Encyklopedia

Interferony

Interferony to rodzina cytokin wydzielanych przez komórki w odpowiedzi na zakażenie. Przestawiają komórki sąsiednie na obronę przeciwwirusową, pobudzają komórki żerne i kierują odpowiedzią immunologiczną. Od ich sprawności zależy, czy zakażenie zostanie ograniczone, a ich nadmiar napędza choroby autoimmunizacyjne.
Poziom:
Czas czytania:
39 MIN
Ostatnia aktualizacja: 1 października, 2026
Interferony — Sygnał ostrzegawczy między komórkami
Udostępnij:
Spis Treści

W skrócie

  • Czym są interferony?
    Interferony to białka sygnałowe układu odpornościowego, wydzielane przez komórki po rozpoznaniu materiału genetycznego wirusa. Zmuszają komórki sąsiednie do włączenia genów, które utrudniają namnażanie się wirusa.
  • Jakie są rodzaje interferonów?
    Interferony dzielą się na trzy typy według receptora, przez który działają. Typ pierwszy obejmuje interferony alfa i beta, typ drugi interferon gamma, a typ trzeci interferony lambda.
  • Jak działają interferony?
    Interferony wiążą receptor na powierzchni komórki i uruchamiają szlak, w którym białka przenoszące sygnał docierają do jądra i włączają geny obronne. Powstające białka utrudniają kolejne etapy namnażania się wirusa.
  • Za co odpowiada interferon gamma?
    Interferon gamma pobudza makrofagi, czyli komórki żerne, do zabijania drobnoustrojów żyjących wewnątrz komórek, takich jak prątki. Jest on wytwarzany przez limfocyty i komórki NK.
  • Czy interferon jest lekiem?
    Interferony są stosowane jako leki w postaci białek wytwarzanych metodami inżynierii genetycznej. Interferon beta służy w leczeniu stwardnienia rozsianego, interferon alfa stosowano w zapaleniu wątroby i w nowotworach, a interferon gamma w przewlekłej chorobie ziarniniakowej.
  • Czy interferony mogą szkodzić?
    Nadmierne i długotrwałe działanie interferonów uszkadza tkanki i wywołuje objawy ogólne: zmęczenie, brak łaknienia, bóle i spadek nastroju. Stałe pobudzenie tego szlaku leży u podstaw chorób nazwanych interferonopatiami.
  • Co mierzy test QuantiFERON?
    Test QuantiFERON mierzy ilość interferonu gamma uwolnionego przez limfocyty krwi po kontakcie z antygenami prątka gruźlicy. Wynik dodatni świadczy o kontakcie z patogenem, nie rozstrzyga natomiast, czy gruźlica jest czynna.

1. Charakterystyka interferonów

1.1. Definicja i klasyfikacja

Interferony (ang. interferons, IFN) to rodzina cytokin, czyli białek sygnałowych, które komórki wydzielają w odpowiedzi na zakażenie i które przestawiają komórki sąsiednie na obronę przeciwwirusową [1]. Są mediatorami odporności nieswoistej, a ich trzy główne działania obejmują hamowanie namnażania wirusów, ograniczanie podziałów komórkowych i modulowanie odpowiedzi immunologicznej [1]. Nazwa pochodzi od interferencji wirusów. Tak nazwano zjawisko, w którym tkanka zakażona jednym wirusem opiera się zakażeniu drugim [2]. Substancję odpowiedzialną za to zjawisko wyodrębnili z błon zarodka kurzego i nazwali interferonem Isaacs i Lindenmann w 1957 roku [2].

Podstawą podziału rodziny jest receptor, przez który dana cząsteczka działa [1]. Typ I liczy najwięcej przedstawicieli: trzynaście podtypów IFN-α oraz IFN-β, IFN-ε, IFN-κ i IFN-ω, a wszystkie wiążą ten sam receptor IFNAR [1, 3]. Typ II ma jednego przedstawiciela, interferon gamma (IFN-γ), który działa przez receptor IFNGR [4]. Typ III tworzą interferony lambda (IFN-λ1–λ4) rozpoznawane przez receptor złożony z podjednostek IFNLR1 i IL-10R2 [5, 6]. Rozmieszczenie receptora decyduje o tym, które komórki odpowiedzą na sygnał. Podział według receptora pokrywa się zatem z podziałem według zasięgu działania [7].

Interferony bywają mylone z trzema grupami pojęć, a kryterium różnicującym jest receptor i program genów uruchamiany w komórce odpowiadającej. Granica wobec interleukin jest umowna, bo interferonom lambda nadano przy odkryciu również nazwy IL-29, IL-28A i IL-28B [5]. O zaliczeniu ich do interferonów zdecydowało to, że wzbudzają w komórce stan przeciwwirusowy przez ten sam szlak wewnątrzkomórkowy, co pierwszy typ rodziny [5, 7]. Część chemokin powstaje pod wpływem interferonów [8]. Chemokiny działają jednak przez receptory sprzężone z białkami G i sterują wędrówką leukocytów, a nie stanem przeciwwirusowym komórki. Interferony podawane jako leki to białka rekombinowane, wytworzone w komórkach z wprowadzonym genem ludzkim, a część z nich jest połączona z glikolem polietylenowym [9]. Takie połączenie, nazywane pegylacją, wydłuża czas krążenia białka we krwi i nie zmienia receptora, na który ono działa [9].

Zakres pojęcia obejmuje zarówno cząsteczki powstające w organizmie, jak i ich odpowiedniki lekowe. Nie obejmuje natomiast białek kodowanych przez geny pobudzane interferonem, które wykonują jego sygnał, ale same interferonami nie są [10]. O znaczeniu tej rodziny mówi zakres następstw jej niesprawności. Przeciwciała neutralizujące interferony typu I stwierdzono u co najmniej 101 z 987 chorych z zapaleniem płuc zagrażającym życiu w przebiegu COVID-19 [3]. Stałe, niekontrolowane pobudzenie tego samego szlaku leży u podstaw grupy chorób dziedzicznych nazwanych interferonopatiami typu I [11].

1.2. Budowa i różnice między postaciami

Interferony są niewielkimi białkami wydzielanymi na zewnątrz komórki, a wszystkie trzy typy rozpoznają receptory z rodziny receptorów cytokin klasy II, zbudowane z dwóch różnych podjednostek [5]. Różnice między postaciami dotyczą czterech cech: liczby podtypów, siły wiązania z receptorem, komórek wytwarzających i rozmieszczenia receptora w tkankach [7, 12].

Typ I jest grupą najliczniejszą, a mimo to korzysta z jednego receptora. Poszczególne podtypy wiążą go z różną siłą, dlatego ta sama komórka odpowiada na IFN-β inaczej niż na IFN-α [12]. Komórka uruchamia przy tym w obu przypadkach ten sam szlak wewnątrzkomórkowy [12]. Silniejsze wiązanie utrzymuje sygnał dłużej i pozwala uruchomić geny wymagające przedłużonego pobudzenia, takie jak geny hamujące podziały komórki [12]. Z tego powodu o skutku decyduje nie tyle rodzaj podtypu, ile stężenie ligandu i czas kontaktu z receptorem [12].

Dwa przedstawiciele typu I odbiegają od pozostałych sposobem wytwarzania. IFN-ε powstawał w nabłonku dróg rodnych myszy stale, niezależnie od receptorów rozpoznających wzorce drobnoustrojów, a jego ilość zmieniała się wraz z fazą cyklu hormonalnego [13]. Myszy pozbawione genu tego interferonu były bardziej podatne na zakażenie wirusem opryszczki i chlamydiami [13]. Rola IFN-ε u człowieka pozostaje hipotezą wyprowadzoną z modelu zwierzęcego [13]. IFN-κ opisano natomiast jako interferon wytwarzany w naskórku [7].

IFN-γ różni się od typu I już na poziomie budowy cząsteczki i genu. Działa jako dimer, czyli cząsteczka złożona z dwóch identycznych łańcuchów, a jego gen ma budowę odmienną od genów pierwszego typu [4]. Wytwarzają go prawie wyłącznie komórki układu odpornościowego, a nie każda komórka zakażona [4]. Nazwa „interferon” utrzymała się dla niego z powodu działania przeciwwirusowego, jednak jego zasadniczą rolą jest pobudzanie makrofagów i sterowanie odpowiedzią swoistą [14, 15].

Typ III wyróżnia się rozmieszczeniem receptora, ponieważ podjednostka IFNLR1 występuje obficie w nabłonkach przewodu pokarmowego i dróg oddechowych, a w ośrodkowym układzie nerwowym i w śledzionie prawie jej nie ma [16]. W badaniu na myszach odpowiedź na IFN-λ ograniczała się w nerce i mózgu do komórek nabłonkowych [16]. Odpowiedź na typ I obejmowała tam wiele rodzajów komórek, najsilniej śródbłonek [16]. Stąd pochodzi opis podziału pracy między typami, w którym typ III chroni powierzchnie graniczne z niewielkim udziałem zapalenia, a typ I wchodzi do działania, gdy obrona miejscowa zawodzi [7].

