zachowanie wpływa na gorączkę przede wszystkim przez poszukiwanie ciepła, które sieć termoregulacyjna uruchamia w fazie narastania [3]. Zwierzęta zmiennocieplne regulują temperaturę ciała zachowaniem, przez wybór miejsca o odpowiedniej temperaturze otoczenia. Tą drogą jaszczurka Dipsosaurus dorsalis po zakażeniu podnosiła temperaturę ciała o około 2 °C, rozwijając gorączkę [23, 24].

3.7. Wsparcie suplementacyjne

Wpływ na sam proces gorączki, czyli na wytwarzanie cytokin pirogennych, syntezę prostaglandyn lub temperaturę ciała w gorączce, opisano dla czterech substancji stosowanych jako suplementy diety. N-acetylocysteina (NAC) to pochodna aminokwasu cysteiny, dostępna także jako lek, a kurkumina jest głównym polifenolem kurkumy. Kierunek odnosi się do temperatury ciała w gorączce i do wytwarzania jej mediatorów, a nie do przebiegu zakażenia.

Substancja Mechanizm wpływu Kierunek Siła dowodu
Andrographis punkt uchwytu nieustalony; u dorosłych z zapaleniem gardła i migdałków ustępowanie gorączki w 3. dniu przy wyższej badanej dawce porównywalne z paracetamolem [57] ↓ B
Kurkuma kurkumina jako inhibitor NF-κB zmniejszała wytwarzanie IL-1β, IL-6 i TNF-α przez ludzkie komórki jednojądrzaste in vitro i u królików, przy podaniu dożylnym, osłabiała gorączkę po LPS lub wzrost stężenia cytokin w surowicy [26] ↓ C
NAC (także lek) jako inhibitor NF-κB zmniejszała wytwarzanie cytokin pirogennych in vitro i u królików, przy podaniu dożylnym, osłabiała gorączkę po LPS lub wzrost stężenia cytokin w surowicy [26] ↓ C
Imbir ekstrakt etanolowy kłącza hamował uwalnianie prostaglandyn z leukocytów otrzewnowych szczura i obniżał u szczurów gorączkę wywołaną drożdżami [58] ↓ C

Jedynym badaniem u ludzi w tym zestawieniu jest badanie z randomizacją u 152 dorosłych, w którym wyższa dawka Andrographis i paracetamol przewyższały dawkę niższą w ustępowaniu gorączki w 3. dniu, a w 7. dniu grupy się nie różniły [57]. Dane dla kurkumy, NAC i imbiru pochodzą z modeli zwierzęcych i z badań in vitro, a ich działania przeciwgorączkowego u ludzi w przytoczonych pracach nie oceniano. Wyniki dla kurkuminy i NAC uzyskano przy tym po podaniu dożylnym, a nie doustnym [26]. Czarny bez badano w metaanalizie pod kątem objawów zakażeń górnych dróg oddechowych, a nie temperatury ciała [59].

4. Uwagi praktyczne

4.1. Jak to zbadać

Gorączkę rozpoznaje się pomiarem temperatury ciała, który jest zawsze pośrednim oszacowaniem temperatury głębokiej. Wynik zależy od miejsca pomiaru, rodzaju termometru, pory dnia i wieku badanego.

Pomiar w odbytnicy służy w badaniach porównawczych jako odniesienie, a termometry obwodowe mierzą temperaturę w jamie ustnej, pod pachą, w uchu lub na czole [12, 60]. Termometr uszny odczytuje promieniowanie podczerwone błony bębenkowej, a skroniowy promieniowanie skóry nad tętnicą skroniową. W metaanalizie 75 badań u 8682 chorych granice zgodności termometrów obwodowych z pomiarem centralnym wynosiły u dorosłych z gorączką od −1,44 do 1,46 °C, a więc wykraczały poza zakres ±0,5 °C uznany za klinicznie dopuszczalny [60]. Wykrywały gorączkę z czułością 64% i swoistością 96% [60].

