Encyklopedia

Katecholo-O-metylotransferaza (COMT)

Katecholo-O-metylotransferaza to enzym, który przyłącza grupę metylową do katecholi i w ten sposób unieczynnia dopaminę, noradrenalinę i adrenalinę. W korze przedczołowej odpowiada za znaczną część usuwania dopaminy. Zmienność jej genu wiąże się z funkcjami wykonawczymi i wrażliwością na ból, a jej inhibitory wydłużają działanie lewodopy.
Poziom:
Czas czytania:
28 MIN
Ostatnia aktualizacja: 1 października, 2026
Katecholo-O-metylotransferaza (COMT) — Enzym dołączający grupę metylową do katecholaminy
Udostępnij:
Spis Treści

W skrócie

  • Czym jest COMT?
    Katecholo-O-metylotransferaza (COMT) jest enzymem rozkładu katecholamin, który przenosi grupę metylową z S-adenozylometioniny na dopaminę, noradrenalinę, adrenalinę i inne katechole, zamieniając je w związki nieaktywne.
  • Jaką rolę pełni COMT w mózgu?
    W korze przedczołowej katecholo-O-metylotransferaza (COMT) usuwa znaczną część dopaminy, ponieważ transportera wychwytującego ten przekaźnik jest tam niewiele. W prążkowiu dopaminę usuwa głównie wychwyt zwrotny, a udział enzymu jest mały.
  • Co mówi badanie genetyczne COMT?
    Badanie genu katecholo-O-metylotransferazy (COMT) określa odziedziczone warianty enzymu, ale nie mierzy stężenia dopaminy w mózgu. Pojedyncze warianty wiążą się z cechami poznawczymi i ryzykiem chorób słabo, a wynik nie jest rozpoznaniem.
  • Czym różni się COMT od MAO?
    Katecholo-O-metylotransferaza (COMT) przyłącza do katecholamin grupę metylową, a monoaminooksydaza (MAO) odłącza od nich grupę aminową przez utlenienie. Oba enzymy działają kolejno, a z dopaminy powstaje w końcu kwas homowanilinowy.
  • Czy zielona herbata hamuje COMT?
    Galusan epigallokatechiny z zielonej herbaty hamuje katecholo-O-metylotransferazę (COMT) w warunkach laboratoryjnych. W badaniu u zdrowych ochotników duża podaż tego związku nie obniżyła jednak aktywności enzymu w krwinkach czerwonych.

1. Charakterystyka białka

1.1. Definicja i klasyfikacja

Katecholo-O-metylotransferaza (ang. catechol-O-methyltransferase, COMT) to enzym należący do transferaz metylowych, który przenosi grupę metylową na grupę hydroksylową pierścienia katecholowego. Katechol to benzen z dwiema sąsiednimi grupami hydroksylowymi, a taki układ mają dopamina, noradrenalina, adrenalina, lewodopa i wiele związków roślinnych. W klasyfikacji Komisji Enzymatycznej (EC), która porządkuje enzymy według typu katalizowanej reakcji, COMT nosi numer EC 2.1.1.6 [1, 2]. Dawcą grupy metylowej jest S-adenozylometionina (SAM) [2]. SAM to pochodna metioniny, która jest głównym dawcą grup metylowych w reakcjach metylacji zachodzących w komórce. Domena wiążąca SAM w cząsteczce COMT przypomina budową domeny metylotransferaz DNA, co wskazuje na wspólny plan budowy enzymów korzystających z tego dawcy [2].