Czwarty przedstawiciel typu III, IFN-λ4, istnieje tylko u części ludzi. Jego gen powstaje wskutek wariantu dwunukleotydowego położonego przed genem IFNL3, który przesuwa ramkę odczytu i tworzy nowe białko [6]. Osoby mające ten wariant gorzej usuwały wirusa zapalenia wątroby typu C [6]. Różnica częstości sprzężonego z nim polimorfizmu w pobliżu genu interferonu lambda 3 wyjaśniała około połowy różnicy w odpowiedzi na leczenie interferonem między chorymi pochodzenia europejskiego i afrykańskiego [6, 17].

1.3. Rys historyczny

Zjawisko odporności tkanki na drugi wirus po kontakcie z pierwszym opisywano przed 1957 rokiem bez wskazania jego przyczyny. Przyjmowano wtedy, że pierwszy wirus zajmuje miejsce wiązania albo wyczerpuje zasoby komórki, więc drugi nie ma już czym się namnażać. Isaacs i Lindenmann wykazali, że za zjawisko odpowiada substancja wydzielana przez komórki błony omoczniowo-kosmówkowej zarodka kurzego [2]. Powstawała ona po kontakcie z inaktywowanym wirusem grypy, a badacze nazwali ją interferonem [2]. Rozstrzygnięcie polegało na tym, że sam płyn z takiej hodowli, przeniesiony na nową tkankę bez wirusa, chronił ją przed zakażeniem [2]. Obrona przeciwwirusowa okazała się działaniem wydzielanego białka, nie skutkiem zajęcia komórki przez pierwszego wirusa [18].

Kolejne dwie dekady przyniosły rozpoznanie, że interferon nie jest jedną cząsteczką. Wyodrębniono postacie różniące się pochodzeniem komórkowym i stabilnością w niskim pH, od czego wzięły się nazwy IFN-α, IFN-β i IFN-γ [1]. Odrębność IFN-γ potwierdziły prace nad pobudzaniem makrofagów. Nathan i współpracownicy wykazali w 1983 roku, że makrofagi do wytwarzania nadtlenku wodoru i zabijania toksoplazmy pobudza właśnie IFN-γ, a przeciwciało przeciw tej cząsteczce znosiło całe to działanie [14]. Przedtem czynnik pobudzający makrofagi uważano za osobną substancję, nieutożsamianą z interferonem [14].

Trzecim rozstrzygnięciem było ustalenie, która komórka wytwarza interferon typu I w największej ilości. Od lat osiemdziesiątych znano we krwi rzadkie komórki o dużej zdolności do wytwarzania interferonu. Nie udawało się ich jednak zaliczyć do żadnej znanej linii komórkowej [19]. Siegal i współpracownicy wykazali w 1999 roku, że są to prekursory komórek dendrytycznych, nazwane później plazmacytoidalnymi komórkami dendrytycznymi [19]. Po zetknięciu z drobnoustrojem wytwarzały one od 200 do 1000 razy więcej interferonu niż pozostałe komórki krwi [19].

Typ III odkryto dopiero w 2003 roku, gdy Kotenko i współpracownicy opisali trzy pokrewne białka kodowane przez geny chromosomu 19 i wskazali ich odrębny receptor [5]. Autorzy opisali ten układ jako drogę obrony przeciwwirusowej podobną do interferonów typu I, lecz od nich niezależną [5].

1.4. Synteza i źródła

Interferony nie są gromadzone na zapas, lecz powstają dopiero po rozpoznaniu zagrożenia, a ich geny milczą w komórce spoczynkowej [20]. Źródło zależy od typu: interferon typu I potrafi wytworzyć niemal każda komórka zakażona, IFN-γ wytwarzają komórki układu odpornościowego, a IFN-λ przede wszystkim nabłonki [4, 7].

Bodźcem do syntezy interferonu typu I jest kwas nukleinowy wykryty w miejscu dla niego niewłaściwym. Dwuniciowy RNA i RNA z wolną grupą trifosforanową w cytoplazmie rozpoznają białka RIG-I i MDA5, które po związaniu liganda łączą się z białkiem MAVS na błonie mitochondrium [21]. DNA w cytoplazmie wykrywa enzym cGAS i wytwarza wtedy cykliczny GMP-AMP. Ten mały przekaźnik wiąże białko STING w błonie siateczki endoplazmatycznej [22]. Oba szlaki zbiegają się na kinazie TBK1, która fosforyluje czynniki transkrypcyjne IRF3 i IRF7 [21, 22]. Ufosforylowany czynnik przemieszcza się do jądra i uruchamia geny IFN-β oraz IFN-α [23]. Z takiej budowy czujników wynika, że komórka wytwarza interferon nie po zetknięciu z cząstką wirusa, lecz po wykryciu jego materiału genetycznego w cytoplazmie.

Drugą drogą indukcji są receptory Toll-podobne w pęcherzykach wewnątrzkomórkowych, zwłaszcza TLR7 i TLR9, rozpoznające odpowiednio jednoniciowy RNA i DNA bogaty w niemetylowane motywy CpG [23]. Myszy pozbawione genu Irf7 traciły zdolność do wytwarzania interferonu obiema drogami [23]. Były przy tym bardziej podatne na zakażenia wirusowe niż zwierzęta pozbawione białka adaptorowego MyD88 [23]. IRF7 jest więc czynnikiem, bez którego nie powstaje ani miejscowa, ani układowa odpowiedź interferonowa [23].

Głównym źródłem IFN-α we krwi są plazmacytoidalne komórki dendrytyczne, stanowiące niewielki odsetek krążących leukocytów [19, 24]. Ich przewaga wynika z dużej, utrzymywanej stale ilości IRF7 i z rozbudowanego aparatu wydzielniczego [24]. Dzięki temu wytwarzają interferon w ciągu kilku godzin od kontaktu z kwasem nukleinowym wirusa [24]. Komórki dendrytyczne innych podtypów oraz komórki nabłonka i fibroblasty wytwarzają interferon typu I w mniejszej ilości, ale w miejscu zakażenia [16, 24].

IFN-γ powstaje w innym układzie zależności, bo wytwarzają go głównie limfocyty pomocnicze Th1, limfocyty cytotoksyczne i komórki NK [4]. Bodźcem jest rozpoznanie antygenu albo cytokiny wydzielone przez makrofagi, przede wszystkim IL-12 i IL-18 [4]. Powstaje w ten sposób pętla: makrofag pobudzony drobnoustrojem wydziela IL-12, limfocyt odpowiada wydzielaniem IFN-γ, a ten wzmaga zdolność makrofaga do zabijania drobnoustrojów [4, 14]. Sprawność tej pętli zależy od nienaruszonej osi IL-12 i IFN-γ. Dowodzą tego wrodzone defekty jej elementów, prowadzące do zakażeń prątkami o małej zjadliwości [25].

Wytwarzanie IFN-λ jest uruchamiane przez te same receptory rozpoznające kwasy nukleinowe, ale zachodzi w innych tkankach. W badaniu na myszach zakażenie wirusami RNA nasilało ekspresję genów IFN-λ w wątrobie [16]. W mózgu odpowiedź obejmowała niemal wyłącznie interferon pierwszego typu [16]. Takie rozdzielenie źródeł odpowiada podziałowi pracy między typami, w którym powierzchnie graniczne bronią się głównie przy udziale interferonów lambda [7].

Interferony — Jak komórka wykrywa zakażenie
Jak komórka wykrywa zakażenie
Komórka wykrywa zakażenie trzema rodzajami czujników — na błonie, w pęcherzyku i w cytozolu. Każdy rozpoznaje inny rodzaj kwasu nukleinowego.

2. Mechanizm działania i funkcje

2.1. Receptory interferonów

Interferon wydzielony przez komórkę zakażoną nie wnika do komórek sąsiednich. Wiąże receptor na ich powierzchni i dopiero stamtąd przekazuje sygnał do jądra [1]. Każdy z trzech typów ma własny receptor zbudowany z dwóch łańcuchów [1]. Każdy łańcuch jest połączony po stronie wewnętrznej z kinazą tyrozynową z rodziny Janus [5].

Receptor interferonów typu I składa się z podjednostek IFNAR1 i IFNAR2, związanych odpowiednio z kinazami TYK2 i JAK1 [1]. Występuje na praktycznie wszystkich komórkach jądrzastych organizmu, co wyjaśnia zasięg działania tego typu oraz zakres objawów ogólnych przy jego nadmiarze [12]. Siła wiązania poszczególnych podtypów z IFNAR1 różni się wielokrotnie [12]. Właśnie ta podjednostka decyduje o czasie utrzymywania się kompleksu [12]. Stąd wynika zakres działania leków: przeciwciało przeciw IFNAR1 przerywa sygnał wszystkich interferonów pierwszego typu naraz [26].