W metaanalizie sieciowej 46 badań termometr skroniowy miał czułość 0,76 i swoistość 0,96, a uszny 0,77 i 0,98 przy progu 38 °C przyjętym dla rozpoznania gorączki [12]. Średnie wyniki obu tych termometrów nie różniły się istotnie od pomiaru w odbytnicy, ale współczynnik powtarzalności wahał się od 0,53 °C dla termometru skroniowego do 1,2 °C dla pomiaru pod pachą [12]. Autorzy podkreślają, że wynik poniżej 38 °C w pomiarze obwodowym nie wyklucza gorączki [12]. U dorosłych na oddziale intensywnej terapii pomiary pod pachą, w uchu i czujnikiem skórnym zaniżały temperaturę krwi, a dopuszczalną dokładność miał tylko pomiar w przełyku [61].

Każde miejsce pomiaru ma własny zakres wartości prawidłowych i własną dokładność.

Miejsce pomiaru Zakres u zdrowych dorosłych (średnia ± 2 odchylenia standardowe) Dokładność w rozpoznawaniu gorączki
Odbytnica 36,32–37,76 °C [11] pomiar odniesienia w metaanalizach [12]
Ucho 35,76–37,52 °C [11] czułość 0,77, swoistość 0,98 [12]
Jama ustna 35,73–37,41 °C [11] zgodność z pomiarem centralnym poza zakresem ±0,5 °C, wspólnie z innymi termometrami obwodowymi [60]
Pacha 35,01–36,93 °C [11] najmniejsza powtarzalność [12]
Czoło (skroń) brak danych w przeglądzie czułość 0,76, swoistość 0,96 [12]

Ta sama liczba oznacza więc co innego pod pachą i w odbytnicy, a termometry obwodowe częściej przeoczają gorączkę, niż wskazują ją fałszywie. Na wynik wpływa też pora dnia, bo temperatura jest najniższa rano i najwyższa późnym popołudniem [10]. Zakłóca go również wiek, bo u osób po 60. roku życia temperatura jest średnio niższa [11].

4.2. Na co warto zwrócić uwagę

Pierwsze rozpowszechnione przekonanie głosi, że każdą gorączkę obniża się lekami. W ankiecie przeprowadzonej w 1999 roku wśród 340 opiekunów dzieci w Baltimore 25% podawało leki przeciwgorączkowe przy temperaturze poniżej 37,8 °C, a 85% budziło dziecko, by je podać [15]. Badania z randomizacją nie potwierdzają, że samo obniżenie temperatury poprawia rokowanie. W metaanalizie 42 badań u 5140 dorosłych z gorączką leczenie przeciwgorączkowe lekami, chłodzeniem lub obiema metodami nie zmieniało ryzyka zgonu (ryzyko względne 1,04, 95-procentowy przedział ufności 0,90–1,19) ani ryzyka poważnych zdarzeń niepożądanych [62]. Pewność tych wniosków oceniono jako wysoką, choć wszystkie włączone badania miały wysokie ryzyko błędu systematycznego [62].

Zgodny z tym jest wynik badania HEAT (ang. Permissive Hyperthermia through Avoidance of Paracetamol in Known or Suspected Infection), w którym 700 chorych oddziałów intensywnej terapii z gorączką i zakażeniem otrzymywało paracetamol lub placebo. Liczba dni bez pobytu na oddziale do 28. dnia wyniosła 23 wobec 22, a do 90. dnia zmarło 15,9% wobec 16,6% chorych [63]. U dzieci po drgawkach gorączkowych ibuprofen, diklofenak i paracetamol podawane w kolejnych epizodach gorączki nie zmniejszały istotnie odsetka nawrotów drgawek [64]. Korzyść z obniżenia temperatury opisano natomiast w wybranych stanach ciężkich, takich jak wstrząs septyczny, w których gorączka zwiększa zapotrzebowanie na tlen [45, 56].

