Encyklopedia

IGF-1 (insulinopodobny czynnik wzrostu 1)

Insulinopodobny czynnik wzrostu 1 to peptydowy hormon i czynnik wzrostu, który pośredniczy w części działań hormonu wzrostu. Powstaje głównie w wątrobie, krąży związany z białkami i działa przez własny receptor o aktywności kinazy tyrozynowej. Jego stężenie we krwi służy do sprawdzenia, czy organizm rozwija się prawidłowo, a jednocześnie zaburzenia poziomu mogą wiązać się z ryzykiem nowotworów.
Poziom:
Czas czytania:
37 MIN
Ostatnia aktualizacja: 1 października, 2026
IGF-1 (insulinopodobny czynnik wzrostu 1) — Czynnik wzrostu związany z białkami nośnikowymi
Udostępnij:
Spis Treści

W skrócie

  • Czym jest IGF-1?
    Insulinopodobny czynnik wzrostu 1 (IGF-1) to peptyd zbudowany z 70 aminokwasów, podobny budową do proinsuliny. Powstaje głównie w wątrobie pod wpływem hormonu wzrostu i pobudza wzrost kości oraz budowę tkanek.
  • Czym różni się IGF-1 od hormonu wzrostu?
    Hormon wzrostu wydziela przysadka, a insulinopodobny czynnik wzrostu 1 (IGF-1) powstaje głównie w wątrobie w odpowiedzi na ten hormon. IGF-1 działa przez własny receptor i ma stabilne stężenie w ciągu doby.
  • Jaka jest norma IGF-1?
    Norma insulinopodobnego czynnika wzrostu 1 (IGF-1) zależy od wieku, płci i metody oznaczenia. Stężenie jest najwyższe w okresie dojrzewania i potem maleje, dlatego wynik porównuje się z zakresem dla wieku.
  • Co oznacza wysokie IGF-1?
    Wysokie stężenie insulinopodobnego czynnika wzrostu 1 (IGF-1) u dorosłego z typowymi objawami przemawia za akromegalią, czyli nadmiarem hormonu wzrostu. Fizjologicznie wysokie wartości występują w okresie dojrzewania.
  • Co oznacza niskie IGF-1?
    Niskie stężenie insulinopodobnego czynnika wzrostu 1 (IGF-1) może wynikać z niedoboru hormonu wzrostu, niewrażliwości tkanek na ten hormon, niedożywienia, choroby wątroby albo przyjmowania estrogenów doustnie.
  • Czy wysokie IGF-1 zwiększa ryzyko raka?
    W dużych badaniach kohortowych wyższy insulinopodobny czynnik wzrostu 1 (IGF-1) wiązał się z nieco większym ryzykiem raka piersi, prostaty i jelita grubego. Część analiz genetycznych wskazuje na związek przyczynowy.

1. Profil substancji

1.1. Definicja i klasyfikacja

Insulinopodobny czynnik wzrostu 1 (ang. insulin-like growth factor 1, IGF-1) to peptydowy hormon i czynnik wzrostu zbudowany z jednego łańcucha 70 aminokwasów [1]. Należy do rodziny insulinopodobnych czynników wzrostu, którą tworzą trzy ligandy (IGF-1, IGF-2 i insulina), trzy receptory oraz sześć białek wiążących IGF (ang. IGF-binding proteins, IGFBP) [2]. Białka wiążące to białka osocza i płynu tkankowego, które wiążą IGF i decydują o tym, ile z nich dotrze do receptorów. Nazwa rodziny pochodzi od podobieństwa budowy IGF-1 do proinsuliny, czyli prekursora insuliny [1]. Starsze prace nazywają tę samą cząsteczkę somatomedyną C [3].

IGF-1 działa dwiema drogami. Jako hormon krąży we krwi, dokąd trafia głównie z wątroby, a jako czynnik lokalny powstaje w wielu tkankach i działa na komórki, które go wytworzyły, albo na komórki sąsiednie [3, 4]. Pierwszą drogę nazywa się działaniem wewnątrzwydzielniczym, czyli endokrynnym, drugą działaniem autokrynnym i parakrynnym. W osi somatotropowej IGF-1 jest ogniwem następującym po hormonie wzrostu. Hormon wzrostu pobudza wytwarzanie IGF-1, a IGF-1 przenosi na tkanki część jego działań wzrostowych, choć hormon wzrostu działa też niezależnie od IGF-1 [4, 5].

IGF-1 bywa mylony z trzema cząsteczkami, a kryterium różnicującym jest miejsce powstania i receptor, przez który działa dana cząsteczka. Hormon wzrostu (ang. growth hormone, GH) jest hormonem przysadki mózgowej, natomiast IGF-1 powstaje w tkankach docelowych tego hormonu, głównie w wątrobie [5]. Insulina powstaje w komórkach beta trzustki i działa przez receptor insulinowy, IGF-1 zaś przez własny receptor, pokrewny receptorowi insulinowemu [6, 7]. IGF-2 to drugi ligand rodziny, kodowany przez gen podlegający piętnowaniu genomowemu i szczególnie ważny dla wzrostu w okresie rozwoju [8]. Mekasermina nie jest odrębną substancją, lecz rekombinowaną postacią IGF-1 stosowaną jako lek [9].

Pojęcie IGF-1 obejmuje zarówno cząsteczkę krążącą we krwi, jak i IGF-1 wytwarzany lokalnie w tkankach oraz jego postać rekombinowaną. Oznaczenie IGF-1 w surowicy jest podstawą rozpoznawania i monitorowania zaburzeń wydzielania hormonu wzrostu [10]. Sygnalizacja IGF wiąże się też z podstawowymi procesami starzenia, a stężenie IGF-1 we krwi z ryzykiem kilku nowotworów u ludzi [11, 12].

IGF-1 (insulinopodobny czynnik wzrostu 1) — Oś GH–wątroba–IGF-1
Oś GH–wątroba–IGF-1
IGF-1 powstaje w wątrobie pod wpływem hormonu wzrostu i pośredniczy w większości jego działań na tkanki.

1.2. Budowa i właściwości

IGF-1 jest małym białkiem o obliczonej masie cząsteczkowej 7649, którego pojedynczy łańcuch spinają trzy mostki disiarczkowe [1]. W sekwencji wyróżnia się odcinki nazwane przez analogię do proinsuliny. Pozycje 1–29 są homologiczne z łańcuchem B insuliny, pozycje 42–62 z łańcuchem A, a łączy je skrócony odcinek C złożony z 12 aminokwasów [1]. Na końcu karboksylowym IGF-1 ma dodatkowo ośmioaminokwasowy odcinek D, którego w proinsulinach nie ma [1].

IGF-1 pozostaje jednym łańcuchem, więc odcinek C jest częścią dojrzałej, czynnej cząsteczki [1]. Zachowane są wszystkie reszty cysteiny i glicyny oraz większość niepolarnych reszt rdzenia insuliny, co odpowiada przestrzennej budowie podobnej do insuliny [1]. Liczba różnic między IGF-1 a insulinami wskazuje, że gen wspólnego przodka uległ podwojeniu jeszcze przed pojawieniem się kręgowców [1]. Podobieństwo przestrzenne ma dwa następstwa czynnościowe. Pierwszym jest pokrewieństwo receptorów obu hormonów, które mogą tworzyć wspólne receptory hybrydowe [13]. Drugim jest hipoglikemizujące działanie wolnego IGF-1, czyli obniżanie stężenia glukozy we krwi podobnie jak przez insulinę [14].

IGF-1 jest peptydem rozpuszczalnym w wodzie, a we krwi krąży prawie w całości związany z białkami wiążącymi. Białka te wiążą IGF-1 z powinowactwem równym powinowactwu receptora albo większym [15]. Budowa decyduje więc o tym, że działanie metaboliczne IGF-1 zależy od proporcji między pulą związaną a pulą wolną.

1.3. Rys historyczny

W 1957 roku Salmon i Daughaday opisali czynnik surowicy, którego aktywność zależała od hormonów i który pobudzał wbudowywanie siarczanu do chrząstki in vitro [16]. Z tej obserwacji wyrosła hipoteza somatomedynowa. Zakładała ona, że wzrost somatyczny kontroluje hormon wzrostu z przysadki, a jego działanie przenosi krążący czynnik wytwarzany wyłącznie w wątrobie [3]. W 1978 roku Rinderknecht i Humbel ustalili pełną sekwencję aminokwasową IGF-1 wyizolowanego z surowicy i opisali jego homologię z proinsuliną [1].