Receptor IFN-γ tworzą dwa łańcuchy IFNGR1 i dwa IFNGR2, związane z kinazami JAK1 i JAK2 [4]. IFNGR1 występuje na większości komórek stale, natomiast ilość IFNGR2 na powierzchni jest ograniczona i zmienia się wraz ze stanem czynnościowym komórki [4]. Ta druga podjednostka wyznacza zatem, jak silnie dana komórka odpowie na IFN-γ [4]. Reszta cytoplazmatyczna IFNGR1 zawiera ponadto tyrozynę w pozycji 441 [27]. Wiąże ona białko hamujące SOCS1 i służy do wygaszania sygnału [27].

Receptor interferonów lambda jest zbudowany z podjednostki swoistej IFNLR1 i z podjednostki IL-10R2, wspólnej z receptorem interleukiny 10 [5]. Rozmieszczenie IFNLR1 ogranicza odpowiedź na ten typ głównie do nabłonków, najsilniej w żołądku, jelicie i płucach [16]. Interferon lambda uruchamia więc obronę w warstwie komórek, przez którą wirus wchodzi, nie pobudzając przy tym leukocytów w całym organizmie [7].

Punktem uchwytu w rozumieniu farmakologicznym jest w tej rodzinie zarówno receptor, jak i kinaza pod nim. Blokada receptora IFNAR1 przeciwciałem znosi działanie wszystkich interferonów pierwszego typu [26]. Zahamowanie kinaz JAK wycisza natomiast sygnał wszystkich trzech typów oraz wielu innych cytokin korzystających z tych kinaz [28]. Wybiórczość leku zależy od tego, czy działa on na poziomie receptora, czy kinazy wspólnej dla wielu szlaków [28].

2.2. Kaskada sygnałowa

Droga od receptora do jądra jest w rodzinie interferonów wyjątkowo krótka. Ten sam kompleks białkowy odbiera sygnał na błonie, a po ufosforylowaniu przenosi się do jądra i sam wiąże DNA [1]. Szlak nosi nazwę JAK–STAT, od kinaz Janus i białek STAT, czyli przekaźników sygnału i aktywatorów transkrypcji [1].

Stanem wyjściowym jest komórka spoczynkowa z nieaktywnymi kinazami przy obu łańcuchach receptora i z białkami STAT rozproszonymi w cytoplazmie. Bodźcem jest przyłączenie interferonu, które zbliża oba łańcuchy receptora do siebie [1]. Kinazy TYK2 i JAK1 fosforylują wtedy nawzajem swoje tyrozyny [1]. Fosforylują następnie tyrozyny w ogonach receptora, tworząc miejsca przyczepu dla białek STAT [12]. STAT1 i STAT2 przyłączają się do tych miejsc i również zostają ufosforylowane [1]. Ufosforylowana para łączy się z czynnikiem IRF9 w kompleks ISGF3 [1]. Kompleks przechodzi do jądra i wiąże sekwencję ISRE, czyli element odpowiedzi na interferon, obecny w promotorach setek genów [10]. Stanem końcowym jest komórka z włączonym programem genów pobudzanych interferonem. Jedno wiązanie na powierzchni komórki przestawia w ciągu godzin jej metabolizm białkowy na tryb obronny [10].

IFN-γ uruchamia tę samą maszynerię w innym układzie. Po związaniu ligandu kinazy JAK1 i JAK2 fosforylują wyłącznie STAT1, którego dwie cząsteczki tworzą homodimer nazywany czynnikiem GAF [4]. Ten kompleks wiąże w jądrze odmienną sekwencję GAS, czyli element pobudzany przez IFN-γ [4, 15]. Stąd bierze się częściowa odrębność odpowiedzi: zbiory genów uruchamianych przez ISGF3 i przez GAF nakładają się, lecz nie są tożsame [15]. Interferony lambda korzystają z kompleksu ISGF3 tak samo jak interferony alfa i beta [5]. Uruchamiają więc niemal identyczny zestaw genów, tylko w węższym zakresie tkanek [7].

Wykonawcami działania interferonu są białka kodowane przez geny pobudzane interferonem, których u człowieka opisano kilkaset [10]. Pięć rodzin efektorów ma mechanizm opisany najlepiej. Białka Mx są GTPazami rozpoznającymi osłonki nukleokapsydu wirusa i uniemożliwiają jego rozpakowanie [29]. Syntetazy oligoadenylanowe OAS wytwarzają po kontakcie z dwuniciowym RNA krótkie oligoadenylany [29]. Oligoadenylany aktywują rybonukleazę L, która cięcie RNA prowadzi bez rozróżnienia na RNA wirusowy i własny [29]. Kinaza PKR fosforyluje czynnik inicjacji translacji eIF2α i przez to zatrzymuje syntezę białek w komórce [29]. Białko ISG15 przyłącza się kowalencyjnie do białek komórkowych i wirusowych, zmieniając ich czynność i stabilność [10, 29]. Białka IFITM wbudowują się natomiast w błony pęcherzyków i utrudniają zlanie się osłonki wirusa z błoną komórki [10].

Zestawienie tych efektorów pokazuje wspólną cechę odpowiedzi interferonowej.

Efektor Co robi w komórce Etap namnażania wirusa, który blokuje
Białka IFITM zmieniają właściwości błon pęcherzyków wejście i fuzja osłonki z błoną
Białka Mx (GTPazy) wiążą składniki nukleokapsydu rozpakowanie materiału genetycznego
OAS i rybonukleaza L tworzą oligoadenylany, te aktywują nukleazę trwałość RNA wirusowego
Kinaza PKR fosforyluje eIF2α synteza białek wirusowych
ISG15 przyłącza się do białek dojrzewanie i składanie cząstek

Efektory nie atakują jednego białka wirusa, lecz przerywają kolejne etapy jego namnażania, dzięki czemu działają wobec wirusów niespokrewnionych [10, 29]. Cena tej szerokości jest wysoka, bo zatrzymanie translacji i cięcie RNA dotyczy także cząsteczek własnych komórki [29]. To tłumaczy hamowanie podziałów i objawy ogólne przy długim działaniu interferonu [12].

Interferony — Szlak sygnałowy i geny odpowiedzi przeciwwirusowej
Szlak sygnałowy i geny odpowiedzi przeciwwirusowej
Odpowiedź interferonowa włącza kilkaset genów naraz. Sąsiednie komórki przechodzą w stan oporny, zanim wirus do nich dotrze.

2.3. Funkcje interferonów

2.3.1. Obrona przeciwwirusowa

Obrona przeciwwirusowa jest funkcją, od której cała rodzina wzięła nazwę, a jej istotą jest ostrzeganie komórek jeszcze niezakażonych [2]. Komórka, która rozpoznała materiał genetyczny wirusa, wydziela interferon typu I i lambda [10]. Sąsiedztwo odbiera ten sygnał i włącza geny efektorowe, zanim wirus do niego dotrze [10]. Powstaje w ten sposób obszar tkanki bez warunków do namnażania wirusa [29].

Skuteczność tej obrony daje się ocenić po następstwach jej braku. U 23 z 659 chorych z zapaleniem płuc zagrażającym życiu w przebiegu COVID-19 stwierdzono warianty genów szlaku zależnego od TLR3 i IRF7, które znoszą wytwarzanie interferonu w tych komórkach [30]. Fibroblasty tych osób były w hodowli bardziej podatne na zakażenie wirusem SARS-CoV-2 niż komórki osób zdrowych [30]. Obrona interferonowa rozstrzyga zatem nie o samym zakażeniu, lecz o jego dalszym przebiegu.

Zakres tej funkcji ma jednak granice, bo wirusy przełamują obronę interferonową na każdym jej etapie [18]. Hamują rozpoznanie kwasu nukleinowego, przerywają szlak JAK–STAT albo wyłączają pojedyncze białka efektorowe [18]. W zakażeniach przewlekłych długo utrzymujący się interferon typu I wiąże się z osłabieniem odpowiedzi swoistej [31].

2.3.2. Pobudzanie makrofagów

Pobudzanie makrofagów jest zasadniczą funkcją IFN-γ i dotyczy drobnoustrojów, które żyją wewnątrz komórek żernych. Makrofag pochłania prątki czy toksoplazmę, jednak bez sygnału z zewnątrz nie zabija ich skutecznie [14]. IFN-γ zwiększa jego zdolność do wytwarzania reaktywnych form tlenu i nasila przedstawianie antygenu [14]. Przestawia też metabolizm komórki na tor prozapalny, który opisuje się jako pobudzenie klasyczne [15]. W badaniu z 1983 roku rekombinowany IFN-γ zwiększał uwalnianie nadtlenku wodoru przez ludzkie makrofagi niemal dwudziestokrotnie [14]. Odsetek zabitych toksoplazm wzrastał przy tym z 2,6 do 54 procent [14].

Konsekwencją tego działania jest kierunek, w którym rozwija się zapalenie tkanki. Makrofag pobudzony przez IFN-γ staje się mniej wrażliwy na sygnały wyciszające [15]. Utrzymuje stan zapalny dłużej, niż wynikałoby to z samego kontaktu z drobnoustrojem [15]. Ta sama właściwość pozwala opanować zakażenie i przyczynia się do uszkodzenia tkanki w chorobach przewlekłych [15].