Drugie przekonanie głosi, że gorączka uszkadza mózg. W tej samej ankiecie 21% opiekunów wymieniło uszkodzenie mózgu jako skutek gorączki, a 7% sądziło, że nieleczona gorączka może dojść do 43,4 °C lub więcej [15]. Przekonanie to przenosi na gorączkę skutki hipertermii, w której temperatura przekracza nastawę podwzgórza, a uszkodzenia narządów przez ciepło opisano przede wszystkim w tym drugim stanie, na przykład w udarze cieplnym [6, 7]. Drgawki gorączkowe, najczęstszy powód tego niepokoju u dzieci, mają zwykle łagodny przebieg i rzadko pozostawiają odległe następstwa [46].

Trzecie przekonanie zakłada, że wysokość gorączki odróżnia zakażenie bakteryjne od wirusowego. Badania kliniczne porównują zwykle ciężkie zakażenie bakteryjne z pozostałymi przyczynami gorączki, a ich wyniki zależą od wieku dziecka. W przeglądzie systematycznym 11 badań temperatura powyżej 40 °C wiązała się z większym ryzykiem ciężkiego zakażenia bakteryjnego u niemowląt do 3. miesiąca życia (iloraz szans 6,3), a u starszych dzieci ryzyko to było tylko nieznacznie wyższe [65]. W badaniu 1057 gorączkujących niemowląt do 90. dnia życia temperatura co najmniej 39 °C wykrywała ciężkie zakażenie bakteryjne z czułością 15,5% i swoistością 90,4% [66]. U 15,5% niemowląt z takim zakażeniem temperatura przy wstępnej ocenie wynosiła 38 °C lub mniej [66]. Wysokość temperatury niesie więc informację o ryzyku, ale sama nie rozstrzyga o rodzaju zakażenia u konkretnego chorego.

Ograniczeniem wiedzy o gorączce jest pochodzenie danych mechanistycznych. Rolę IL-6, mPGES-1, receptora EP3 i antypiretyków endogennych ustalono głównie na gryzoniach, w tym na myszach pozbawionych poszczególnych genów [27, 29, 32, 33]. Wyniki te wyjaśniają przebieg gorączki u gryzoni, a u ludzi potwierdzono je głównie pośrednio, przez działanie przeciwgorączkowe leków hamujących syntezę prostaglandyn i przez gorączkę po podaniu rekombinowanej interleukiny 1 [13, 35]. Gorączka jest objawem, a nie rozpoznaniem, i jej przyczynę u konkretnego chorego ocenia lekarz, a opis mechanizmu i wyników badań nie zastępuje konsultacji lekarskiej.

Najważniejsze ustalenia - Gorączka

Gorączka u myszy nie wymaga brunatnej tkanki tłuszczowej: zwierzęta bez białka rozprzęgającego 1 gorączkowały po lipopolisacharydzie bakteryjnym tak samo jak typowe, a ciepło zatrzymywał skurcz naczyń obwodowych [34]. Gorączka występuje także u zwierząt zmiennocieplnych, a zakażone bakteriami jaszczurki Dipsosaurus dorsalis przeżywały częściej, gdy przebywały w wyższej temperaturze otoczenia [24]. Gorączka zależy u myszy od jednego enzymu śródbłonka naczyń mózgu: bez mikrosomalnej syntazy prostaglandyny E 1 zwierzęta nie gorączkowały po lipopolisacharydzie, choć reagowały na prostaglandynę E2…

Dostęp dla subskrybentów
Ta treść jest dostępna po zalogowaniu.
Masz już konto? Zaloguj się
Wykup dostęp

Źródła wyszukane w PubMed (NLM/NCBI). Przy każdej pozycji podano identyfikator PMID i odnośnik DOI.