COMT bywa mylona z innymi białkami szlaku katecholamin, choć każde z nich wykonuje inną operację chemiczną. Monoaminooksydaza (MAO) także rozkłada katecholaminy, ale odłącza od nich grupę aminową przez utlenienie, a nie dołącza grupę metylową. Fenyloetanoloamino-N-metylotransferaza (PNMT) również metyluje katecholaminę, lecz przyłącza grupę metylową do atomu azotu noradrenaliny i w ten sposób wytwarza adrenalinę, czyli uczestniczy w syntezie, a nie w rozkładzie. Transportery wychwytu zwrotnego, na przykład transporter dopaminy, przenoszą przekaźnik z powrotem do zakończenia nerwowego bez zmiany jego budowy [3]. Kryterium rozróżniającym jest więc produkt: spośród enzymów szlaku katecholamin tylko COMT wytwarza pochodne 3-metoksylowe, takie jak metanefryna czy 3-metoksytyramina [4].

Pojęcie COMT obejmuje jedno białko kodowane przez jeden gen w dwóch postaciach, rozpuszczalnej i błonowej, oraz warianty tego genu występujące w populacji [5, 6]. Hasło nie obejmuje całego metabolizmu katecholamin ani chorób, w których enzym jest tylko jednym z wielu ogniw. Osobnego opisu COMT wymaga z trzech powodów. Enzym w dużej mierze wyznacza stężenie dopaminy w korze przedczołowej, jest celem leków stosowanych w chorobie Parkinsona, a jego wariant Val158Met badano w genetyce psychiatrycznej w setkach zbiorów danych [7–9].

1.2. Budowa i formy

COMT występuje w dwóch postaciach, które powstają z tego samego genu na długim ramieniu chromosomu 22, w regionie 22q11 [10, 11]. Forma rozpuszczalna (S-COMT, od ang. soluble) pozostaje w cytoplazmie, a forma błonowa (MB-COMT, od ang. membrane-bound) jest zakotwiczona w błonie komórkowej. Łańcuch MB-COMT jest dłuższy o 50 aminokwasów na końcu aminowym i ten odcinek tworzy kotwicę błonową [4]. Stąd bierze się podwójna numeracja tej samej pozycji w białku: aminokwas 108 w S-COMT odpowiada aminokwasowi 158 w MB-COMT [12].

Obie formy powstają dzięki dwóm promotorom, czyli odcinkom DNA, od których rozpoczyna się przepisywanie genu. Gen COMT składa się z sześciu eksonów, a dwa pierwsze nie kodują białka [5]. Promotor bliższy P1 daje krótszy transkrypt o długości 1,3 tysiąca nukleotydów (kb), z którego powstaje głównie S-COMT. Promotor dalszy P2 daje transkrypt dłuższy, o długości 1,5 kb, który koduje MB-COMT [5]. Oba kodony startowe leżą w trzecim eksonie, a ilość krótszego transkryptu różni się między tkankami, co świadczy o regulacji ekspresji na poziomie transkrypcji [5].

Strukturę przestrzenną enzymu ustalono krystalograficznie z rozdzielczością 2,0 Å [2]. Cząsteczka ma jedną domenę katalityczną, w której obok siebie leżą miejsce wiązania SAM, miejsce wiązania katecholu i jon magnezu. Jon Mg²⁺ wiąże obie grupy hydroksylowe substratu i ustawia go tak, aby grupa metylowa trafiła na właściwy tlen [2, 4]. Z tego układu wynika zależność enzymu od magnezu: bez jonu metalu reakcja nie zachodzi.

W MB-COMT domena katalityczna leży po zewnętrznej stronie błony. W badaniu neuronów kory szczura ustalono to trzema niezależnymi metodami, choć wcześniej orientacja enzymu była przedmiotem sporu [13]. Taka orientacja oznacza, że błonowy enzym może metylować dopaminę w przestrzeni synaptycznej i poza nią, bez potrzeby wcześniejszego wychwytu przekaźnika do komórki [13].

1.3. Rozmieszczenie tkankowe i komórkowe

COMT występuje niemal we wszystkich tkankach, ale jej ilość i przewaga jednej z form zmieniają się między narządami. Najwyższą aktywność ma wątroba, a po niej nerka i przewód pokarmowy [4]. W narządach obwodowych przeważa forma rozpuszczalna, dlatego to ona metabolizuje większość katecholi krążących we krwi i przyjmowanych doustnie [4].