Odkrycie, że IGF-1 powstaje w większości tkanek, postawiło pytanie o udział IGF-1 działającego lokalnie [3]. W 1999 roku dwa zespoły wyłączyły gen Igf1 wyłącznie w hepatocytach myszy [17, 18]. Stężenie IGF-1 w surowicy spadło o 75%, a mimo to wzrost zwierząt po urodzeniu przebiegał prawidłowo [17]. Wynik potwierdził, że wątroba jest głównym źródłem krążącego IGF-1, lecz podważył tezę, że to krążący IGF-1 jest niezbędny do wzrostu [4, 18]. Stężenie wolnego IGF-1 pozostawało u tych myszy prawidłowe, co zostawiło otwartą kwestię, skąd pochodzi IGF-1 potrzebny do wzrostu [3].

1.4. Synteza i źródła

Głównym źródłem IGF-1 krążącego we krwi jest wątroba, w której hepatocyty wytwarzają go w odpowiedzi na hormon wzrostu [5]. Hormon wzrostu wiąże się z receptorami hepatocytu i uruchamia szlak kinazy Janusa (ang. Janus kinase, JAK) oraz białek STAT (ang. signal transducers and activators of transcription) [5]. Białka STAT to przekaźniki sygnału, które po fosforylacji przechodzą do jądra i włączają transkrypcję genów docelowych, w tym genu IGF-1. Kluczowym ogniwem jest białko STAT5b, bo mutacje jego genu wywołują niewrażliwość na hormon wzrostu i niedobór IGF-1 [8, 19].

Udział wątroby w puli krążącej zmierzono w modelach zwierzęcych. U myszy wyłączenie genu IGF-1 w hepatocytach obniżyło stężenie IGF-1 w surowicy o 75%, choć wątroba stanowi mniej niż 5% masy ciała [17]. Przeglądy kliniczne opisują IGF-1 surowicy człowieka jako wytwarzany głównie w wątrobie [5].

Poza wątrobą IGF-1 wytwarza większość tkanek, w tym mózg [4, 20]. Lokalny IGF-1 wystarcza do prawidłowego wzrostu myszy pozbawionych IGF-1 wątrobowego, co wskazuje na jego znaczenie niezależne od puli krążącej [4, 18]. Znaczenie genu IGF-1 dla wzrostu człowieka pokazuje opis chorego z delecją tego genu. Wystąpiło u niego zahamowanie wzrastania wewnątrzmacicznego i niedobór wzrostu po urodzeniu [21].

Stężenie IGF-1 we krwi jest więc przede wszystkim miarą wątrobowej odpowiedzi na hormon wzrostu, a nie całkowitej ilości IGF-1 działającej w tkankach [4].

1.5. Transport, frakcja wolna i klirens

IGF-1 prawie nie krąży we krwi w postaci wolnej. Sześć białek wiążących IGF wiąże około 98% krążącego IGF-1 [15]. Większość IGF-1 tworzy kompleks trójskładnikowy o masie około 150 kDa, złożony z IGF-1, IGFBP-3 i podjednostki kwasolabilnej (ang. acid-labile subunit, ALS) [22]. ALS to glikoproteina wytwarzana głównie przez hepatocyty, której syntezę silnie pobudza hormon wzrostu, a hamuje interleukina 1β [14]. ALS dołącza do IGFBP-3 albo IGFBP-5 dopiero wtedy, gdy białko wiążące jest obsadzone przez IGF [14].

Kompleks trójskładnikowy wydłuża okres półtrwania IGF-1 we krwi i ułatwia jego działanie hormonalne [22]. Stanowi też stabilny rezerwuar, który ogranicza potencjalnie hipoglikemizujące działanie wolnego IGF-1 [14]. U myszy pozbawionych ALS stężenie IGF-1 w surowicy spadło o 65% [22]. U ludzi całkowity niedobór ALS opisano u 61 osób z 31 rodzin. Chorzy mieli wzrost od 2 do 3 odchyleń standardowych poniżej średniej, opóźnione dojrzewanie i insulinooporność [23]. Autorzy tłumaczą łagodny wpływ na wzrost działaniem IGF-1 wytwarzanego lokalnie [23].

IGF-1 dociera do receptorów dopiero po uwolnieniu z białek wiążących. Tę rolę pełnią metaloproteinazy z rodziny pappalizyn, PAPP-A i PAPP-A2 (ang. pregnancy-associated plasma protein A), które tną wybrane IGFBP i zwiększają biodostępność IGF [24]. Ich aktywność hamują stanniokalcyny 1 i 2 [24]. Mutacje genu PAPPA2 u ludzi powodują niski wzrost przy wysokim stężeniu całkowitego IGF-1 i niskim stężeniu wolnego IGF-1 [25].

Z krwi IGF-1 znika szybciej, gdy spada ilość białek wiążących. Niedożywienie zwiększa klirens i rozkład IGF-1 w surowicy przez zmiany stężeń białek wiążących [26]. Rekombinowany IGF-1 ma krótszy okres półtrwania u chorych z niskim IGFBP-3 i ALS niż u osób zdrowych [5]. Całkowite stężenie IGF-1 w surowicy opisuje zatem głównie pulę związaną, a o sile sygnału w tkankach decyduje także tempo uwalniania IGF-1 z tej puli [24, 25].

2. Mechanizm działania i funkcje

2.1. Receptory IGF-1

Głównym receptorem IGF-1 jest receptor IGF-1 (ang. IGF-1 receptor, IGF-1R), czyli receptor błonowy o aktywności kinazy tyrozynowej [6]. Kinaza tyrozynowa to enzym, który przenosi resztę fosforanową na tyrozynę w białkach docelowych. Receptor składa się z podjednostek alfa, które wiążą ligand na zewnątrz komórki, oraz podjednostek beta z domeną kinazową po stronie cytoplazmy [6]. IGF-1R jest w 70% homologiczny z receptorem insulinowym, a w domenie kinazy tyrozynowej w 84% [7].

Receptor insulinowy występuje w dwóch izoformach, IR-A i IR-B, które powstają przez alternatywne składanie eksonu 11 [13]. Izoforma IR-A wiąże z dużym powinowactwem IGF-2, dominuje w życiu płodowym i występuje także w dorosłym mózgu [13]. Podjednostki receptora insulinowego i IGF-1R mogą łączyć się w receptory hybrydowe, które zwiększają wrażliwość komórki na IGF [13]. Rola tych hybryd w fizjologii, w cukrzycy i w komórkach nowotworowych nie jest w pełni poznana [13].

Znaczenie IGF-1R dla wzrostu człowieka pokazują mutacje jego genu. Wywołują one niewrażliwość na IGF-1 z upośledzeniem wzrostu przed urodzeniem i po nim [19]. Chorzy z opornością na IGF-1 mają przy tym podwyższone stężenie IGF-1 i prawidłowe lub wysokie stężenie hormonu wzrostu [19].

Skład receptorów na powierzchni komórki, czyli proporcja IGF-1R, izoform receptora insulinowego i receptorów hybrydowych, wpływa więc na to, jak silnie dana komórka odpowiada na IGF [13].

2.2. Kaskada sygnałowa

W stanie spoczynku kinaza IGF-1R pozostaje nieaktywna. Związanie IGF-1 z podjednostką alfa zmienia konformację podjednostki beta i uruchamia jej aktywność kinazową [6]. Aktywny receptor fosforyluje białka substratowe receptora insulinowego (ang. insulin receptor substrates, IRS) oraz białko adaptorowe SHC (ang. Src homology collagen) [6]. Ufosforylowane reszty tyrozyny w tych białkach stają się miejscami przyłączenia białek z domeną homologii Src 2 (SH2), która rozpoznaje fosfotyrozynę [6].

Pierwsze ramię sygnału służy głównie budowie i przeżyciu komórki. Do białek IRS przyłącza się podjednostka regulatorowa p85 kinazy 3-fosfatydyloinozytolu (PI3K), czyli enzymu, który wytwarza w błonie lipidowy przekaźnik sygnału [6]. Od PI3K sygnał biegnie do kinazy Akt, zwanej też kinazą białkową B [27]. Akt nasila syntezę białek przez kinazę mTOR (ang. mechanistic target of rapamycin) i kinazę syntazy glikogenu 3β (GSK3β) [27]. Jednocześnie hamuje rozkład białek przez unieczynnienie czynników transkrypcyjnych FoxO (ang. forkhead box O), które włączają geny układów rozkładających białka [27].