  1. Saper CB, Breder CD. The neurologic basis of fever. N Engl J Med. 1994;330(26):1880-6. DOI · PMID: 7832832
  2. Nakamura K. Central circuitries for body temperature regulation and fever. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2011;301(5):R1207-28. DOI · PMID: 21900642
  3. Morrison SF, Nakamura K. Central mechanisms for thermoregulation. Annu Rev Physiol. 2019;81:285-308. DOI · PMID: 30256726
  4. Gabay C, Kushner I. Acute-phase proteins and other systemic responses to inflammation. N Engl J Med. 1999;340(6):448-54. DOI · PMID: 9971870
  5. Evans SS, Repasky EA, Fisher DT. Fever and the thermal regulation of immunity: the immune system feels the heat. Nat Rev Immunol. 2015;15(6):335-49. DOI · PMID: 25976513
  6. Walter EJ, Hanna-Jumma S, Carraretto M, Forni L. The pathophysiological basis and consequences of fever. Crit Care. 2016;20(1):200. DOI · PMID: 27411542
  7. Epstein Y, Yanovich R. Heatstroke. N Engl J Med. 2019;380(25):2449-2459. DOI · PMID: 31216400
  8. Gonsalves SG, Dirksen RT, Sangkuhl K, Pulk R, Alvarellos M, Vo T, et al. Clinical Pharmacogenetics Implementation Consortium (CPIC) guideline for the use of potent volatile anesthetic agents and succinylcholine in the context of RYR1 or CACNA1S genotypes. Clin Pharmacol Ther. 2019;105(6):1338-1344. DOI · PMID: 30499100
  9. Tormoehlen LM, Rusyniak DE. Neuroleptic malignant syndrome and serotonin syndrome. Handb Clin Neurol. 2018;157:663-675. DOI · PMID: 30459031
  10. Mackowiak PA, Wasserman SS, Levine MM. A critical appraisal of 98.6 degrees F, the upper limit of the normal body temperature, and other legacies of Carl Reinhold August Wunderlich. JAMA. 1992;268(12):1578-80. PMID: 1302471
  11. Geneva II, Cuzzo B, Fazili T, Javaid W. Normal body temperature: a systematic review. Open Forum Infect Dis. 2019;6(4):ofz032. DOI · PMID: 30976605
  12. Pecoraro V, Petri D, Costantino G, Squizzato A, Moja L, Virgili G, et al. The diagnostic accuracy of digital, infrared and mercury-in-glass thermometers in measuring body temperature: a systematic review and network meta-analysis. Intern Emerg Med. 2021;16(4):1071-1083. DOI · PMID: 33237494
  13. Dinarello CA. Infection, fever, and exogenous and endogenous pyrogens: some concepts have changed. J Endotoxin Res. 2004;10(4):201-22. DOI · PMID: 15373964
  14. Wright WF, Wang J, Auwaerter PG. Fever of unknown origin (FUO) criteria influences diagnostic outcomes: a systematic review and meta-analysis. Am J Med. 2024;137(12):1246-1254.e6. DOI · PMID: 39069200
  15. Crocetti M, Moghbeli N, Serwint J. Fever phobia revisited: have parental misconceptions about fever changed in 20 years? Pediatrics. 2001;107(6):1241-6. DOI · PMID: 11389237
  16. Roth J, Blatteis CM. Mechanisms of fever production and lysis: lessons from experimental LPS fever. Compr Physiol. 2014;4(4):1563-604. DOI · PMID: 25428854
  17. Blatteis CM. Role of the OVLT in the febrile response to circulating pyrogens. Prog Brain Res. 1992;91:409-12. DOI · PMID: 1384084
  18. Laflamme N, Rivest S. Effects of systemic immunogenic insults and circulating proinflammatory cytokines on the transcription of the inhibitory factor kappaB alpha within specific cellular populations of the rat brain. J Neurochem. 1999;73(1):309-21. DOI · PMID: 10386984