W mózgu proporcje się odwracają. W tkance kory przedczołowej człowieka przeważa MB-COMT, co potwierdzono w badaniu 108 próbek pośmiertnych [14]. W neuronach kory szczura enzym błonowy znaleziono w ciele komórki, aksonach i dendrytach [13]. Według modelu opisanego w badaniach kory przedczołowej część dopaminy wychwytują też komórki glejowe i neurony postsynaptyczne, a następnie metylują ją z udziałem COMT [7].

Szczególne miejsce zajmują komórki chromochłonne rdzenia nadnerczy. W guzie chromochłonnym COMT występuje w tych samych komórkach, które magazynują katecholaminy w pęcherzykach, i przeważa w nich forma błonowa [15]. Z tego rozmieszczenia wynika znaczenie diagnostyczne enzymu: produkty COMT powstają wewnątrz guza, zanim katecholaminy trafią do krwi.

1.4. Rys historyczny

Enzym metylujący katechole opisał Julius Axelrod w 1957 roku, badając losy adrenaliny in vitro i u zwierząt [16]. Rok później wraz z Tomchickiem scharakteryzował enzymatyczną O-metylację adrenaliny i innych katecholi [17]. W tym samym 1958 roku LaBrosse, Axelrod i Kety pokazali u człowieka, że główną drogą przemiany adrenaliny jest jej przekształcenie w nieaktywną metanefrynę. Uznali wówczas COMT za enzym, który w największym stopniu kończy działanie adrenaliny w organizmie [18].

Ten obraz szybko się zmienił. Axelrod ustalił następnie, że noradrenalina uwolniona z zakończeń nerwowych jest w dużej mierze wychwytywana z powrotem, a wychwyt zwrotny okazał się nowym sposobem unieczynniania przekaźnika. Za to odkrycie otrzymał w 1970 roku Nagrodę Nobla, a rozkład przez COMT przestał być postrzegany jako jedyny sposób kończenia działania katecholamin [3]. W latach dziewięćdziesiątych wyjaśniono budowę przestrzenną enzymu i zidentyfikowano jego częsty wariant Val158Met [2, 6].

2. Działanie molekularne

2.1. Reakcja katalizowana – substraty i produkty

COMT katalizuje jedną reakcję, ale na wielu substratach, bo rozpoznaje sam układ katecholowy, a nie resztę cząsteczki. Enzym przenosi grupę metylową z SAM na tlen grupy hydroksylowej w pozycji 3 pierścienia [2, 4]. Produktem jest pochodna 3-metoksylowa oraz S-adenozylohomocysteina (SAH), czyli SAM pozbawiona grupy metylowej [4]. Do reakcji potrzebne są trzy składniki: substrat katecholowy, SAM i jon Mg²⁺.

Reakcja przebiega w ustalonej kolejności. Najpierw w miejscu aktywnym wiąże się SAM, potem jon magnezu, a na końcu katechol [1, 4]. Jon Mg²⁺ ułatwia oddysocjowanie protonu z grupy hydroksylowej substratu, dzięki czemu tlen atakuje grupę metylową SAM [4]. Po przeniesieniu grupy uwalnia się produkt metylowany i SAH. Metylacja zmienia właściwości cząsteczki: metanefryna, czyli produkt metylacji adrenaliny, jest fizjologicznie nieaktywna [18].

Lista substratów obejmuje związki endogenne, leki i składniki pożywienia. Najważniejsze znaczenie fizjologiczne ma metylacja katecholamin, a klinicznie metylacja lewodopy [1, 4]. COMT metyluje również katecholoestrogeny, czyli 2- i 4-hydroksylowe pochodne estrogenów, między innymi w łożysku [19]. Substratami są także katechiny herbaty i flawonoidy o budowie katecholu, a ich metylacja zużywa SAM i wytwarza SAH [20].