Drugie ramię prowadzi do jądra komórkowego. Ufosforylowane białko SHC wiąże białko adaptorowe GRB2 (ang. growth factor receptor-bound 2), które uruchamia białko Ras i szlak kinaz aktywowanych mitogenami (ang. mitogen-activated protein kinases, MAPK) [6]. Kinazy MAPK przenoszą sygnał do jądra i zmieniają ekspresję genów związanych z podziałem i różnicowaniem komórki. Aktywność obu szlaków jest potrzebna do biologicznych działań IGF, czyli proliferacji, różnicowania i przeżycia komórek [6]. Sygnał IGF-1R krzyżuje się przy tym z sygnałami insuliny, innych czynników wzrostu i cytokin [28].

Stan końcowy zależy od tego, które ramię przeważa w danej komórce. W mięśniu przewaga szlaku PI3K i Akt przesuwa równowagę między syntezą a rozkładem białek w stronę syntezy [27]. Szlak MAPK sprzyja podziałom komórek, dlatego IGF-1 i IGF-2 opisuje się jako silne mitogeny, czyli czynniki pobudzające podziały [2]. Stąd bierze się zainteresowanie osią IGF zarówno w fizjologii wzrostu, jak i w badaniach nad nowotworami [2].

IGF-1 (insulinopodobny czynnik wzrostu 1) — Receptor i szlak sygnałowy wzrostu
Receptor i szlak sygnałowy wzrostu
Receptor uruchamia dwie gałęzie: syntezę białek i hamowanie apoptozy. Stąd jednoczesny wpływ na wzrost i przeżycie komórki.

2.3. Funkcje IGF-1

2.3.1. Wzrost liniowy i kość

Wzrost kości na długość zachodzi w płytkach wzrostowych, w których chondrocyty dzielą się, powiększają i zostają zastąpione tkanką kostną. U myszy pozbawionych jednocześnie wątrobowego IGF-1 i ALS stężenie IGF-1 w surowicy spadło poniżej progu potrzebnego do prawidłowego wzrostu [22]. Zwierzęta te miały mniejsze płytki wzrostowe piszczeli, z niższą strefą proliferacji i niższą strefą chondrocytów przerosłych [22]. Podawanie IGF-1 przywróciło wysokość płytki wzrostowej [22]. Myszy te miały też o 10% niższą gęstość mineralną kości oraz o ponad 35% mniejszy obwód okostnowy i grubość warstwy korowej [22].

U ludzi skalę tego działania pokazuje zespół Larona, w którym tkanki nie odpowiadają na hormon wzrostu i brakuje IGF-1. Dorośli chorzy osiągają 120–130 cm wzrostu [29]. Autorzy tego samego przeglądu przypisują osi hormon wzrostu–IGF-1 około jednej trzeciej wzrostu dorosłego człowieka [29]. Chorzy z mutacjami PAPPA2, u których wolny IGF-1 jest niski, mają gęstość mineralną kości poniżej przeciętnej [25].

IGF-1 działa więc na kość dwojako. Wydłuża ją przez płytkę wzrostową i buduje jej masę, a krążąca pula musi przekroczyć pewien próg, żeby oba działania wystąpiły [22].

2.3.2. Mięsień szkieletowy

W mięśniu szkieletowym IGF-1 działa przez receptor IGF-1R, kinazę Akt i kinazę mTOR, które zwiększają syntezę białek włókien mięśniowych [27]. Ta sama kinaza Akt hamuje rozkład białek, bo unieczynnia czynniki FoxO włączające geny układów proteolitycznych [27]. W modelach genetycznych u myszy szlak IGF-1 i Akt okazał się niezbędny do wzrostu mięśnia w okresie rozwoju i do jego regeneracji po uszkodzeniu [27]. Jego udział w przeroście dorosłego mięśnia pod wpływem obciążenia mechanicznego jest mniej jasny [27].

Z tego powodu szlak IGF-1 i Akt jest badany jako cel leczenia zaniku mięśni w chorobach przewlekłych i w starzeniu [27]. Dane z modeli zwierzęcych nie przesądzają jednak, czy podwyższenie IGF-1 we krwi dorosłego człowieka zwiększa masę mięśni. Znaczenie IGF-1 dla mięśnia jest zatem najlepiej udokumentowane dla wzrostu i odnowy tkanki, a słabiej dla reakcji dorosłego mięśnia na trening.

2.3.3. Gospodarka glukozowa

Działanie IGF-1 na metabolizm glukozy wynika z jego podobieństwa do insuliny i z pokrewieństwa ich receptorów. Najwyraźniej widać je podczas leczenia rekombinowanym IGF-1. Połączenie rekombinowanego IGF-1 z rekombinowanym IGFBP-3 wydłużało okres półtrwania leku i mogło ograniczać hipoglikemię [5]. Hipoglikemia jest najczęstszym działaniem niepożądanym mekaserminy u dzieci z ciężkim pierwotnym niedoborem IGF-1 [29]. Ryzyko jest większe u chorych z zespołem Larona i u tych, którzy mieli epizody hipoglikemii przed leczeniem [29].

Niedobór sprawnie działającego IGF-1 łączy się z kolei z gorszą odpowiedzią tkanek na insulinę. Insulinooporność opisano u osób z całkowitym niedoborem ALS [23]. Występowała też u chorych z mutacjami PAPPA2, u których leczenie rekombinowanym IGF-1 poprawiło wrażliwość na insulinę [25]. Modele mysie niedoboru IGF-1 wskazują, że IGF-1 i hormon wzrostu współdziałają w regulacji przemian węglowodanów i lipidów [7].

IGF-1 działa więc jako hormon wspierający działanie insuliny, a jego nadmiar w postaci wolnej niesie ryzyko hipoglikemii.

2.3.4. Mózg

IGF-1 działa w mózgu jako czynnik pochodzący z krwi i jako czynnik wytwarzany na miejscu. Peptydy insulinopodobne, wśród nich IGF-1, uczestniczą w rozwoju i różnicowaniu mózgu [20]. W mózgu dorosłym wpływają na plastyczność neuronów i na pamięć przestrzenną [20].

Najmocniejsze dowody na udział krążącego IGF-1 pochodzą z badań na szczurach. Wysiłek fizyczny zwiększał u nich wychwyt IGF-1 z krwi do wybranych obszarów mózgu, w tym do hipokampa [30]. Przeciwciała blokujące wejście krążącego IGF-1 do mózgu całkowicie znosiły wywołany wysiłkiem wzrost liczby nowych neuronów w hipokampie [30]. Podskórne podanie IGF-1 zwierzętom nietrenującym wyraźnie zwiększało natomiast neurogenezę [30]. IGF-1 z krwi pokonuje zatem barierę krew–mózg w ilości wystarczającej do zmiany czynności hipokampa szczura.

U ludzi dostępne są głównie badania obserwacyjne, które łączą wyższe stężenie IGF-1 z większą objętością mózgu [31]. Przeniesienie mechanizmu z modeli zwierzęcych na człowieka pozostaje więc hipotezą, a nie ustalonym faktem.

2.4. Regulacja stężenia i zmienność dobowa

Najsilniejszym regulatorem wątrobowej syntezy IGF-1 jest hormon wzrostu [5]. IGF-1 zwrotnie hamuje wydzielanie tego hormonu, co widać, gdy spadek IGF-1 zwiększa wydzielanie hormonu wzrostu [32]. Drugim regulatorem jest stan odżywienia. Niedobór energii lub białka wyraźnie obniża stężenie IGF-1, a u dorosłych podaż energii wydaje się ważniejsza niż podaż białka [26]. W modelach zwierzęcych przy głodzeniu wątroba traci część receptorów hormonu wzrostu, a przy niedoborze białka zaburzeniu ulegają etapy sygnału leżące za receptorem [26]. W tych samych modelach spadek IGF-1 przy ograniczeniu diety nie zależał od zmian wydzielania hormonu wzrostu [26]. Mechanizm ten ustalono na zwierzętach, a u ludzi opisano sam spadek stężenia IGF-1 przy niedożywieniu [26].

Estrogeny działają zależnie od drogi podania. W badaniu kobiet po menopauzie doustny etynyloestradiol obniżał IGF-1 z 0,70 do 0,47 U/ml, a średnie dobowe stężenie hormonu wzrostu rosło z 2,0 do 7,0 mIU/l, czyli ponad trzykrotnie [32]. Estradiol podawany przez skórę podnosił natomiast IGF-1 do wartości bliskich stężeniom u kobiet przed menopauzą [32]. Autorzy tłumaczą różnicę efektem pierwszego przejścia przez wątrobę [33]. Estrogen wchłonięty z jelita trafia najpierw do wątroby i hamuje tam syntezę IGF-1, a słabsze sprzężenie zwrotne zwiększa wydzielanie hormonu wzrostu [32]. W ciąży łożysko wytwarza wariant hormonu wzrostu, który stopniowo zastępuje hormon przysadkowy i reguluje stężenie IGF-1 u matki [34].