2.3.3. Sterowanie odpowiedzią swoistą

Sterowanie odpowiedzią swoistą polega na wpływie interferonów na kierunek, w którym rozwija się odpowiedź limfocytów po rozpoznaniu antygenu [4]. IFN-γ wzmacnia różnicowanie limfocytów pomocniczych w kierunku Th1 i hamuje kierunek Th2 [4]. Nasila też wytwarzanie cząsteczek głównego układu zgodności tkankowej klasy I i II [4]. Więcej takich cząsteczek oznacza lepsze przedstawianie fragmentów białek wirusowych limfocytom T [4].

Interferon typu I wpływa na tę samą odpowiedź inaczej: pobudza dojrzewanie komórek dendrytycznych, wzmacnia pamięć limfocytów cytotoksycznych i podtrzymuje czynność komórek NK [24, 31]. Kierunek działania zależy przy tym od czasu, bo krótkie pobudzenie sprzyja odpowiedzi swoistej, a przedłużone prowadzi do jej wygaszania i do wzrostu stężenia cytokin hamujących [31]. Ten sam sygnał opisuje się zatem jako wzmacniający albo tłumiący, zależnie od czasu działania [12].

2.3.4. Nadzór przeciwnowotworowy

Nadzór przeciwnowotworowy to zdolność układu odpornościowego do rozpoznawania i usuwania komórek zmienionych nowotworowo, a interferony pełnią w nim rolę pośredników [32]. IFN-γ nasila przedstawianie antygenów nowotworowych, hamuje podziały komórek nowotworowych i ogranicza tworzenie naczyń w guzie [32]. Interferon typu I działa głównie na komórki prezentujące antygen i umożliwia im pobudzenie limfocytów cytotoksycznych skierowanych przeciw guzowi [32]. Myszy pozbawione czynności któregokolwiek z tych szlaków tworzyły guzy częściej po podaniu czynnika rakotwórczego, co odnowiło zainteresowanie porzuconą wcześniej koncepcją nadzoru immunologicznego [32].

U ludzi ta funkcja ma odzwierciedlenie w wynikach leczenia. W metaanalizie 14 badań z randomizacją u 8122 chorych z czerniakiem wysokiego ryzyka leczenie uzupełniające interferonem alfa zmniejszało ryzyko nawrotu o 18 procent, a ryzyko zgonu o 11 procent [33]. Wielkość efektu pokazuje granice tej drogi, bo nadzór interferonowy jest wymierny, a samo podanie interferonu nie zastępuje leczenia przeciwnowotworowego [33].

2.4. Regulacja wydzielania

Wydzielanie interferonów jest w warunkach prawidłowych zdarzeniem krótkim, bo stężenie rośnie w ciągu godzin od zakażenia i opada, gdy bodziec zniknie [20]. Zapasu gotowego białka nie ma, więc przebieg ten wynika z kilku warstw regulacji nałożonych na moment jego powstawania [20].

Pierwszą warstwą jest wymóg obecności liganda w miejscu dla niego niewłaściwym. Enzym cGAS odpowiada na DNA w cytoplazmie, a nie na DNA w jądrze [22]. Białko RIG-I rozpoznaje RNA z wolną grupą trifosforanową, jakiej dojrzały RNA komórkowy nie ma [21]. Rozróżnienie własnego od obcego opiera się zatem na położeniu i budowie cząsteczki [22]. Reguła ta zawodzi, gdy własne DNA wydostanie się z mitochondrium albo z uszkodzonego jądra, bo czujnik odpowiada wtedy na materiał własny komórki [22].

Drugą warstwą jest dodatnie sprzężenie ograniczone w czasie, opisane dla samej komórki zakażonej. Pierwsza porcja IFN-β, wydzielona przez komórkę zakażoną, działa na jej własny receptor i zwiększa ilość IRF7 [23]. Kolejne porcje interferonu powstają dzięki temu szybciej i obejmują więcej podtypów IFN-α [20]. Wzmocnienie wymaga sprawnego szlaku JAK–STAT i zanika po jego wyciszeniu [20].

Trzecią warstwą jest wpływ innych cytokin i stanu tkanki, w której komórka się znajduje. Fibroblasty błony maziowej zahamowały w hodowli wytwarzanie IFN-β przez makrofagi pobudzone czynnikiem martwicy nowotworów [8]. Osłabiły przy tym odpowiedź tych makrofagów na sam interferon [8]. Prostaglandyna E2 i interleukina 1 hamują wytwarzanie interferonu typu I w modelach gruźlicy [31]. Wysokie stężenia tego interferonu zmniejszają zaś wrażliwość makrofagów na pobudzenie przez IFN-γ [31]. Zależności między cytokinami działają w obu kierunkach i wyznaczają, ile interferonu powstanie w danej tkance [31].

Czwartą warstwą jest regulacja hormonalna, opisana dla jednego przedstawiciela rodziny. Ilość IFN-ε w nabłonku dróg rodnych myszy zmieniała się wraz z fazą cyklu [13]. Zależała od hormonów płciowych, a nie od kontaktu z drobnoustrojem [13]. Wszystkie cztery warstwy regulują moment i wielkość wyrzutu, a nie zapas gotowego białka [20].

2.5. Wygaszanie odpowiedzi

Odpowiedź interferonowa jest wyłączana z tą samą precyzją, z jaką zostaje włączona. Przedłużone pobudzenie szlaku JAK–STAT hamuje bowiem podziały komórek i uszkadza tkanki [20]. Trzy mechanizmy wyłączania opisano najlepiej, a wszystkie działają na poziomie receptora albo kinaz [20].

Oferta NeuroExpert
NeuroExpert · bez reklam
Masz dość reklam?
Wyłącz banery, przerywniki i dolną belkę. Subskrypcja daje także pełny dostęp do bazy wiedzy NeuroExpert oraz treści premium.
Bez reklam
Pełny dostęp
Treści premium
Wyłącz reklamy

Pierwszym mechanizmem są białka SOCS, czyli hamujące białka indukowane cytokinami, powstające w odpowiedzi na sam sygnał interferonowy [20]. Białko SOCS1 wiąże się z podjednostką IFNAR1 i przerywa fosforylację STAT1 [34]. Myszy pozbawione tego białka odpowiadały na interferon typu I silniej i dłużej niż zwierzęta zdrowe [34]. Po stronie IFN-γ SOCS1 przyczepia się do tyrozyny 441 w reszcie cytoplazmatycznej IFNGR1 [27]. Myszy z podstawioną w tym miejscu fenyloalaniną wygaszały sygnał wolniej i lepiej kontrolowały wzrost guzów przeszczepionych doświadczalnie [27].

Drugim mechanizmem jest białko USP18, nazywane też UBP43, które odcina cząsteczki ISG15 od białek, a szlak hamuje niezależnie od tej czynności enzymatycznej [35]. Wiąże się z podjednostką IFNAR2 i przerywa kontakt między receptorem a kinazą JAK1 [35]. Wyłącza przez to odpowiedź na typ I, nie zmieniając odpowiedzi na IFN-γ [35]. Znaczenie tego białka u człowieka pokazują interferonopatie, w których jego brak prowadzi do niewygaszonego sygnału interferonowego [11].

Trzecim mechanizmem jest usuwanie receptora z powierzchni komórki. Kompleks liganda z receptorem zostaje wchłonięty do wnętrza, a od siły wiązania zależy, czy podjednostka wróci na błonę, czy trafi do lizosomu [12]. Komórka pobudzana interferonem dłużej ma mniej receptora na powierzchni [12]. Druga porcja interferonu wywołuje u niej słabszą odpowiedź niż pierwsza [12]. Złożenie tych trzech mechanizmów daje odpowiedź o kształcie impulsu [20]. Po impulsie komórka pozostaje przez pewien czas mniej wrażliwa na kolejny sygnał [20].

Interferony — Cena odpowiedzi — zbyt słaba i zbyt silna
Cena odpowiedzi — zbyt słaba i zbyt silna
Ceną jest wstrzymanie własnych procesów komórki. Zbyt silna odpowiedź daje zmęczenie, bóle i objawy autoimmunologiczne.

3. Zaburzenia i modyfikacja

3.1. Niedobór – przyczyny i następstwa

Niedobór czynności interferonów nie objawia się osłabieniem ogólnym, lecz podatnością na wąską grupę drobnoustrojów, różną dla każdego z dwóch głównych szlaków [25, 30]. Przyczyny dzielą się na wrodzone i nabyte: pierwsze wynikają z wariantów genów szlaku, drugie z obecności przeciwciał neutralizujących własny interferon [30, 36].

Wrodzone defekty szlaku interferonu typu I ujawniają się ciężkim przebiegiem zakażeń wirusowych. Warianty upośledzające czynność trzynastu genów tego szlaku znaleziono u 23 z 659 chorych z zapaleniem płuc zagrażającym życiu w przebiegu COVID-19 [30]. Stanowiło to 3,5 procent badanych w wieku od 17 do 77 lat [30]. Część tych osób nie przechodziła wcześniej żadnego ciężkiego zakażenia [30]. Defekt bywa więc rozpoznawany dopiero przy zetknięciu z konkretnym wirusem [30].