Najważniejsze substraty COMT różnią się pochodzeniem, a ich produkty znaczeniem fizjologicznym i diagnostycznym.

Substrat Produkt O-metylacji Znaczenie produktu
Dopamina 3-metoksytyramina nieaktywny metabolit, dalej rozkładany przez MAO
Noradrenalina normetanefryna marker diagnostyczny guza chromochłonnego
Adrenalina metanefryna marker diagnostyczny guza chromochłonnego
Kwas 3,4-dihydroksyfenylooctowy kwas homowanilinowy końcowy metabolit dopaminy
Lewodopa 3-O-metylodopa produkt, który nie przechodzi w dopaminę, miara obwodowej aktywności COMT
2-hydroksyestradiol 2-metoksyestradiol metabolit estrogenu powstający między innymi w łożysku
Katechiny herbaty katechiny metylowane reakcja zużywa SAM i wytwarza SAH

Wszystkie produkty COMT łączy jedno: grupa metylowa na tlenie, która wyłącza cząsteczkę z dotychczasowej funkcji. Dla katecholamin oznacza to koniec działania sygnałowego, a dla lewodopy utratę części leku przed dotarciem do mózgu [4, 21].

2.2. Kinetyka i regulacja aktywności

Dwie formy COMT różnią się powinowactwem do substratów, co przesądza o tym, która z nich pracuje przy danym stężeniu katecholamin. Stała Michaelisa (Km), czyli stężenie substratu, przy którym enzym pracuje z połową szybkości maksymalnej, jest dla S-COMT około 15 razy wyższa niż dla MB-COMT [1]. S-COMT ma za to nieco większą szybkość maksymalną wobec dopaminy, noradrenaliny i lewodopy [1]. MB-COMT silniej wiąże też SAM: stała dysocjacji wynosi dla niej 3,4 µM, a dla formy rozpuszczalnej 20,2 µM [1].

Z tych liczb wynika podział pracy. MB-COMT metyluje katecholaminy już przy niskich stężeniach, jakie panują w tkance nerwowej. S-COMT osiąga pełną wydajność dopiero przy stężeniach wysokich, na przykład w wątrobie po doustnym przyjęciu lewodopy [1, 4].

Aktywność enzymu hamuje przede wszystkim SAH, produkt samej reakcji [4]. Gdy SAH gromadzi się szybciej, niż komórka zdoła ją przekształcić w homocysteinę w cyklu metioninowym, metylacja zwalnia. Aktywność COMT zależy też od temperatury: wariant z metioniną w pozycji 158 szybciej niż wariant z waliną traci aktywność po ogrzaniu [1, 6]. Kolejną grupę regulatorów tworzą inhibitory z grupy nitrokatecholi, które wiążą się w miejscu aktywnym zamiast substratu. Ta właściwość stała się podstawą leków stosowanych w chorobie Parkinsona [4].

2.3. Miejsce w szlaku metabolicznym

COMT jest jednym z dwóch enzymów rozkładu katecholamin, a drugi z nich, MAO, jest związany z zewnętrzną błoną mitochondriów. Oba enzymy przekształcają przekaźnik kolejno, a porządek ich działania bywa różny [4]. Dopamina może być najpierw utleniona przez MAO do kwasu 3,4-dihydroksyfenylooctowego (DOPAC), który COMT metyluje do kwasu homowanilinowego (HVA). Może też najpierw zostać zmetylowana przez COMT do 3-metoksytyraminy, którą MAO przekształca następnie w ten sam HVA [4]. Noradrenalina przechodzi analogiczne przemiany do normetanefryny, a adrenalina do metanefryny [4, 18].