Stężenie IGF-1 zmienia się wyraźnie z wiekiem. Spada zaraz po urodzeniu, rośnie do szczytu w okresie dojrzewania około 15. roku życia, a potem stale się obniża [10]. Kobiety mają przez całe życie nieco niższe średnie stężenia niż mężczyźni [10]. Zmienność dobowa jest natomiast niewielka. Stężenie IGF-1 jest stabilne w ciągu doby, a jego wrażliwość na podaż składników odżywczych i stosunkowo krótki okres półtrwania czynią z niego marker stanu odżywienia [26]. Pojedyncze oznaczenie IGF-1 jest więc bardziej miarodajne niż pojedyncze oznaczenie hormonu wzrostu, którego okres półtrwania jest bardzo krótki [35].

Oferta NeuroExpert
NeuroExpert · bez reklam
Masz dość reklam?
Wyłącz banery, przerywniki i dolną belkę. Subskrypcja daje także pełny dostęp do bazy wiedzy NeuroExpert oraz treści premium.
Bez reklam
Pełny dostęp
Treści premium
Wyłącz reklamy

3. Zaburzenia i modyfikacja

3.1. Niedobór – przyczyny i następstwa

Niedobór IGF-1 bywa pierwotny, gdy zawodzi wytwarzanie lub dostępność samego IGF-1, albo wtórny do niedoboru hormonu wzrostu. Pierwotny niedobór IGF-1 rozpoznaje się, gdy niskiemu IGF-1 towarzyszy prawidłowe lub wysokie stężenie hormonu wzrostu [19]. W postaci ciężkiej zarówno wzrost, jak i stężenie IGF-1 leżą co najmniej 3 odchylenia standardowe poniżej średniej [36].

Najlepiej poznaną postacią pierwotnego niedoboru jest zespół Larona, wywołany mutacjami genu receptora hormonu wzrostu [36]. Zespół niewrażliwości na hormon wzrostu opisał po raz pierwszy w 1966 roku zespół Zvi Larona [8, 19]. W dzieciństwie wzrost chorych leży od 6 do 12 odchyleń standardowych poniżej średniej [29]. Mutacje genów STAT5B, IGF1, IGFALS i PAPPA2 upośledzają wytwarzanie, transport lub uwalnianie IGF-1, a mutacje IGF1R dają obraz niewrażliwości na IGF-1 [8]. Defektom wewnątrzkomórkowego szlaku hormonu wzrostu, na przykład w genie STAT5B, towarzyszą zaburzenia odporności i autoimmunizacja [19]. Badania molekularne rozszerzyły w ten sposób kliniczną definicję niewrażliwości na hormon wzrostu poza mutacje samego receptora [37].

Wtórnie IGF-1 obniża niedobór hormonu wzrostu, a także niedożywienie energetyczne i białkowe [26]. Obniżają go również przewlekłe choroby wątroby. W badaniu opartym na UK Biobank z udziałem 325 981 osób IGF-1 należał do dwóch najsilniejszych czynników prognozujących zgon z przyczyn wątrobowych [38]. W kohortach walidacyjnych tego badania IGF-1 był niższy przy bardziej zaawansowanym zwłóknieniu i marskości wątroby [38]. Głównym następstwem ciężkiego niedoboru u dzieci jest niski wzrost, a rozpoznanie i dostęp do leczenia bywają opóźnione [36].

IGF-1 (insulinopodobny czynnik wzrostu 1) — Zależność w kształcie litery U
Zależność w kształcie litery U
Zależność ma kształt litery U — zarówno niedobór, jak i nadmiar wiążą się z gorszymi wynikami zdrowotnymi.

3.2. Nadmiar – przyczyny i następstwa

Utrwalony nadmiar IGF-1 u dorosłych występuje w akromegalii, czyli chorobie wywołanej nadmiernym wydzielaniem hormonu wzrostu [39]. Hormon wzrostu wydziela w tej chorobie gruczolak przysadki, a obserwacja chorego obejmuje obrazowanie pozostałości lub nawrotu gruczolaka [40]. Nadmiar hormonu wzrostu pobudza wątrobową syntezę IGF-1, a IGF-1 pośredniczy w wielu objawach choroby. Wskazuje na to badanie z randomizacją pegwisomantu, leku blokującego receptor hormonu wzrostu [39]. Obniżenie IGF-1 zmniejszało u chorych obwód palców, obrzęk tkanek miękkich, nadmierne pocenie się i zmęczenie [39].

Nadmiar dotyczy też kości. Akromegalia przyspiesza przebudowę tkanki kostnej i utrzymuje wysokie ryzyko złamań kręgów [41]. Biochemiczna remisja, czyli normalizacja IGF-1 i hormonu wzrostu, jest podstawową miarą skuteczności leczenia, choć wynik ocenia się łącznie z obrazem klinicznym [40].

Wysokie stężenie IGF-1 nie zawsze oznacza chorobę. Fizjologicznie najwyższe wartości przypadają na okres dojrzewania [10]. Mylący bywa też wysoki wynik przy genetycznych zaburzeniach uwalniania IGF-1 z białek wiążących [25]. Wysoki wynik oznaczenia opisuje więc pulę związaną z białkami, a jego znaczenie kliniczne zależy od wieku i od tego, czy tkanki otrzymują sygnał.

3.3. Rola IGF-1 w patogenezie chorób

Mutacje osłabiające sygnalizację insuliny i IGF-1 wydłużają życie drożdży, nicieni, muszek owocowych i myszy [42]. U nicienia Caenorhabditis elegans mutacje genu daf-2, kodującego odpowiednik receptora insulinowego i IGF-1R, wydłużały życie ponad dwukrotnie [43, 44]. Myszy z jedną kopią genu Igf1r żyły średnio o 26% dłużej niż zwierzęta z dwiema kopiami [44]. Wydłużenie było istotne u samic, które żyły o 33% dłużej, a u samców wyniosło 16% i nie osiągnęło istotności statystycznej [44]. Nie miały przy tym karłowatości ani zaburzeń płodności i były bardziej odporne na stres oksydacyjny [44]. U ludzi w grupie aszkenazyjskich stulatków częściej występowały heterozygotyczne mutacje genu IGF1R, związane z wysokim IGF-1 i obniżoną aktywnością receptora [42].

Dane o chorych z zespołem Larona wskazują na ochronę przed częścią chorób związanych z wiekiem. W 22-letniej obserwacji ekwadorskiej grupy chorych wystąpił jeden nowotwór złośliwy, który nie doprowadził do zgonu, i żaden przypadek cukrzycy [45]. W grupie kontrolnej nowotwory występowały u 17%, a cukrzyca u 5% osób [45]. Chorzy mieli niższe stężenie insuliny i wskaźnik insulinooporności HOMA-IR (ang. homeostatic model assessment of insulin resistance) 0,34 wobec 0,96 u krewnych [45]. U kobiet w wieku ponad 90 lat IGF-1 poniżej mediany wiązał się z dłuższym przeżyciem, u mężczyzn takiej zależności nie stwierdzono [46].

W populacji ogólnej zależność nie jest liniowa. Metaanaliza 12 badań z udziałem 14 906 osób wykazała większą śmiertelność zarówno przy niskim, jak i przy wysokim IGF-1 w porównaniu z wartościami środkowymi [47]. Zależność dawki i skutku miała kształt litery U także dla zgonów z powodu nowotworów i chorób sercowo-naczyniowych [47]. W UK Biobank u 380 997 osób najniższy decyl IGF-1 wiązał się z o 39% wyższym ryzykiem zgonu, a najwyższy z o 17% wyższym niż decyl środkowy [48].

Najlepiej zbadany związek IGF-1 z chorobą dotyczy nowotworów. W UK Biobank każde 5 nmol/l wyższego IGF-1 wiązało się z większym ryzykiem raka tarczycy, jelita grubego, piersi i prostaty [12]. Dla raka jelita grubego, piersi i prostaty ryzyko względne rosło o 8–11% na każde 5 nmol/l [12]. Ryzyko raka jajnika i wątroby było przy tym mniejsze, a autorzy nie wykluczają odwrotnego kierunku zależności [12]. Analizy randomizacji mendlowskiej, które wykorzystują warianty genetyczne jako naturalny eksperyment, wspierają związek przyczynowy dla raka piersi z receptorami estrogenowymi [49]. Wspierają go także dla raka jelita grubego i raka prostaty [50, 51]. Część analiz genetycznych dała jednak dla raka piersi i prostaty wyniki niejednoznaczne [52].