Defekty osi IL-12 i IFN-γ dają obraz odmienny, nazwany mendlowską podatnością na zakażenia prątkami. Opisano co najmniej osiemnaście zaburzeń genetycznych tej osi, a pierwsze rozpoznanie genetyczne postawiono w 1996 roku [25]. Chorzy zapadają na zakażenia prątkami o małej zjadliwości, w tym prątkami ze szczepionki BCG, a częste są u nich także zakażenia pałeczkami Salmonella [25]. Ten sam obwód decyduje o przebiegu gruźlicy w populacji ogólnej. Wariant P1104A genu TYK2 zaburza odpowiedź na interleukinę 23 [37]. Jego postać homozygotyczna odpowiada za około 1 procent zachorowań na gruźlicę u osób pochodzenia europejskiego [37].

Nabyty niedobór polega na wytwarzaniu przeciwciał neutralizujących własny interferon. W badaniu prowadzonym w Tajlandii i na Tajwanie przeciwciała przeciw IFN-γ o wysokim mianie stwierdzono u 81 procent chorych z rozsianym zakażeniem prątkami niegruźliczymi [36]. W grupie z innym zakażeniem oportunistycznym odsetek wyniósł 96 procent, a w grupie kontrolnej 2 procent [36]. Obraz kliniczny przypominał zaawansowane zakażenie wirusem HIV, choć liczba limfocytów CD4 i wynik badania w kierunku HIV pozostawały prawidłowe [36].

Odpowiednikiem tego zjawiska po stronie typu I są autoprzeciwciała neutralizujące IFN-α i IFN-ω. Ich obecność wykryto u co najmniej 101 z 987 chorych z krytycznym przebiegiem COVID-19 [3]. Nie znaleziono ich u 663 osób z zakażeniem bezobjawowym lub łagodnym [3]. W większej próbie takie przeciwciała stwierdzono u 18 procent z 1124 zmarłych [38]. Ich częstość w populacji niezakażonej rosła z wiekiem, od 0,18 procent w grupie od 18 do 69 lat do 3,4 procent u osób powyżej 80 lat [38]. Następstwem niedoboru interferonu jest utrata kontroli nad zakażeniem, a nie brak odpowiedzi immunologicznej [38].

3.2. Nadmiar – przyczyny i następstwa

Nadmiar interferonu typu I ma dwa źródła: stałe pobudzenie czujników kwasów nukleinowych przez materiał własny komórki oraz podanie interferonu jako leku [11, 39]. Oba źródła dają zbliżony obraz objawów ogólnych [11].

Interferonopatie typu I to grupa chorób jednogenowych, w których czujniki kwasów nukleinowych odpowiadają na DNA i RNA własne, a nie wirusowe [11]. Pojęcie zaproponowano w 2011 roku, gdy wspólną cechą kilku rzadkich chorób okazała się podwyższona ekspresja genów zależnych od interferonu [11]. Najlepiej opisanym przedstawicielem jest zespół Aicardiego-Goutièresa, w którym zapalenie obejmuje ośrodkowy układ nerwowy i skórę [11].

Drugim przedstawicielem jest zespół SAVI, czyli waskulopatia związana z pobudzeniem białka STING, o początku w okresie niemowlęcym. Opisano go u sześciu dzieci z uszkodzeniem naczyń skóry i zapaleniem tkanki płucnej [40]. Stwierdzono u nich trzy różne mutacje genu TMEM173, kodującego to białko [40]. Komórki jednojądrzaste krwi tych chorych miały stale podwyższoną ekspresję genu IFNB1, której stymulacja nie podnosiła już wyżej [40]. Mutacja prowadziła też do nasilonej fosforylacji białka STAT1, a zahamowanie kinaz JAK zmniejszało tę fosforylację w hodowli [40].

Nadmiar jatrogenny występuje przy leczeniu interferonem alfa, stosowanym dawniej w przewlekłym zapaleniu wątroby typu C. W metaanalizie 26 badań obserwacyjnych skumulowana częstość dużego epizodu depresyjnego wyniosła 25 procent po 24 tygodniach leczenia i 28 procent po 48 tygodniach [39]. Ryzyko było większe u osób z epizodem depresyjnym w wywiadzie, u kobiet oraz przy wyższym wyjściowym stężeniu interleukiny 6 [39]. Mechanizm wiąże się z nasilonym rozkładem tryptofanu. U chorych z czerniakiem leczonych interferonem alfa rosło stężenie kynureniny i neopteryny [41]. U osób, u których rozwinęła się depresja, wzrost stężenia kynureniny był większy, a spadek stężenia tryptofanu trwał dłużej [41]. W badaniu z randomizacją u 40 chorych z czerniakiem zmęczenie, brak łaknienia i ból pojawiały się w ciągu dwóch tygodni leczenia interferonem alfa, a obniżony nastrój później [59]. Autorzy opisali te objawy jako zachowanie chorobowe wywołane cytokiną [59].

3.3. Rola interferonów w patogenezie chorób

W części chorób interferony są ogniwem mechanizmu, choć ich stężenie we krwi mieści się w granicach spotykanych w innych stanach zapalnych. Rozstrzyga wtedy nie ilość cytokiny, lecz czas i miejsce jej działania [20]. Znaczenie ma także stan komórek, które na nią odpowiadają [20].

Toczeń rumieniowaty układowy jest najlepiej udokumentowanym przykładem takiej zależności. W badaniu z 2003 roku około połowa chorych miała w komórkach jednojądrzastych krwi wzmożoną ekspresję genów zależnych od interferonu [42]. Ten obraz nazwano sygnaturą interferonową, a jego obecność wiązała się z cięższym przebiegiem choroby, w tym z zajęciem nerek i ośrodkowego układu nerwowego [42]. Pomiar samego białka potwierdził ten obraz, bo stężenia IFN-α rzędu attomoli na litr, mierzone cyfrowym testem immunoenzymatycznym, były wyższe u chorych z większą aktywnością choroby [43]. Źródłem pobudzenia są kompleksy złożone z przeciwciał i własnych kwasów nukleinowych, rozpoznawane przez receptory Toll-podobne w plazmacytoidalnych komórkach dendrytycznych [24].

Stwardnienie rozsiane pokazuje odwrotną stronę tej zależności, bo dwa interferony działają w nim przeciwstawnie. Interferon beta zmniejsza liczbę rzutów choroby [44]. Podanie IFN-γ osiemnastu chorym w badaniu pilotażowym z 1987 roku doprowadziło natomiast do rzutów u siedmiu z nich [45]. Wynik ten utrwalił pogląd, że IFN-γ napędza chorobę, jego udział okazał się jednak bardziej złożony. Myszy pozbawione genu IFN-γ nadal chorowały na doświadczalne zapalenie mózgu i rdzenia, a nacieki w ich układzie nerwowym były obfite [46]. Obecność tego interferonu nie jest więc konieczna do wywołania choroby w modelu zwierzęcym [46]. U ludzi jego podanie nasilało jednak objawy [45].

W zakażeniach bakteriami wewnątrzkomórkowymi interferony typu I i II pozostają w stosunku przeciwstawnym. Wysokie stężenia typu I zmniejszają wrażliwość makrofagów na pobudzenie przez IFN-γ [31]. Osłabia to zabijanie bakterii w modelach zakażenia prątkiem gruźlicy i pałeczką listeriozy [31]. Odpowiedź korzystna w zakażeniu wirusowym bywa zatem szkodliwa w zakażeniu bakteryjnym [31].

W chorobach z przewlekłym zapaleniem stawów interferony uczestniczą w kształtowaniu nacieku. Makrofagi pobudzone czynnikiem martwicy nowotworów wytwarzają IFN-β, a ten podtrzymuje wydzielanie chemokin CXCL9 i CXCL10, przyciągających limfocyty T do tkanki [8]. Chemokiny indukowane interferonem stanowią wykonawczy element odpowiedzi interferonowej w tkance [8].

Z odpowiedzią interferonową wiąże się też jeden ze wskaźników laboratoryjnych. Neopteryna powstaje w makrofagach i komórkach dendrytycznych pobudzonych przez IFN-γ [47]. Jej stężenie rośnie wraz z nasileniem odpowiedzi komórkowej, dlatego służy jako wskaźnik pobudzenia tej gałęzi odporności [47].

W chorobach autoimmunizacyjnych interferon napędza uszkodzenie tkanki, a w nowotworach jego działanie ma kierunek ochronny [32]. Szkodliwość albo korzyść nie wynika zatem z samego interferonu, lecz z czasu działania i z zajętej tkanki [12].

3.4. Punkt uchwytu leków

Interferony są w farmakologii obecne z dwóch stron: bywają lekami podawanymi choremu oraz celem dla leków hamujących ich działanie [9, 26]. Oba podejścia wynikają z tego samego mechanizmu, tylko działają w przeciwnych kierunkach.