Udział COMT w usuwaniu dopaminy zależy od okolicy mózgu, a decyduje o tym gęstość transportera dopaminy (DAT), czyli białka, które zwraca przekaźnik do zakończenia nerwowego. W prążkowiu transportera jest dużo i to on usuwa większość dopaminy [7]. W korze przedczołowej DAT występuje w małej ilości, więc dopamina zostaje w przestrzeni pozakomórkowej dłużej [7]. Część przekaźnika przejmuje tam transporter noradrenaliny (NET), czyli białko wychwytujące noradrenalinę, dlatego leki hamujące NET podnoszą w korze stężenie obu katecholamin [7, 22].

Znaczenie COMT sprawdzono u myszy pozbawionych genu enzymu. Stężenie dopaminy w korze przedczołowej wzrosło u nich o 60%, podczas gdy w prążkowiu i jądrze półleżącym pozostało bez zmian [7]. Autorzy oszacowali, że w korze przedczołowej myszy COMT odpowiada za około połowę całkowitego usuwania dopaminy [7]. Zmiany dotyczyły głównie kory czołowej i różniły się między płciami, co zauważono już w pierwszym opisie tych zwierząt [23]. Dane te pochodzą z modelu zwierzęcego, a u człowieka ten sam kierunek zależności potwierdzają pośrednio badania wariantów genu i leków hamujących enzym [12, 24].

Skutki zmiany aktywności COMT wyznacza kształt zależności między dopaminą a pracą kory przedczołowej. Zależność ta ma postać odwróconej litery U: zarówno za mało, jak i za dużo sygnału dopaminowego pogarsza pamięć roboczą i kontrolę poznawczą [25]. Ilustruje to badanie z amfetaminą, która zwiększa uwalnianie dopaminy. U osób z genotypem Val/Val, czyli przy wysokiej aktywności COMT, amfetamina poprawiała sprawność kory przedczołowej podczas zadania pamięciowego. U osób z genotypem Met/Met ten sam lek przy dużym obciążeniu pamięci pracę kory pogarszał [26]. Obniżenie aktywności COMT nie jest zatem korzystne ani szkodliwe samo w sobie, a jego skutek zależy od wyjściowego poziomu dopaminy w korze.

Katecholo-O-metylotransferaza (COMT) — Podział ról — transportery w prążkowiu, enzym w korze
Podział ról — transportery w prążkowiu, enzym w korze
W prążkowiu dopaminę usuwają głównie wyspecjalizowane transportery, natomiast w korze przedczołowej zadanie to przypada enzymowi COMT. To dlatego wpływ wariantów genu COMT ujawnia się przede wszystkim w obszarze funkcji wykonawczych.

2.4. Zmienność genetyczna i fenotypy metaboliczne

Aktywność COMT różni się między ludźmi w dużej mierze z powodów dziedzicznych. Głównym źródłem tej zmienności w korze przedczołowej jest wariant oznaczany numerem rs4680 [14]. Polega on na zamianie guaniny na adeninę w kodonie 158 genu, przez co w białku walina zostaje zastąpiona metioniną [6]. Enzym z metioniną jest mniej odporny na temperaturę, a różnica aktywności między homozygotami wynosi trzy- do czterech razy [6, 10, 12]. W badaniu pośmiertnym kory przedczołowej wariant zmieniał ilość białka i jego aktywność, ale nie ilość mRNA, czyli informacyjnego RNA przenoszącego zapis genu do rybosomów [14]. Wskazuje to na mniejszą trwałość cząsteczki białka, a nie na słabszą ekspresję genu. Płeć i wariant w promotorze P2 miały na aktywność wpływ niewielki [14].

Pojedynczy wariant nie wyczerpuje jednak zmienności genu. Diatchenko i współpracownicy opisali trzy główne haplotypy, czyli zestawy wariantów dziedziczonych razem, i nazwali je od wrażliwości na ból: LPS (niska), APS (przeciętna) i HPS (wysoka) [27]. Te trzy haplotypy obejmują 96% badanej populacji, a haplotyp LPS daje znacznie wyższą aktywność enzymu niż dwa pozostałe [27]. Haplotypy różnią się w dwóch pozycjach synonimicznych, które nie zmieniają aminokwasu, i w jednej pozycji zmieniającej białko [28]. Największą różnicę aktywności dawały właśnie warianty synonimiczne. Zmieniały one kształt pętli w cząsteczce mRNA, a najtrwalsza pętla ograniczała translację i obniżała ilość białka [28].