Rola IGF-1 w chorobie Alzheimera pozostaje hipotezą. W badaniu Framingham osoby z IGF-1 w najniższym kwartylu miały o 51% większe ryzyko otępienia w chorobie Alzheimera [31]. W badaniu z randomizacją lek pobudzający wydzielanie hormonu wzrostu podniósł jednak IGF-1 o 72,9% i nie spowolnił postępu choroby [53]. Niski IGF-1 może więc towarzyszyć neurodegeneracji, ale samo jego podniesienie nie okazało się leczeniem [53].

3.4. Punkt uchwytu leków

Oś IGF-1 jest celem leków działających w trzech miejscach: na receptorze IGF-1R, na receptorze hormonu wzrostu i przez zastąpienie brakującego IGF-1. Mekasermina, czyli rekombinowany ludzki IGF-1, jest zarejestrowana do leczenia zaburzeń wzrastania w ciężkim pierwotnym niedoborze IGF-1 [5, 9]. W badaniu 76 dzieci z niewrażliwością na hormon wzrostu tempo wzrastania wzrosło w pierwszym roku leczenia średnio z 2,8 do 8,0 cm na rok [9]. Dane rejestru europejskiego potwierdzają poprawę wzrostu u większości leczonych dzieci [29].

Pegwisomant to uzyskany metodami inżynierii genetycznej antagonista receptora hormonu wzrostu, który blokuje działanie tego hormonu i w ten sposób obniża IGF-1 [39]. W badaniu 112 chorych z akromegalią IGF-1 normalizował się, zależnie od dawki, u 54–89% leczonych wobec 10% w grupie placebo [39]. W akromegalii IGF-1 jest więc zarazem markerem choroby i miarą skuteczności leku.

Teprotumumab to przeciwciało monoklonalne blokujące IGF-1R, stosowane w orbitopatii tarczycowej, czyli zapaleniu tkanek oczodołu [54]. Orbitopatia rozwija się u 25–50% chorych z chorobą Gravesa-Basedowa, czyli autoimmunologiczną nadczynnością tarczycy [55]. Lek wprowadzono, ponieważ IGF-1R uczestniczy w patogenezie tej choroby [54]. W badaniu III fazy zmniejszenie wytrzeszczu o co najmniej 2 mm uzyskano u 83% chorych wobec 10% w grupie placebo [54]. Na podstawie dwóch badań wieloośrodkowych lek zarejestrowano w Stanach Zjednoczonych w 2020 roku [56].

3.5. Modyfikacja behawioralna i dietetyczna

Stężenie IGF-1 zależy od diety i aktywności fizycznej. Najsilniej działa niedobór energii i białka, który obniża IGF-1 [26]. Mleko i białko mleka podnoszą IGF-1 w niewielkim stopniu. W przeglądzie systematycznym 31 badań stężenie IGF-1 rosło o 0,10 odchylenia standardowego na każde odchylenie standardowe wyższego spożycia mleka [57]. W metaanalizie badań z randomizacją u dzieci i młodzieży produkty mleczne podnosiły IGF-1 w surowicy [58].

Białko serwatkowe podniosło IGF-1 o 14,2 ng/ml w badaniu z randomizacją u 128 zdrowych osób po 65. roku życia [59]. Wodorowęglan potasu, czyli związek alkalizujący, podniósł w tym samym badaniu IGF-1 o 7,2 ng/ml w porównaniu z placebo [59]. Żadna z tych interwencji nie poprawiła jednak mocy, sprawności ani masy mięśni [59]. Arginina nie zmieniała IGF-1 w metaanalizie dziewięciu badań, zarówno po jednorazowym, jak i po przewlekłym przyjmowaniu [60].

Wysiłek fizyczny również wpływa na IGF-1. W metaanalizie sieciowej 19 badań z randomizacją u osób starszych z kruchością lub sarkopenią trening oporowy i trening łączony podnosiły IGF-1 [61]. Pewność tych danych oceniono jednak jako niską lub bardzo niską [61]. Zmiany IGF-1 wywołane dietą i wysiłkiem są zatem w badaniach niewielkie, a ich związek z efektami zdrowotnymi pozostaje niepotwierdzony [59, 61].

3.6. Wsparcie suplementacyjne

Kilka substancji mających karty w katalogu suplementów badano pod kątem wpływu na stężenie IGF-1 w surowicy u ludzi. Kierunek w tabeli dotyczy stężenia IGF-1, a nie masy mięśni ani samopoczucia. Większość badań obejmowała małe grupy lub szczególne populacje, na przykład osoby starsze zagrożone niedożywieniem albo osoby trenujące.

Substancja Mechanizm wpływu Kierunek Siła dowodu
DHEA steroid nadnerczy, prekursor androgenów i estrogenów; mechanizm wpływu na IGF-1 nieustalony; status hormonalny, lekopodobny ↑ IGF-1, istotnie u kobiet i osób po 60. roku życia [62] A
Cholekalcyferol witamina D3; wpływ na oś somatotropową hipotetyczny [63] ~ bez istotnej zmiany w metaanalizach [63–65] A
Cynk pierwiastek potrzebny do wzrostu; badany jako dodatek do suplementu białkowego [66] ↑ szybszy wzrost IGF-1 u osób starszych zagrożonych niedożywieniem [66] B
Kwasy omega-3 mechanizm nieustalony; w jednym badaniu spadek IGFBP-3 [67] ↑ w jednym badaniu, ~ w drugim [67, 68] B
Kreatyna nośnik energii w mięśniu; badana łącznie z treningiem oporowym [69] ↑ w porównaniu z placebo przy treningu [69] B
Kwercetyna flawonoid; w badaniu obniżał markery uszkodzenia mięśni i interleukinę 6 po wysiłku [70] ↑ silniejszy wzrost IGF-1 w okresie regeneracji [70] B

W metaanalizie 24 badań z randomizacją DHEA, czyli dehydroepiandrosteron, podnosił IGF-1 średnio o 16,36 ng/ml, a efekt był istotny u kobiet i u osób po 60. roku życia [62]. Witamina D nie zmieniała istotnie IGF-1 w metaanalizie 6 badań z udziałem 773 osób ani w metaanalizie 8 badań [63, 64]. Podobny wynik dał przegląd badań u osób po 45. roku życia [65]. U 61 hospitalizowanych osób starszych cynk dodany do suplementu białkowego przyspieszał wzrost IGF-1, który po pierwszym tygodniu wynosił 48,2% wobec 22,4% w grupie kontrolnej [66]. Kwasy omega-3 podniosły IGF-1 u 62 mężczyzn z chorobą sercowo-naczyniową [67]. Dieta niskotłuszczowa z olejem rybim nie zmieniła go natomiast u 48 mężczyzn przed usunięciem prostaty [68]. Kreatynę badano u 40 młodych osób trenujących siłowo, a kwercetynę u 12 mężczyzn w badaniu naprzemiennym [69, 70]. Dawkowanie i interakcje tych substancji opisują karty działu Suplementy.

4. Uwagi praktyczne

4.1. Jak to zbadać

IGF-1 oznacza się w surowicy krwi żylnej metodami immunochemicznymi albo metodą spektrometrii mas [71]. Białka wiążące wiążą IGF-1 z dużym powinowactwem i zaniżają jego oznaczalną ilość, dlatego próbka wymaga wstępnego oddzielenia IGF-1 od IGFBP [15]. Międzynarodowy konsensus z 2011 roku zwraca uwagę na warunki przedanalityczne, wspólny wzorzec kalibracyjny i zakłócenia przez białka wiążące [72]. Wymaga też norm uwzględniających wiek, stadium dojrzewania i wskaźnik masy ciała [72].

Wynik interpretuje się wobec zakresu referencyjnego dla wieku i płci, wyznaczonego dla konkretnej metody. Takie zakresy ustalono na przykład na podstawie próbek od 15 014 osób w wieku od 0 do 94 lat [10]. Wynik bywa też podawany jako liczba odchyleń standardowych od średniej dla wieku, czyli SDS (ang. standard deviation score) [36]. W akromegalii stosuje się także wielokrotność górnej granicy normy [40]. Polskie laboratoria podają IGF-1 zwykle w ng/ml (µg/l), a badania epidemiologiczne, na przykład UK Biobank, w jednostkach molowych (nmol/l) [12]. Przy masie cząsteczkowej 7649 [1] 1 nmol/l odpowiada około 7,65 ng/ml.