Interferon alfa stosowano w przewlekłym zapaleniu wątroby typu B i C oraz w nowotworach, a jego postać pegylowana krąży we krwi dłużej [9]. W czerniaku wysokiego ryzyka leczenie uzupełniające tym interferonem zmniejszało ryzyko nawrotu i zgonu [33]. Interferon beta pozostaje lekiem stosowanym w postaci rzutowo-remisyjnej stwardnienia rozsianego. W badaniu z randomizacją u 372 chorych roczny wskaźnik rzutów po dwóch latach wyniósł 0,84 w grupie otrzymującej wyższą dawkę i 1,27 w grupie placebo [44]. Interferon gamma znalazł zastosowanie w przewlekłej chorobie ziarniniakowej. W badaniu z randomizacją u 128 chorych poważne zakażenie wystąpiło u 14 z 63 osób otrzymujących ten lek i u 30 z 65 osób otrzymujących placebo [48]. Wytwarzanie anionu ponadtlenkowego przez komórki żerne nie zmieniło się przy tym mierzalnie, więc mechanizm korzyści pozostał w tym badaniu nierozstrzygnięty [48].

Hamowanie szlaku interferonowego rozwinęło się w dwóch postaciach. Anifrolumab jest przeciwciałem skierowanym przeciw podjednostce IFNAR1, więc blokuje działanie wszystkich interferonów typu I naraz [26]. W badaniu z randomizacją u 362 chorych na toczeń rumieniowaty układowy odpowiedź według złożonego punktu końcowego BICLA po 52 tygodniach uzyskało 47,8 procent chorych otrzymujących ten lek [26]. W grupie placebo odsetek wyniósł 31,5 procent, a półpasiec występował w grupie leczonej częściej [26]. Inhibitory kinaz JAK, takie jak baricytynib czy ruksolitynib, działają poniżej receptora [28]. Wyłączają sygnał wszystkich trzech typów interferonu oraz wielu innych cytokin [28]. W programie rozszerzonego dostępu u 18 chorych z interferonopatiami, w tym z zespołem SAVI, baricytynib zmniejszył dobowy wskaźnik objawów z 1,3 do 0,25 i pozwolił obniżyć dawki glikokortykoidów [28]. Różnica między obiema klasami leków dotyczy wybiórczości, a nie siły. Przeciwciało obejmuje jeden receptor, a inhibitor kinazy węzeł wspólny dla wielu szlaków [28].

3.5. Wsparcie suplementacyjne

Wpływ substancji dostępnych jako suplementy na interferony bada się dwoma sposobami. Pierwszym jest pomiar ilości interferonu wydzielanego przez komórki po pobudzeniu, drugim pomiar ekspresji genów zależnych od interferonu [49, 50]. Liczba badań u ludzi jest w tym obszarze mała, a większość wyników pochodzi z hodowli komórkowych, dlatego siła dowodu została podana dla każdej pozycji osobno.

Substancja Mechanizm wpływu Kierunek Siła dowodu
Selen uzupełnienie niedoboru u osób z niskim stężeniem w osoczu nasila wytwarzanie IFN-γ przez limfocyty po szczepieniu [49] ↑ B
Reishi wyciąg zwiększał ekspresję genu IFN-γ w limfocytach CD4 starszych kobiet [51] ↑ B
Cholekalcyferol uzupełnienie niedoboru witaminy D nie zmieniało stężeń IFN-γ we krwi po stymulacji antygenem [52] ~ B
Shiitake spożycie grzybów nie zmieniało wydzielania IFN-γ przez komórki krwi, zmieniało inne cytokiny [53] ~ B
Cynk dodanie cynku w stężeniu fizjologicznym do hodowli leukocytów osób starszych przywracało wytwarzanie IFN-α [54] ↑ C
Jeżówka wyciąg podnosił w monocytach podstawową aktywność szlaku interferonowego, zależnie od kinazy JAK1 [50] ↑ C
Kwercetyna pobudzenie czujnika RIG-I zwiększało wytwarzanie IFN-α i IFN-β w komórkach czerniaka [55] ↑ C
Andrographis andrografolid obniżał wydzielanie IFN-γ przez komórki krwi chorych na wrzodziejące zapalenie jelita grubego [56] ↓ C

Zestawienie pokazuje dwie prawidłowości. Substancje o dowodach z badań u ludzi działają przez uzupełnienie niedoboru, a nie przez pobudzanie prawidłowo pracującego układu. Selen nasilał wytwarzanie IFN-γ u osób z niskim stężeniem tego pierwiastka w osoczu [49]. Witamina D u osób z niedoborem nie zmieniła stężeń tej cytokiny w dwóch badaniach z randomizacją [52, 57]. Kierunek wpływu nie jest przy tym jednolity, bo andrografolid obniżał wytwarzanie IFN-γ przez komórki chorych na chorobę zapalną jelita, więc wpływ na interferony nie jest tożsamy ze wzmacnianiem odporności [56]. Dawkowanie, interakcje i bezpieczeństwo tych substancji opisują karty działu Suplementy.

4. Uwagi praktyczne

4.1. Jak to zbadać

Oznaczanie samych interferonów we krwi ma ograniczone zastosowanie diagnostyczne, bo ich stężenia są bardzo niskie i utrzymują się krótko [43]. Metody rutynowe wykrywają dopiero stężenia rzędu pikogramów na mililitr, natomiast stężenia fizjologiczne IFN-α mieszczą się w zakresie attomoli na litr, dostępnym technikom cyfrowym wykrywającym pojedyncze cząsteczki [43]. W diagnostyce wykorzystuje się zatem nie ilość interferonu, lecz skutki jego działania albo zdolność komórek do jego wytwarzania [42, 58].

Najszerzej stosowanym badaniem opartym na interferonie jest test uwalniania IFN-γ, w skrócie IGRA, którego odmianą jest QuantiFERON. Materiałem jest krew pełna, którą poddaje się kontaktowi z antygenami swoistymi dla prątka gruźlicy, a potem mierzy ilość IFN-γ uwolnionego przez limfocyty [58]. Wynik dodatni oznacza obecność limfocytów pamięci rozpoznających te antygeny, czyli kontakt z prątkiem [58]. Test nie odróżnia natomiast zakażenia utajonego od gruźlicy czynnej ani reaktywacji od ponownego zakażenia, a wartość przewidywania rozwoju choroby ma niską [58]. Czułość testu spada u osób z upośledzoną odpornością komórkową, czyli w grupie o największym ryzyku [58]. Wynik ujemny u takiej osoby nie wyklucza więc zakażenia [58].

Sygnatura interferonowa jest badaniem innego rodzaju, bo mierzy ekspresję zestawu genów zależnych od interferonu w komórkach krwi [42]. Wynik podwyższony stwierdzano u około połowy chorych na toczeń rumieniowaty układowy [42]. W badaniach nad interferonopatiami ten sam pomiar potwierdza stałe pobudzenie szlaku oraz służy do śledzenia odpowiedzi na leczenie hamujące kinazy JAK [11, 28]. Oznaczenie pozostaje narzędziem badawczym i nie ma ustalonego zakresu referencyjnego w diagnostyce codziennej [43].

Trzecim rodzajem badania jest wykrywanie autoprzeciwciał przeciw interferonom. Przeciwciała neutralizujące IFN-α i IFN-ω oznaczano w surowicy metodami czynnościowymi, badającymi zdolność osocza do znoszenia działania tych cytokin na komórki w hodowli [3]. Odpowiednikiem po stronie typu II jest oznaczanie przeciwciał przeciw IFN-γ u chorych z rozsianym zakażeniem prątkami niegruźliczymi [36]. Oba oznaczenia wykonują ośrodki referencyjne, a służą do wyjaśnienia nietypowego przebiegu zakażenia, nie do badania przesiewowego [36, 38].

4.2. Na co warto zwrócić uwagę

Pierwszym nieporozumieniem jest utożsamianie interferonu z ogólnym wzmacniaczem odporności, bo interferony są sygnałami o wąskim zadaniu, a kierunek ich działania zależy od czasu i tkanki. W zakażeniach przewlekłych przedłużone działanie interferonu typu I wiąże się z wygaszaniem odpowiedzi swoistej, a w zakażeniach bakteryjnych osłabia zabijanie bakterii przez makrofagi [31]. Pojęcie „wzmacniania odporności” wymaga zatem wskazania typu interferonu, czasu działania i tkanki [12].

Drugą kwestią jest to, czego można oczekiwać od samego stężenia interferonu jako wskaźnika. Pojedyncze oznaczenie we krwi rzadko cokolwiek rozstrzyga, ponieważ wyrzut jest krótki, a stężenia bardzo niskie [43]. Informacji dostarczają pomiary pośrednie: sygnatura interferonowa, ilość IFN-γ uwolnionego po stymulacji antygenem oraz obecność autoprzeciwciał [38, 42, 58]. Dodatni wynik testu IGRA mówi o kontakcie z prątkiem, a nie o chorobie [58]. To rozróżnienie decyduje o dalszym postępowaniu prowadzonym przez lekarza [58].