Trzy genotypy rs4680 różnią się aktywnością enzymu, przewidywanym stężeniem dopaminy w korze przedczołowej i wynikami testów poznawczych.

Genotyp rs4680 Aktywność enzymu Dopamina w korze przedczołowej Wyniki w testach funkcji wykonawczych
Val/Val najwyższa najniższa u zdrowych nieco słabsze niż przy Met/Met
Val/Met pośrednia pośrednia pośrednie
Met/Met trzy- do czterokrotnie niższa niż przy Val/Val najwyższa u zdrowych nieco lepsze niż przy Val/Val

Stężenie dopaminy w korze przedczołowej jest tu kierunkiem wyprowadzonym z aktywności enzymu, a nie wartością zmierzoną u konkretnej osoby. Genotyp wpływał na wyniki testu funkcji wykonawczych proporcjonalnie do liczby alleli Met, lecz wyjaśniał około 4% zmienności tych wyników [12]. W metaanalizie u zdrowych osób różnica między homozygotami była mała, a standaryzowana wielkość efektu wynosiła 0,29, a u chorych na schizofrenię nie wystąpiła [29]. Genotyp COMT wiąże się więc z położeniem na krzywej zależności między dopaminą a pracą kory przedczołowej, ale nie przesądza o sprawności poznawczej.

Katecholo-O-metylotransferaza (COMT) — Wariant genetyczny i krzywa odwróconego U
Wariant genetyczny i krzywa odwróconego U
Wpływ dopaminy na korę przedczołową opisuje krzywa odwróconego U. Oznacza to, że istnieje optymalne okno jej stężenia – zarówno niedobór wywołany zbyt szybkim rozkładem, jak i nadmiar będący skutkiem zbyt wolnej pracy enzymu, mogą upośledzić funkcje wykonawcze.

3. Znaczenie kliniczne

3.1. Następstwa obniżonej aktywności

Obniżona aktywność COMT występuje u nosicieli allelu Met, przy haplotypach APS i HPS oraz w zespole delecji 22q11.2, w którym brakuje jednej kopii genu [6, 11, 27]. Wolniejszy rozkład podnosi stężenie katecholamin tam, gdzie enzym ma duży udział w ich usuwaniu. Następstwa obejmują co najmniej trzy obszary: przetwarzanie bólu, reakcje emocjonalne i funkcje poznawcze.

Związek niskiej aktywności z bólem opisano zarówno u zwierząt, jak i u ludzi. U szczurów zahamowanie COMT wyraźnie zwiększało wrażliwość na bodźce bólowe [27]. U ludzi obecność choćby jednego haplotypu LPS zmniejszała do 2,3 razy ryzyko przewlekłego bólu mięśni żucia w zaburzeniu stawu skroniowo-żuchwowego [27]. Metaanaliza zespołów bólu przewlekłego wskazała allel Met jako czynnik ryzyka fibromialgii i przewlekłego bólu uogólnionego. Nie potwierdziła natomiast związku z migreną ani z przewlekłym bólem mięśniowo-szkieletowym [30]. Ta sama praca opisała korzystną stronę niskiej aktywności: w niektórych bólach nowotworowych nosiciele allelu Met silniej reagowali na opioidy [30]. Postulowanym mechanizmem jest wzmożona aktywność adrenergiczna i dopaminergiczna w układzie przewodzenia bólu, a niska aktywność COMT zwiększa też liczbę receptorów opioidowych [30].