  19. Quan N, He L, Lai W. Endothelial activation is an intermediate step for peripheral lipopolysaccharide induced activation of paraventricular nucleus. Brain Res Bull. 2003;59(6):447-52. DOI · PMID: 12576141
  20. Mackowiak PA, Worden G. Carl Reinhold August Wunderlich and the evolution of clinical thermometry. Clin Infect Dis. 1994;18(3):458-67. DOI · PMID: 8011836
  21. Protsiv M, Ley C, Lankester J, Hastie T, Parsonnet J. Decreasing human body temperature in the United States since the industrial revolution. Elife. 2020;9:e49555. DOI · PMID: 31908267
  22. Beeson PB. Temperature-elevating effect of a substance obtained from polymorphonuclear leucocytes. J Clin Invest. 1948;27(4):524. PMID: 18939147
  23. Vaughn LK, Bernheim HA, Kluger MJ. Fever in the lizard Dipsosaurus dorsalis. Nature. 1974;252(5483):473-4. DOI · PMID: 4431469
  24. Kluger MJ, Ringler DH, Anver MR. Fever and survival. Science. 1975;188(4184):166-8. PMID: 1114347
  25. Poltorak A, He X, Smirnova I, Liu MY, Van Huffel C, Du X, et al. Defective LPS signaling in C3H/HeJ and C57BL/10ScCr mice: mutations in Tlr4 gene. Science. 1998;282(5396):2085-8. DOI · PMID: 9851930
  26. Lee JJ, Huang WT, Shao DZ, Liao JF, Lin MT. Blocking NF-kappaB activation may be an effective strategy in the fever therapy. Jpn J Physiol. 2003;53(5):367-75. DOI · PMID: 14975183
  27. Leon LR, Kozak W, Rudolph K, Kluger MJ. An antipyretic role for interleukin-10 in LPS fever in mice. Am J Physiol. 1999;276(1):R81-9. DOI · PMID: 9887180
  28. Eskilsson A, Shionoya K, Engblom D, Blomqvist A. Fever during localized inflammation in mice is elicited by a humoral pathway and depends on brain endothelial interleukin-1 and interleukin-6 signaling and central EP3 receptors. J Neurosci. 2021;41(24):5206-5218. DOI · PMID: 33941650
  29. Chai Z, Gatti S, Toniatti C, Poli V, Bartfai T. Interleukin (IL)-6 gene expression in the central nervous system is necessary for fever response to lipopolysaccharide or IL-1 beta: a study on IL-6-deficient mice. J Exp Med. 1996;183(1):311-6. DOI · PMID: 8551238
  30. Goldbach JM, Roth J, Zeisberger E. Fever suppression by subdiaphragmatic vagotomy in guinea pigs depends on the route of pyrogen administration. Am J Physiol. 1997;272(2 Pt 2):R675-81. DOI · PMID: 9124494
  31. Anderson BJ. Paracetamol (Acetaminophen): mechanisms of action. Paediatr Anaesth. 2008;18(10):915-21. DOI · PMID: 18811827
  32. Engblom D, Saha S, Engström L, Westman M, Audoly LP, Jakobsson PJ, et al. Microsomal prostaglandin E synthase-1 is the central switch during immune-induced pyresis. Nat Neurosci. 2003;6(11):1137-8. DOI · PMID: 14566340
  33. Lazarus M, Yoshida K, Coppari R, Bass CE, Mochizuki T, Lowell BB, et al. EP3 prostaglandin receptors in the median preoptic nucleus are critical for fever responses. Nat Neurosci. 2007;10(9):1131-3. DOI · PMID: 17676060
  34. Eskilsson A, Shionoya K, Enerbäck S, Engblom D, Blomqvist A. The generation of immune-induced fever and emotional stress-induced hyperthermia in mice does not involve brown adipose tissue thermogenesis. FASEB J. 2020;34(4):5863-5876. DOI · PMID: 32144818
  35. Vane JR, Botting RM. The mechanism of action of aspirin. Thromb Res. 2003;110(5-6):255-8. DOI · PMID: 14592543