Wyniki z różnych platform nie są wymienne. W porównaniu 110 próbek jeden test immunochemiczny dawał wyniki o około 36% niższe niż drugi [71]. Chromatografia cieczowa sprzężona z tandemową spektrometrią mas (LC-MS/MS) dawała wyniki o 34% wyższe niż test o najniższych wartościach [71]. Różnice między metodami rosły wraz ze stężeniem IGF-1 [71]. Pomiar IGF-1 spektrometrią mas zapewnił większą spójność wyników w badaniach antydopingowych [35].

W akromegalii IGF-1 powyżej 1,3-krotności górnej granicy normy dla wieku potwierdza rozpoznanie u chorego z typowymi objawami [40]. Przy wynikach niejednoznacznych oznaczenie powtarza się tą samą zwalidowaną metodą, a pomocny bywa test hamowania hormonu wzrostu glukozą podaną doustnie [40]. W niedoborze hormonu wzrostu u dorosłych wytyczne amerykańskie z 2019 roku opierają rozpoznanie na testach stymulacyjnych hormonu wzrostu [73]. Te same wytyczne podkreślają ostrożność w interpretacji IGF-1 ze względu na różnice między testami [73].

Na wynik wpływają czynniki niezwiązane z chorobą przysadki. Należą do nich niedożywienie i głodzenie [26], estrogeny przyjmowane doustnie [32], ciąża [34], choroby wątroby [38] oraz okres dojrzewania [10]. IGFBP-3 i ALS oznacza się rzadziej, głównie przy podejrzeniu genetycznych zaburzeń transportu IGF-1, w których całkowity IGF-1 bywa mylący [23, 25].

4.2. Na co warto zwrócić uwagę

Często powtarzane przekonanie głosi, że IGF-1 zawarty w mleku przenika do krwi i w ten sposób podnosi jego stężenie. Związek spożycia mleka z wyższym IGF-1 we krwi istnieje, ale jest słaby [57]. Brakuje natomiast dowodów, że IGF-1 z pożywienia wchłania się w postaci czynnej. W badaniu ze znakowanym izotopem IGF-1 przyjęty doustnie krążył we krwi wyłącznie w postaci fragmentów, a autorzy nie znaleźli podstaw do przyjęcia jego wchłaniania [74]. Wzrost IGF-1 po produktach mlecznych nie jest więc dowodem przenikania IGF-1 z przewodu pokarmowego.

Te same dane dotyczą suplementów reklamowanych jako źródło IGF-1. Siara bydlęca podniosła IGF-1 w surowicy u trenujących sportowców, choć równoległa część tego samego badania nie potwierdziła wchłaniania IGF-1 [74]. W badaniu z randomizacją ekstrakt i proszek z poroża jelenia nie zmieniły stężeń hormonów, w tym IGF-1 [75]. Przegląd systematyczny siedmiu badań z randomizacją nie znalazł przekonujących dowodów na korzyści z preparatów z poroża [76].

IGF-1 jest też nadużywany w sporcie jako substancja dopingująca [15]. Przekonanie o przyroście masy mięśni po dawkach ponadfizjologicznych opiera się głównie na doniesieniach nieformalnych, przy niewielkiej liczbie danych z badań u ludzi [77]. Od 2012 roku Światowa Agencja Antydopingowa uznaje test wykrywający podawanie hormonu wzrostu, oparty na pomiarze IGF-1 i propeptydu prokolagenu typu III [35].

Wyniki badań nad długowiecznością bywają upraszczane do tezy, że im niższe IGF-1, tym dłuższe życie. Dane o zespole Larona dotyczą jednak rzadkiej mutacji, z niskim wzrostem jako ceną niskiego IGF-1 [29, 45]. W populacji ogólnej ryzyko zgonu rośnie przy obu krańcach zakresu, więc niski wynik nie jest markerem ochrony [47, 48]. Podobnie zależność między wysokim IGF-1 a nowotworami opisuje ryzyko względne w dużych populacjach i nie pozwala przewidzieć choroby u konkretnej osoby [12]. Wynik IGF-1 interpretuje lekarz, łącząc go z wiekiem, metodą oznaczenia, objawami i innymi badaniami.

Najważniejsze ustalenia - IGF-1 (insulinopodobny czynnik wzrostu 1)

Insulinopodobny czynnik wzrostu 1 (IGF-1) we krwi pochodzi głównie z wątroby, ale myszy z wyłączonym genem IGF-1 w hepatocytach rosły prawidłowo mimo spadku jego stężenia o 75% [17]. Przy mutacjach genu PAPPA2 całkowity insulinopodobny czynnik wzrostu 1 (IGF-1) jest wysoki, a mimo to dziecko rośnie słabo, bo brakuje proteazy uwalniającej IGF-1 z białek wiążących [25]. U chorych z zespołem Larona, u których insulinopodobny czynnik wzrostu 1 (IGF-1) jest bardzo niski, w 22-letniej obserwacji wystąpił jeden…

Dostęp dla subskrybentów
Ta treść jest dostępna po zalogowaniu.
Masz już konto? Zaloguj się
Wykup dostęp

Źródła wyszukane w PubMed (NLM/NCBI). Przy każdej pozycji podano identyfikator PMID i odnośnik DOI.