Trzecim zagadnieniem jest ocena leków działających na ten szlak. Hamowanie kinaz JAK wycisza odpowiedź na wszystkie trzy typy interferonu i na wiele innych cytokin, więc zwiększa podatność na zakażenia [28]. Blokada receptora IFNAR1 przeciwciałem jest węższa, w badaniu u chorych na toczeń wiązała się jednak z częstszym występowaniem półpaśca niż placebo [26]. Zależność jest tu symetryczna, bo ten sam szlak, którego nadmiar napędza chorobę autoimmunizacyjną, chroni przed wirusami [11].

Czwartym zagadnieniem są następstwa neuropsychiatryczne leczenia interferonem alfa, ponieważ tłumaczą one, dlaczego objawy zakażenia wirusowego obejmują pogorszenie nastroju. Częstość dużego epizodu depresyjnego w trakcie takiego leczenia wyniosła w metaanalizie 26 badań około jednej czwartej chorych [39]. Towarzyszył temu nasilony rozkład tryptofanu do kynureniny, głębszy u osób, u których depresja się rozwinęła [41]. Przy leczeniu interferonem beta w stwardnieniu rozsianym takiej zależności nie opisano w podobnej skali [44]. Objawy zależą więc od typu interferonu i od czasu leczenia.

Ostatnią kwestią jest ograniczenie dowodów dotyczących wpływu suplementów. Wyniki u ludzi dotyczą uzupełniania niedoborów, a nie zwiększania wytwarzania interferonu u osób odżywionych prawidłowo [49, 52]. Pozostałe dane pochodzą z hodowli komórkowych i modeli zwierzęcych, w których stężenia badanych substancji przewyższają wartości osiągane w organizmie po podaniu doustnym [50, 55]. Przedstawione informacje mają charakter edukacyjny, a rozpoznanie i leczenie chorób przebiegających z zaburzeniem odpowiedzi interferonowej pozostaje zadaniem lekarza.

Najważniejsze ustalenia - Interferony

Interferony nie niszczą wirusa bezpośrednio, lecz ostrzegają komórki sąsiednie, które włączają kilkaset genów obronnych, zanim wirus do nich dotrze [10]. Przeciwciała neutralizujące własne interferony typu I wykryto u około 18 procent zmarłych z powodu COVID-19, a ich częstość w populacji rośnie po 70. roku życia [38]. Interferon gamma otrzymał swoją nazwę z powodu działania przeciwwirusowego, jego zasadniczą rolą jest jednak pobudzanie makrofagów do zabijania drobnoustrojów wewnątrzkomórkowych [14]. Czwarty interferon lambda występuje tylko u części ludzi:…

Dostęp dla subskrybentów
Ta treść jest dostępna po zalogowaniu.
Masz już konto? Zaloguj się
Wykup dostęp

Źródła wyszukane w PubMed (NLM/NCBI). Przy każdej pozycji podano identyfikator PMID i odnośnik DOI.