  36. Okamatsu-Ogura Y, Kitao N, Kimura K, Saito M. Brown fat UCP1 is not involved in the febrile and thermogenic responses to IL-1beta in mice. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2007;292(4):E1135-9. DOI · PMID: 17164436
  37. Roth J, De Souza GE. Fever induction pathways: evidence from responses to systemic or local cytokine formation. Braz J Med Biol Res. 2001;34(3):301-14. DOI · PMID: 11262580
  38. Coelho MM, Luheshi G, Hopkins SJ, Pelá IR, Rothwell NJ. Multiple mechanisms mediate antipyretic action of glucocorticoids. Am J Physiol. 1995;269(3 Pt 2):R527-35. DOI · PMID: 7573552
  39. Soares DM, Cristofoletti R, Melo MC, Lindsey CJ, Veiga-Souza FH, Fabricio AS, et al. Cyclooxygenase-independent mechanism of ibuprofen-induced antipyresis: the role of central vasopressin V1 receptors. Fundam Clin Pharmacol. 2011;25(6):670-81. DOI · PMID: 21077948
  40. Sinha PS, Schiöth HB, Tatro JB. Roles of the melanocortin-4 receptor in antipyretic and hyperthermic actions of centrally administered alpha-MSH. Brain Res. 2004;1001(1-2):150-8. DOI · PMID: 14972664
  41. Szekely M, Petervari E, Szelenyi Z. Orexigenic vs. anorexigenic peptides and feeding status in the modulation of fever and hypothermia. Front Biosci. 2004;9:2746-63. DOI · PMID: 15353311
  42. Gorgoni B, Caivano M, Arizmendi C, Poli V. The transcription factor C/EBPbeta is essential for inducible expression of the cox-2 gene in macrophages but not in fibroblasts. J Biol Chem. 2001;276(44):40769-77. DOI · PMID: 11522796
  43. Imeri L, Opp MR. How (and why) the immune system makes us sleep. Nat Rev Neurosci. 2009;10(3):199-210. DOI · PMID: 19209176
  44. Szentirmai É, Kapás L. Brown adipose tissue plays a central role in systemic inflammation-induced sleep responses. PLoS One. 2018;13(5):e0197409. DOI · PMID: 29746591
  45. Manthous CA, Hall JB, Olson D, Singh M, Chatila W, Pohlman A, et al. Effect of cooling on oxygen consumption in febrile critically ill patients. Am J Respir Crit Care Med. 1995;151(1):10-4. DOI · PMID: 7812538
  46. Sawires R, Buttery J, Fahey M. A review of febrile seizures: recent advances in understanding of febrile seizure pathophysiology and commonly implicated viral triggers. Front Pediatr. 2022;9:801321. DOI · PMID: 35096712
  47. Norman DC. Fever in the elderly. Clin Infect Dis. 2000;31(1):148-51. DOI · PMID: 10913413
  48. Kushimoto S, Gando S, Saitoh D, Mayumi T, Ogura H, Fujishima S, et al. The impact of body temperature abnormalities on the disease severity and outcome in patients with severe sepsis: an analysis from a multicenter, prospective survey of severe sepsis. Crit Care. 2013;17(6):R271. DOI · PMID: 24220071
  49. High KP, Bradley SF, Gravenstein S, Mehr DR, Quagliarello VJ, Richards C, et al. Clinical practice guideline for the evaluation of fever and infection in older adult residents of long-term care facilities: 2008 update by the Infectious Diseases Society of America. Clin Infect Dis. 2009;48(2):149-71. DOI · PMID: 19072244
  50. Petersdorf RG, Beeson PB. Fever of unexplained origin: report on 100 cases. Medicine (Baltimore). 1961;40:1-30. DOI · PMID: 13734791
  51. Durack DT, Street AC. Fever of unknown origin–reexamined and redefined. Curr Clin Top Infect Dis. 1991;11:35-51. PMID: 1651090