  1. Rinderknecht E, Humbel RE. The amino acid sequence of human insulin-like growth factor I and its structural homology with proinsulin. J Biol Chem. 1978;253(8):2769-76. PMID: 632300
  2. Elemam NM, Hotait HY, Saleh MA, El-Huneidi W, Talaat IM. Insulin-like growth factor family and prostate cancer: new insights and emerging opportunities. Front Endocrinol (Lausanne). 2024;15:1396192. DOI · PMID: 38872970
  3. Le Roith D, Bondy C, Yakar S, Liu JL, Butler A. The somatomedin hypothesis:. 2001. DOI · PMID: 11159816
  4. Butler AA, Le Roith D. Control of growth by the somatropic axis: growth hormone and the insulin-like growth factors have related and independent roles. Annu Rev Physiol. 2001;63:141-64. DOI · PMID: 11181952
  5. Kemp SF. Insulin-like growth factor-I deficiency in children with growth hormone insensitivity: current and future treatment options. BioDrugs. 2009;23(3):155-63. DOI · PMID: 19627167
  6. Hakuno F, Takahashi SI. IGF1 receptor signaling pathways. J Mol Endocrinol. 2018;61(1):T69-T86. DOI · PMID: 29535161
  7. Yakar S, Sun H, Zhao H, Pennisi P, Toyoshima Y, Setser J, et al. Metabolic effects of IGF-I deficiency: lessons from mouse models. Pediatr Endocrinol Rev. 2005;3(1):11-9. PMID: 16369209
  8. Hwa V, Fujimoto M, Zhu G, Gao W, Foley C, Kumbaji M, et al. Genetic causes of growth hormone insensitivity beyond GHR. Rev Endocr Metab Disord. 2021;22(1):43-58. DOI · PMID: 33029712
  9. Keating GM. Mecasermin. BioDrugs. 2008;22(3):177-88. DOI · PMID: 18481900
  10. Bidlingmaier M, Friedrich N, Emeny RT, Spranger J, Wolthers OD, Roswall J, et al. Reference intervals for insulin-like growth factor-1 (igf-i) from birth to senescence: results from a multicenter study using a new automated chemiluminescence IGF-I immunoassay conforming to recent international recommendations. J Clin Endocrinol Metab. 2014;99(5):1712-21. DOI · PMID: 24606072
  11. Conover CA, Oxvig C. The IGF System and Aging. Endocr Rev. 2025;46(2):214-223. DOI · PMID: 39418083
  12. Knuppel A, Fensom GK, Watts EL, Gunter MJ, Murphy N, Papier K, et al. Circulating Insulin-like Growth Factor-I Concentrations and Risk of 30 Cancers: Prospective Analyses in UK Biobank. Cancer Res. 2020;80(18):4014-4021. DOI · PMID: 32709735
  13. Belfiore A, Frasca F, Pandini G, Sciacca L, Vigneri R. Insulin receptor isoforms and insulin receptor/insulin-like growth factor receptor hybrids in physiology and disease. Endocr Rev. 2009;30(6):586-623. DOI · PMID: 19752219
  14. Baxter RC. Endocrine and cellular physiology and pathology of the insulin-like growth factor acid-labile subunit. Nat Rev Endocrinol. 2024;20(7):414-425. DOI · PMID: 38514815
  15. Bailes J, Soloviev M. Insulin-Like Growth Factor-1 (IGF-1) and Its Monitoring in Medical Diagnostic and in Sports. Biomolecules. 2021;11(2). DOI · PMID: 33557137
  16. Salmon WD, Daughaday WH. A hormonally controlled serum factor which stimulates sulfate incorporation by cartilage in vitro. J Lab Clin Med. 1957;49(6):825-36. PMID: 13429201
  17. Sjögren K, Liu JL, Blad K, Skrtic S, Vidal O, Wallenius V, et al. Liver-derived insulin-like growth factor I (IGF-I) is the principal source of IGF-I in blood but is not required for postnatal body growth in mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 1999;96(12):7088-92. DOI · PMID: 10359843
  18. Yakar S, Liu JL, Stannard B, Butler A, Accili D, Sauer B, et al. Normal growth and development in the absence of hepatic insulin-like growth factor I. Proc Natl Acad Sci U S A. 1999;96(13):7324-9. DOI · PMID: 10377413
  19. Domené HM, Fierro-Carrión G. Genetic disorders of GH action pathway. Growth Horm IGF Res. 2018;38:19-23. DOI · PMID: 29249625
  20. Fernandez AM, Torres-Alemán I. The many faces of insulin-like peptide signalling in the brain. Nat Rev Neurosci. 2012;13(4):225-39. DOI · PMID: 22430016
  21. Woods KA, Camacho-Hübner C, Savage MO, Clark AJ. Intrauterine growth retardation and postnatal growth failure associated with deletion of the insulin-like growth factor I gene. N Engl J Med. 1996;335(18):1363-7. DOI · PMID: 8857020
  22. Yakar S, Rosen CJ, Beamer WG, Ackert-Bicknell CL, Wu Y, Liu JL, et al. Circulating levels of IGF-1 directly regulate bone growth and density. J Clin Invest. 2002;110(6):771-81. DOI · PMID: 12235108
  23. Domené S, Domené HM. The role of acid-labile subunit (ALS) in the modulation of GH-IGF-I action. Mol Cell Endocrinol. 2020;518:111006. DOI · PMID: 32861700
  24. Oxvig C, Conover CA. The Stanniocalcin-PAPP-A-IGFBP-IGF Axis. J Clin Endocrinol Metab. 2023;108(7):1624-1633. DOI · PMID: 36718521
  25. Fujimoto M, Hwa V, Dauber A. Novel Modulators of the Growth Hormone – Insulin-Like Growth Factor Axis: Pregnancy-Associated Plasma Protein-A2 and Stanniocalcin-2. J Clin Res Pediatr Endocrinol. 2017;9(Suppl 2):1-8. DOI · PMID: 29280739
  26. Thissen JP, Ketelslegers JM, Underwood LE. Nutritional regulation of the insulin-like growth factors. Endocr Rev. 1994;15(1):80-101. DOI · PMID: 8156941
  27. Schiaffino S, Mammucari C. Regulation of skeletal muscle growth by the IGF1-Akt/PKB pathway: insights from genetic models. Skelet Muscle. 2011;1(1):4. DOI · PMID: 21798082
  28. Dilawar M, Malik A, Liao J, Shen P, Huang Z, Zhang P, et al. Insulin-like growth factor receptor signaling in physiology and disease. Signal Transduct Target Ther. 2026;11(1). DOI · PMID: 42722676
  29. Saavedra J, Bang P. Real world data on rhIGF-1 therapy in children with severe primary IGF-I deficiency – The European experience. Growth Horm IGF Res. 2026;85:101719. DOI · PMID: 42341624
  30. Trejo JL, Carro E, Torres-Aleman I. Circulating insulin-like growth factor I mediates exercise-induced increases in the number of new neurons in the adult hippocampus. J Neurosci. 2001;21(5):1628-34. DOI · PMID: 11222653
  31. Westwood AJ, Beiser A, Decarli C, Harris TB, Chen TC, He XM, et al. Insulin-like growth factor-1 and risk of Alzheimer dementia and brain atrophy. Neurology. 2014;82(18):1613-9. DOI · PMID: 24706014
  32. Weissberger AJ, Ho KK, Lazarus L. Contrasting effects of oral and transdermal routes of estrogen replacement therapy on 24-hour growth hormone (GH) secretion, insulin-like growth factor I, and GH-binding protein in postmenopausal women. J Clin Endocrinol Metab. 1991;72(2):374-81. DOI · PMID: 1991807
  33. Ho KK, Weissberger AJ. Impact of short-term estrogen administration on growth hormone secretion and action: distinct route-dependent effects on connective and bone tissue metabolism. J Bone Miner Res. 1992;7(7):821-7. DOI · PMID: 1642149
  34. Velegrakis A, Sfakiotaki M, Sifakis S. Human placental growth hormone in normal and abnormal fetal growth. Biomed Rep. 2017;7(2):115-122. DOI · PMID: 28804622
  35. Cowan DA, Moncrieffe DA. Procollagen type III amino-terminal propeptide and insulin-like growth factor I as biomarkers of growth hormone administration. Drug Test Anal. 2022;14(5):808-819. DOI · PMID: 34418311
  36. Backeljauw PF, Andrews M, Bang P, Dalle Molle L, Deal CL, Harvey J, et al. Challenges in the care of individuals with severe primary insulin-like growth factor-I deficiency (SPIGFD): an international, multi-stakeholder perspective. Orphanet J Rare Dis. 2023;18(1):312. DOI · PMID: 37805563
  37. Miller BS, Rogol AD, Rosenfeld RG. The History of the Insulin-Like Growth Factor System. Horm Res Paediatr. 2022;95(6):619-630. DOI · PMID: 36446332
  38. Schneider CV, Gross S, Balasubramani S, Tomanová P, Schrader C, Fromme M, et al. Insulin-like Growth Factor-1 Reflects Liver Disease Stage and Improves Prediction of Liver-related Mortality. Clin Gastroenterol Hepatol. 2025;23(13):2559-2569. DOI · PMID: 40378984
  39. Trainer PJ, Drake WM, Katznelson L, Freda PU, Herman-Bonert V, van der Lely AJ, et al. Treatment of acromegaly with the growth hormone-receptor antagonist pegvisomant. N Engl J Med. 2000;342(16):1171-7. DOI · PMID: 10770982
  40. Giustina A, Biermasz N, Casanueva FF, Fleseriu M, Mortini P, Strasburger C, et al. Consensus on criteria for acromegaly diagnosis and remission. Pituitary. 2024;27(1):7-22. DOI · PMID: 37923946
  41. Halupczok-Żyła J, Jawiarczyk-Przybyłowska A, Bolanowski M. Sclerostin and OPG/RANK-L system take part in bone remodeling in patients with acromegaly. Front Endocrinol (Lausanne). 2024;15:1472680. DOI · PMID: 39741885
  42. Suh Y, Atzmon G, Cho MO, Hwang D, Liu B, Leahy DJ, et al. Functionally significant insulin-like growth factor I receptor mutations in centenarians. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008;105(9):3438-42. DOI · PMID: 18316725
  43. Kenyon C, Chang J, Gensch E, Rudner A, Tabtiang R. A C. elegans mutant that lives twice as long as wild type. Nature. 1993;366(6454):461-4. DOI · PMID: 8247153