  1. Platanias LC. Mechanisms of type-I- and type-II-interferon-mediated signalling. Nat Rev Immunol. 2005;5(5):375-86. DOI · PMID: 15864272
  2. Isaacs A, Lindenmann J. Pillars Article: Virus Interference. I. The Interferon. Proc R Soc Lond B Biol Sci. 1957. 147: 258-267. J Immunol. 2015;195(5):1911-20. PMID: 26297790
  3. Bastard P, Rosen LB, Zhang Q, Michailidis E, Hoffmann HH, Zhang Y, et al. Autoantibodies against type I IFNs in patients with life-threatening COVID-19. Science. 2020;370(6515). DOI · PMID: 32972996
  4. Schroder K, Hertzog PJ, Ravasi T, Hume DA. Interferon-gamma: an overview of signals, mechanisms and functions. J Leukoc Biol. 2004;75(2):163-89. DOI · PMID: 14525967
  5. Kotenko SV, Gallagher G, Baurin VV, Lewis-Antes A, Shen M, Shah NK, et al. IFN-lambdas mediate antiviral protection through a distinct class II cytokine receptor complex. Nat Immunol. 2003;4(1):69-77. DOI · PMID: 12483210
  6. Prokunina-Olsson L, Muchmore B, Tang W, Pfeiffer RM, Park H, Dickensheets H, et al. A variant upstream of IFNL3 (IL28B) creating a new interferon gene IFNL4 is associated with impaired clearance of hepatitis C virus. Nat Genet. 2013;45(2):164-71. DOI · PMID: 23291588
  7. Lazear HM, Schoggins JW, Diamond MS. Shared and Distinct Functions of Type I and Type III Interferons. Immunity. 2019;50(4):907-923. DOI · PMID: 30995506
  8. Donlin LT, Jayatilleke A, Giannopoulou EG, Kalliolias GD, Ivashkiv LB. Modulation of TNF-induced macrophage polarization by synovial fibroblasts. J Immunol. 2014;193(5):2373-83. DOI · PMID: 25057003
  9. Patel JN, Walko CM. Sylatron: a pegylated interferon for use in melanoma. Ann Pharmacother. 2012;46(6):830-8. DOI · PMID: 22619474
  10. Schneider WM, Chevillotte MD, Rice CM. Interferon-stimulated genes: a complex web of host defenses. Annu Rev Immunol. 2014;32:513-45. DOI · PMID: 24555472
  11. Crow YJ, Stetson DB. The type I interferonopathies: 10 years on. Nat Rev Immunol. 2022;22(8):471-483. DOI · PMID: 34671122
  12. Schreiber G, Piehler J. The molecular basis for functional plasticity in type I interferon signaling. Trends Immunol. 2015;36(3):139-49. DOI · PMID: 25687684
  13. Fung KY, Mangan NE, Cumming H, Horvat JC, Mayall JR, Stifter SA, et al. Interferon-ε protects the female reproductive tract from viral and bacterial infection. Science. 2013;339(6123):1088-92. DOI · PMID: 23449591
  14. Nathan CF, Murray HW, Wiebe ME, Rubin BY. Identification of interferon-gamma as the lymphokine that activates human macrophage oxidative metabolism and antimicrobial activity. J Exp Med. 1983;158(3):670-89. DOI · PMID: 6411853
  15. Ivashkiv LB. IFNγ: signalling, epigenetics and roles in immunity, metabolism, disease and cancer immunotherapy. Nat Rev Immunol. 2018;18(9):545-558. DOI · PMID: 29921905
  16. Sommereyns C, Paul S, Staeheli P, Michiels T. IFN-lambda (IFN-lambda) is expressed in a tissue-dependent fashion and primarily acts on epithelial cells in vivo. PLoS Pathog. 2008;4(3):e1000017. DOI · PMID: 18369468
  17. Ge D, Fellay J, Thompson AJ, Simon JS, Shianna KV, Urban TJ, et al. Genetic variation in IL28B predicts hepatitis C treatment-induced viral clearance. Nature. 2009;461(7262):399-401. DOI · PMID: 19684573
  18. Weber F, Haller O. Viral suppression of the interferon system. Biochimie. 2007;89(6-7):836-42. DOI · PMID: 17336442
  19. Siegal FP, Kadowaki N, Shodell M, Fitzgerald-Bocarsly PA, Shah K, Ho S, et al. The nature of the principal type 1 interferon-producing cells in human blood. Science. 1999;284(5421):1835-7. DOI · PMID: 10364556
  20. Ivashkiv LB, Donlin LT. Regulation of type I interferon responses. Nat Rev Immunol. 2014;14(1):36-49. DOI · PMID: 24362405
  21. Rehwinkel J, Gack MU. RIG-I-like receptors: their regulation and roles in RNA sensing. Nat Rev Immunol. 2020;20(9):537-551. DOI · PMID: 32203325
  22. Hopfner KP, Hornung V. Molecular mechanisms and cellular functions of cGAS-STING signalling. Nat Rev Mol Cell Biol. 2020;21(9):501-521. DOI · PMID: 32424334
  23. Honda K, Yanai H, Negishi H, Asagiri M, Sato M, Mizutani T, et al. IRF-7 is the master regulator of type-I interferon-dependent immune responses. Nature. 2005;434(7034):772-7. DOI · PMID: 15800576
  24. Reizis B. Plasmacytoid Dendritic Cells: Development, Regulation, and Function. Immunity. 2019;50(1):37-50. DOI · PMID: 30650380
  25. Das J, Banday AZ, Shandilya J, Sharma M, Vignesh P, Rawat A. An updated review on Mendelian susceptibility to mycobacterial diseases- a silver jubilee celebration of its first genetic diagnosis. Expert Rev Clin Immunol. 2021;17(10):1103-1120. DOI · PMID: 34259572
  26. Morand EF, Furie R, Tanaka Y, Bruce IN, Askanase AD, Richez C, et al. Trial of Anifrolumab in Active Systemic Lupus Erythematosus. N Engl J Med. 2020;382(3):211-221. DOI · PMID: 31851795
  27. Starr R, Fuchsberger M, Lau LS, Uldrich AP, Goradia A, Willson TA, et al. SOCS-1 binding to tyrosine 441 of IFN-gamma receptor subunit 1 contributes to the attenuation of IFN-gamma signaling in vivo. J Immunol. 2009;183(7):4537-44. DOI · PMID: 19734231
  28. Sanchez GAM, Reinhardt A, Ramsey S, Wittkowski H, Hashkes PJ, Berkun Y, et al. JAK1/2 inhibition with baricitinib in the treatment of autoinflammatory interferonopathies. J Clin Invest. 2018;128(7):3041-3052. DOI · PMID: 29649002
  29. Sadler AJ, Williams BR. Interferon-inducible antiviral effectors. Nat Rev Immunol. 2008;8(7):559-68. DOI · PMID: 18575461
  30. Zhang Q, Bastard P, Liu Z, Le Pen J, Moncada-Velez M, Chen J, et al. Inborn errors of type I IFN immunity in patients with life-threatening COVID-19. Science. 2020;370(6515). DOI · PMID: 32972995
  31. McNab F, Mayer-Barber K, Sher A, Wack A, O’Garra A. Type I interferons in infectious disease. Nat Rev Immunol. 2015;15(2):87-103. DOI · PMID: 25614319
  32. Dunn GP, Koebel CM, Schreiber RD. Interferons, immunity and cancer immunoediting. Nat Rev Immunol. 2006;6(11):836-48. DOI · PMID: 17063185
  33. Mocellin S, Pasquali S, Rossi CR, Nitti D. Interferon alpha adjuvant therapy in patients with high-risk melanoma: a systematic review and meta-analysis. J Natl Cancer Inst. 2010;102(7):493-501. DOI · PMID: 20179267
  34. Fenner JE, Starr R, Cornish AL, Zhang JG, Metcalf D, Schreiber RD, et al. Suppressor of cytokine signaling 1 regulates the immune response to infection by a unique inhibition of type I interferon activity. Nat Immunol. 2006;7(1):33-9. DOI · PMID: 16311601
  35. Malakhova OA, Kim KI, Luo JK, Zou W, Kumar KG, Fuchs SY, et al. UBP43 is a novel regulator of interferon signaling independent of its ISG15 isopeptidase activity. EMBO J. 2006;25(11):2358-67. DOI · PMID: 16710296
  36. Browne SK, Burbelo PD, Chetchotisakd P, Suputtamongkol Y, Kiertiburanakul S, Shaw PA, et al. Adult-onset immunodeficiency in Thailand and Taiwan. N Engl J Med. 2012;367(8):725-34. DOI · PMID: 22913682
  37. Boisson-Dupuis S. The monogenic basis of human tuberculosis. Hum Genet. 2020;139(6-7):1001-1009. DOI · PMID: 32055999
  38. Bastard P, Gervais A, Le Voyer T, Rosain J, Philippot Q, Manry J, et al. Autoantibodies neutralizing type I IFNs are present in ~4% of uninfected individuals over 70 years old and account for ~20% of COVID-19 deaths. Sci Immunol. 2021;6(62). DOI · PMID: 34413139
  39. Udina M, Castellví P, Moreno-España J, Navinés R, Valdés M, Forns X, et al. Interferon-induced depression in chronic hepatitis C: a systematic review and meta-analysis. J Clin Psychiatry. 2012;73(8):1128-38. DOI · PMID: 22967776
  40. Liu Y, Jesus AA, Marrero B, Yang D, Ramsey SE, Sanchez GAM, et al. Activated STING in a vascular and pulmonary syndrome. N Engl J Med. 2014;371(6):507-518. DOI · PMID: 25029335
  41. Capuron L, Neurauter G, Musselman DL, Lawson DH, Nemeroff CB, Fuchs D, et al. Interferon-alpha-induced changes in tryptophan metabolism. relationship to depression and paroxetine treatment. Biol Psychiatry. 2003;54(9):906-14. DOI · PMID: 14573318
  42. Baechler EC, Batliwalla FM, Karypis G, Gaffney PM, Ortmann WA, Espe KJ, et al. Interferon-inducible gene expression signature in peripheral blood cells of patients with severe lupus. Proc Natl Acad Sci U S A. 2003;100(5):2610-5. DOI · PMID: 12604793
  43. Rodero MP, Decalf J, Bondet V, Hunt D, Rice GI, Werneke S, et al. Detection of interferon alpha protein reveals differential levels and cellular sources in disease. J Exp Med. 2017;214(5):1547-1555. DOI · PMID: 28420733
  44. The IFNB Multiple Sclerosis Study Group. Interferon beta-1b is effective in relapsing-remitting multiple sclerosis. I. Clinical results of a multicenter, randomized, double-blind, placebo-controlled trial. Neurology. 1993;43(4):655-61. DOI · PMID: 8469318
  45. Panitch HS, Hirsch RL, Schindler J, Johnson KP. Treatment of multiple sclerosis with gamma interferon: exacerbations associated with activation of the immune system. Neurology. 1987;37(7):1097-102. DOI · PMID: 3110648
  46. Ferber IA, Brocke S, Taylor-Edwards C, Ridgway W, Dinisco C, Steinman L, et al. Mice with a disrupted IFN-gamma gene are susceptible to the induction of experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE). J Immunol. 1996;156(1):5-7. PMID: 8598493
  47. Mangge H, Becker K, Fuchs D, Gostner JM. Antioxidants, inflammation and cardiovascular disease. World J Cardiol. 2014;6(6):462-77. DOI · PMID: 24976919
  48. A controlled trial of interferon gamma to prevent infection in chronic granulomatous disease. N Engl J Med. 1991;324(8):509-16. DOI · PMID: 1846940
  49. Broome CS, McArdle F, Kyle JA, Andrews F, Lowe NM, Hart CA, et al. An increase in selenium intake improves immune function and poliovirus handling in adults with marginal selenium status. Am J Clin Nutr. 2004;80(1):154-62. DOI · PMID: 15213043
  50. Declerck K, Novo CP, Grielens L, Van Camp G, Suter A, Vanden Berghe W. Echinacea purpurea (L.) Moench treatment of monocytes promotes tonic interferon signaling, increased innate immunity gene expression and DNA repeat hypermethylated silencing of endogenous retroviral sequences. BMC Complement Med Ther. 2021;21(1):141. DOI · PMID: 33980308
  51. Iser-Bem PN, Lobato TB, Alecrim-Zeza AL, Dos Santos de Oliveira LC, Passos MEP, Manuel R, et al. [Ganoderma lucidum] supplementation modulates T lymphocyte function in older women. Br J Nutr. 2024;132(2):130-140. DOI · PMID: 38800991
  52. Jolliffe DA, Vivaldi G, Chambers ES, Cai W, Li W, Faustini SE, et al. Vitamin D Supplementation Does Not Influence SARS-CoV-2 Vaccine Efficacy or Immunogenicity: Sub-Studies Nested within the CORONAVIT Randomised Controlled Trial. Nutrients. 2022;14(18). DOI · PMID: 36145196
  53. Dai X, Stanilka JM, Rowe CA, Esteves EA, Nieves C, Spaiser SJ, et al. Consuming Lentinula edodes (Shiitake) Mushrooms Daily Improves Human Immunity: A Randomized Dietary Intervention in Healthy Young Adults. J Am Coll Nutr. 2015;34(6):478-87. DOI · PMID: 25866155
  54. Cakman I, Kirchner H, Rink L. Zinc supplementation reconstitutes the production of interferon-alpha by leukocytes from elderly persons. J Interferon Cytokine Res. 1997;17(8):469-72. DOI · PMID: 9282827
  55. Peng D, Chen L, Sun Y, Sun L, Yin Q, Deng S, et al. Melanoma suppression by quercein is correlated with RIG-I and type I interferon signaling. Biomed Pharmacother. 2020;125:109984. DOI · PMID: 32066042
  56. Zhu Q, Zheng P, Zhou J, Chen X, Feng Y, Wang W, et al. Andrographolide affects Th1/Th2/Th17 responses of peripheral blood mononuclear cells from ulcerative colitis patients. Mol Med Rep. 2018;18(1):622-626. DOI · PMID: 29749556
  57. Trilok-Kumar G, Arora H, Rajput M, Chellani H, Singh V, Raynes J, et al. Effect of vitamin D supplementation of low birth weight term Indian infants from birth on cytokine production at 6 months. Eur J Clin Nutr. 2012;66(6):746-50. DOI · PMID: 22510791
  58. Pai M, Denkinger CM, Kik SV, Rangaka MX, Zwerling A, Oxlade O, et al. Gamma interferon release assays for detection of Mycobacterium tuberculosis infection. Clin Microbiol Rev. 2014;27(1):3-20. DOI · PMID: 24396134
  59. Capuron L, Gumnick JF, Musselman DL, Lawson DH, Reemsnyder A, Nemeroff CB, et al. Neurobehavioral effects of interferon-alpha in cancer patients: phenomenology and paroxetine responsiveness of symptom dimensions. Neuropsychopharmacology. 2002;26(5):643-52. DOI · PMID: 11927189

Podobne wpisy