  52. Betrains A, Moreel L, De Langhe E, Blockmans D, Vanderschueren S. Rheumatic disorders among patients with fever of unknown origin: a systematic review and meta-analysis. Semin Arthritis Rheum. 2022;56:152066. DOI · PMID: 35868032
  53. Ben-Zvi I, Kukuy O, Giat E, Pras E, Feld O, Kivity S, et al. Anakinra for colchicine-resistant familial Mediterranean fever: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial. Arthritis Rheumatol. 2017;69(4):854-862. DOI · PMID: 27860460
  54. Belay ED, Bresee JS, Holman RC, Khan AS, Shahriari A, Schonberger LB. Reye’s syndrome in the United States from 1981 through. 1997. DOI · PMID: 10228187
  55. Meremikwu M, Oyo-Ita A. Physical methods for treating fever in children. Cochrane Database Syst Rev. 2003;(2):CD004264. DOI · PMID: 12804512
  56. Schortgen F, Clabault K, Katsahian S, Devaquet J, Mercat A, Deye N, et al. Fever control using external cooling in septic shock: a randomized controlled trial. Am J Respir Crit Care Med. 2012;185(10):1088-95. DOI · PMID: 22366046
  57. Thamlikitkul V, Dechatiwongse T, Theerapong S, Chantrakul C, Boonroj P, Punkrut W, et al. Efficacy of Andrographis paniculata, Nees for pharyngotonsillitis in adults. J Med Assoc Thai. 1991;74(10):437-42. PMID: 1797953
  58. Mascolo N, Jain R, Jain SC, Capasso F. Ethnopharmacologic investigation of ginger (Zingiber officinale). J Ethnopharmacol. 1989;27(1-2):129-40. DOI · PMID: 2615416
  59. Hawkins J, Baker C, Cherry L, Dunne E. Black elderberry (Sambucus nigra) supplementation effectively treats upper respiratory symptoms: a meta-analysis of randomized, controlled clinical trials. Complement Ther Med. 2019;42:361-365. DOI · PMID: 30670267
  60. Niven DJ, Gaudet JE, Laupland KB, Mrklas KJ, Roberts DJ, Stelfox HT. Accuracy of peripheral thermometers for estimating temperature: a systematic review and meta-analysis. Ann Intern Med. 2015;163(10):768-77. DOI · PMID: 26571241
  61. Cutuli SL, See EJ, Osawa EA, Ancona P, Marshall D, Eastwood GM, et al. Accuracy of non-invasive body temperature measurement methods in adult patients admitted to the intensive care unit: a systematic review and meta-analysis. Crit Care Resusc. 2021;23(1):6-13. DOI · PMID: 38046384
  62. Holgersson J, Ceric A, Sethi N, Nielsen N, Jakobsen JC. Fever therapy in febrile adults: systematic review with meta-analyses and trial sequential analyses. BMJ. 2022;378:e069620. DOI · PMID: 35820685
  63. Young P, Saxena M, Bellomo R, Freebairn R, Hammond N, van Haren F, et al. Acetaminophen for fever in critically ill patients with suspected infection. N Engl J Med. 2015;373(23):2215-24. DOI · PMID: 26436473
  64. Offringa M, Newton R, Nevitt SJ, Vraka K. Prophylactic drug management for febrile seizures in children. Cochrane Database Syst Rev. 2021;6(6):CD003031. DOI · PMID: 34131913
  65. Rosenfeld-Yehoshua N, Barkan S, Abu-Kishk I, Booch M, Suhami R, Kozer E. Hyperpyrexia and high fever as a predictor for serious bacterial infection (SBI) in children – a systematic review. Eur J Pediatr. 2018;177(3):337-344. DOI · PMID: 29387980
  66. Tan VSR, Ong GY, Lee KP, Ganapathy S, Chong SL. Pyrexia in a young infant – is height of fever associated with serious bacterial infection? BMC Pediatr. 2022;22(1):188. DOI · PMID: 35395789

Podobne wpisy