  44. Holzenberger M, Dupont J, Ducos B, Leneuve P, Géloën A, Even PC, et al. IGF-1 receptor regulates lifespan and resistance to oxidative stress in mice. Nature. 2003;421(6919):182-7. DOI · PMID: 12483226
  45. Guevara-Aguirre J, Balasubramanian P, Guevara-Aguirre M, Wei M, Madia F, Cheng CW, et al. Growth hormone receptor deficiency is associated with a major reduction in pro-aging signaling, cancer, and diabetes in humans. Sci Transl Med. 2011;3(70):70ra13. DOI · PMID: 21325617
  46. Milman S, Atzmon G, Huffman DM, Wan J, Crandall JP, Cohen P, et al. Low insulin-like growth factor-1 level predicts survival in humans with exceptional longevity. Aging Cell. 2014;13(4):769-71. DOI · PMID: 24618355
  47. Burgers AM, Biermasz NR, Schoones JW, Pereira AM, Renehan AG, Zwahlen M, et al. Meta-analysis and dose-response metaregression: circulating insulin-like growth factor I (IGF-I) and mortality. J Clin Endocrinol Metab. 2011;96(9):2912-20. DOI · PMID: 21795450
  48. Xie Y, Huang C, Zhu X, Wang J, Fan X, Fu Z, et al. Association between circulating insulin-like growth factor 1 and risk of all-cause and cause-specific mortality. Eur J Endocrinol. 2021;185(5):681-689. DOI · PMID: 34478404
  49. Murphy N, Knuppel A, Papadimitriou N, Martin RM, Tsilidis KK, Smith-Byrne K, et al. Insulin-like growth factor-1, insulin-like growth factor-binding protein-3, and breast cancer risk: observational and Mendelian randomization analyses with ∼430 000 women. Ann Oncol. 2020;31(5):641-649. DOI · PMID: 32169310
  50. Murphy N, Carreras-Torres R, Song M, Chan AT, Martin RM, Papadimitriou N, et al. Circulating Levels of Insulin-like Growth Factor 1 and Insulin-like Growth Factor Binding Protein 3 Associate With Risk of Colorectal Cancer Based on Serologic and Mendelian Randomization Analyses. Gastroenterology. 2020;158(5):1300-1312.e20. DOI · PMID: 31884074
  51. Watts EL, Fensom GK, Smith Byrne K, Perez-Cornago A, Allen NE, Knuppel A, et al. Circulating insulin-like growth factor-I, total and free testosterone concentrations and prostate cancer risk in 200 000 men in UK Biobank. Int J Cancer. 2021;148(9):2274-2288. DOI · PMID: 33252839
  52. Larsson SC, Carter P, Vithayathil M, Kar S, Mason AM, Burgess S. Insulin-like growth factor-1 and site-specific cancers: A Mendelian randomization study. Cancer Med. 2020;9(18):6836-6842. DOI · PMID: 32717139
  53. Sevigny JJ, Ryan JM, van Dyck CH, Peng Y, Lines CR, Nessly ML. Growth hormone secretagogue MK-677: no clinical effect on AD progression in a randomized trial. Neurology. 2008;71(21):1702-8. DOI · PMID: 19015485
  54. Douglas RS, Kahaly GJ, Patel A, Sile S, Thompson EHZ, Perdok R, et al. Teprotumumab for the Treatment of Active Thyroid Eye Disease. N Engl J Med. 2020;382(4):341-352. DOI · PMID: 31971679
  55. Abumohssin AG, Alshareef RA, Aljohani S, Alqutub A, Alqutub A. Comparative efficacy and safety of rituximab, tocilizumab, and teprotumumab in Graves’ orbitopathy: a systematic review and meta-analysis. Eye (Lond). 2025;39(10):1901-1932. DOI · PMID: 40404973
  56. Markham A. Teprotumumab: First Approval. Drugs. 2020;80(5):509-512. DOI · PMID: 32157641
  57. Harrison S, Lennon R, Holly J, Higgins JPT, Gardner M, Perks C, et al. Does milk intake promote prostate cancer initiation or progression via effects on insulin-like growth factors (IGFs)? A systematic review and meta-analysis. Cancer Causes Control. 2017;28(6):497-528. DOI · PMID: 28361446
  58. Hidayat K, Zhang LL, Rizzoli R, Guo YX, Zhou Y, Shi YJ, et al. The Effects of Dairy Product Supplementation on Bone Health Indices in Children Aged 3 to 18 Years: A Meta-Analysis of Randomized Controlled Trials. Adv Nutr. 2023;14(5):1187-1196. DOI · PMID: 37414219
  59. Ceglia L, Konieczynski E, Danico E, Trinquart L, Koethe B, Xiang Q, et al. Independent effects of whey protein and alkali supplementation on muscle health in healthy older adults: factorial randomized controlled trial. Am J Clin Nutr. 2026;123(5):101257. DOI · PMID: 41780731
  60. Nejati M, Dehghan P, Safari S, Jamilian P, Zarezadeh M. The influence of arginine supplementation on IGF-1: A systematic review and meta-analysis. Clin Nutr ESPEN. 2023;55:51-57. DOI · PMID: 37202084
  61. Chu R, Li M, Xie Y, Du Y, Ni T. Comparative efficacy of exercise and nutritional interventions on serum IGF-1 levels in older adults with frailty and/or sarcopenia: A systematic review and network meta-analysis. J Sports Sci. 2026;1-16 (brak tomu w rekordzie). DOI · PMID: 42747199
  62. Xie M, Zhong Y, Xue Q, Wu M, Deng X, O Santos H, et al. Impact of dehydroepianrosterone (DHEA) supplementation on serum levels of insulin-like growth factor 1 (IGF-1): A dose-response meta-analysis of randomized controlled trials. Exp Gerontol. 2020;136:110949. DOI · PMID: 32304719
  63. Meshkini F, Abdollahi S, Clark CCT, Soltani S. The effect of vitamin D supplementation on insulin-like growth factor-1: A systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Complement Ther Med. 2020;50:102300. DOI · PMID: 32444034
  64. Kord-Varkaneh H, Rinaldi G, Hekmatdoost A, Fatahi S, Tan SC, Shadnoush M, et al. The influence of vitamin D supplementation on IGF-1 levels in humans: A systematic review and meta-analysis. Ageing Res Rev. 2020;57:100996. DOI · PMID: 31816443
  65. Janjuha R, Bunn D, Hayhoe R, Hooper L, Abdelhamid A, Mahmood S, et al. Effects of Dietary or Supplementary Micronutrients on Sex Hormones and IGF-1 in Middle and Older Age: A Systematic Review and Meta-Analysis. Nutrients. 2020;12(5). DOI · PMID: 32443563
  66. Rodondi A, Ammann P, Ghilardi-Beuret S, Rizzoli R. Zinc increases the effects of essential amino acids-whey protein supplements in frail elderly. J Nutr Health Aging. 2009;13(6):491-7. DOI · PMID: 19536417
  67. Gholamhosseini S, Nematipour E, Djazayery A, Javanbakht MH, Koohdani F, Zareei M, et al. ω-3 fatty acid differentially modulated serum levels of IGF1 and IGFBP3 in men with CVD: a randomized, double-blind placebo-controlled study. Nutrition. 2015;31(3):480-4. DOI · PMID: 25701338
  68. Aronson WJ, Kobayashi N, Barnard RJ, Henning S, Huang M, Jardack PM, et al. Phase II prospective randomized trial of a low-fat diet with fish oil supplementation in men undergoing radical prostatectomy. Cancer Prev Res (Phila). 2011;4(12):2062-71. DOI · PMID: 22027686
  69. Eghbali E, Arazi H, Suzuki K. Supplementing With Which Form of Creatine (Hydrochloride or Monohydrate) Alongside Resistance Training Can Have More Impacts on Anabolic/Catabolic Hormones, Strength and Body Composition? Physiol Res. 2024;73(5):739-753. DOI · PMID: 39545789
  70. Sgrò P, Ceci R, Lista M, Patrizio F, Sabatini S, Felici F, et al. Quercetin Modulates IGF-I and IGF-II Levels After Eccentric Exercise-Induced Muscle-Damage: A Placebo-Controlled Study. Front Endocrinol (Lausanne). 2021;12:745959. DOI · PMID: 34803913
  71. Lee JKY, Cradic K, Singh RJ, Jones J, Li J. Discordance of insulin-like growth factor-1 results and interpretation on four different platforms. Clin Chim Acta. 2023;539:130-133. DOI · PMID: 36528048
  72. Clemmons DR. Consensus statement on the standardization and evaluation of growth hormone and insulin-like growth factor assays. Clin Chem. 2011;57(4):555-9. DOI · PMID: 21285256
  73. Yuen KCJ, Biller BMK, Radovick S, Carmichael JD, Jasim S, Pantalone KM, et al. American Association of Clinical Endocrinologists and American College of Endocrinology guidelines for management of growth hormone deficiency in adults and patients transitioning from pediatric to adult care. Endocr Pract. 2019;25(11):1191-1232. DOI · PMID: 31760824
  74. Mero A, Kähkönen J, Nykänen T, Parviainen T, Jokinen I, Takala T, et al. IGF-I, IgA, and IgG responses to bovine colostrum supplementation during training. J Appl Physiol (1985). 2002;93(2):732-9. DOI · PMID: 12133885
  75. Sleivert G, Burke V, Palmer C, Walmsley A, Gerrard D, Haines S, et al. The effects of deer antler velvet extract or powder supplementation on aerobic power, erythropoiesis, and muscular strength and endurance characteristics. Int J Sport Nutr Exerc Metab. 2003;13(3):251-65. DOI · PMID: 14669926
  76. Gilbey A, Perezgonzalez JD. Health benefits of deer and elk velvet antler supplements: a systematic review of randomised controlled studies. N Z Med J. 2012;125(1367):80-6. PMID: 23321886
  77. Anderson LJ, Tamayose JM, Garcia JM. Use of growth hormone, IGF-I, and insulin for anabolic purpose: Pharmacological basis, methods of detection, and adverse effects. Mol Cell Endocrinol. 2018;464:65-74. DOI · PMID: 28606865

Podobne wpisy