Niska aktywność COMT wpływa też na zachowanie. Samice myszy pozbawione obu kopii genu wykazywały zaburzoną reaktywność emocjonalną w teście lęku. Samce z jedną kopią genu były bardziej agresywne [23]. U ludzi dane o związku genotypu z lękiem są niespójne [9, 31]. Allel Met wiąże się z lepszymi wynikami w zadaniach wykonawczych, ale efekt ten jest mały [29]. Przy nadmiarze dopaminy, na przykład po amfetaminie, genotyp Met/Met sprzyjał pogorszeniu pracy kory przedczołowej [26].

Oferta NeuroExpert
NeuroExpert · bez reklam
Masz dość reklam?
Wyłącz banery, przerywniki i dolną belkę. Subskrypcja daje także pełny dostęp do bazy wiedzy NeuroExpert oraz treści premium.
Bez reklam
Pełny dostęp
Treści premium
Wyłącz reklamy
Katecholo-O-metylotransferaza (COMT) — Ten sam enzym w metabolizmie estrogenów
Ten sam enzym w metabolizmie estrogenów
COMT unieczynnia również metabolity estrogenów. Przy jego niskiej aktywności wzrasta ryzyko, że związki te przekształcą się w reaktywne chinony, które mogą uszkadzać komórkowe DNA.

3.2. Następstwa podwyższonej aktywności

Wysoką aktywność COMT mają homozygoty Val/Val oraz nosiciele haplotypu LPS [6, 27]. Szybszy rozkład obniża stężenie dopaminy w korze przedczołowej, więc następstwa są odwrotnością tych opisanych przy aktywności niskiej. W badaniu chorych na schizofrenię, ich rodzeństwa i osób zdrowych każdy dodatkowy allel Val wiązał się z większą liczbą błędów perseweracyjnych w teście sortowania kart [12]. W badaniu czynnościowym rezonansem magnetycznym kora przedczołowa nosicieli allelu Val pracowała mniej wydajnie przy tym samym zadaniu pamięciowym [12].

Wysoka aktywność enzymu nie jest jednak wyłącznie niekorzystna. Stein i współpracownicy zaproponowali hipotezę „wojownika i zmartwionego” (ang. warrior/worrier) [31]. Zgodnie z nią allel Val daje przewagę w przetwarzaniu bodźców awersyjnych i w warunkach stresu, gdy dopaminy uwalnia się dużo. Allel Met ma dawać przewagę w zadaniach pamięciowych i uwagowych w warunkach spokoju [31]. Metaanaliza badań neuroobrazowych znalazła przeciwstawne efekty genotypu na aktywność kory przedczołowej. Przy zadaniach wykonawczych korzystniejszy był allel Met, a przy zadaniach emocjonalnych allel Val [32].

Replikacja tej hipotezy jest jednak niepełna. Późniejsza metaanaliza nie znalazła wpływu genotypu na aktywację mózgu podczas zadań pamięci roboczej [33]. Efekty behawioralne w testach funkcji wykonawczych były tym mniejsze, im nowsze było badanie [29]. Hipoteza „wojownika i zmartwionego” pozostaje więc modelem porządkującym dane, a nie ustaleniem pozwalającym przypisać konkretnej osobie profil psychologiczny.

3.3. Udział COMT w chorobach

Gen COMT badano w wielu chorobach, w których podejrzewano zaburzenie przekaźnictwa katecholaminowego. Wyniki są w większości słabe, niejednorodne i często zależne od pochodzenia etnicznego badanej grupy [9]. Metaanaliza obejmująca wszystkie zaburzenia psychiczne, dla których istniały dane, objęła 363 zbiory danych z piętnastu zaburzeń i znalazła związki ograniczone do podgrup [9].

Wiele prac dotyczy schizofrenii. Zespół delecji 22q11.2 obejmuje utratę jednej kopii fragmentu chromosomu o długości od 1,5 do 3 milionów par zasad i silnie zwiększa ryzyko schizofrenii oraz zaburzeń ze spektrum autyzmu [11]. COMT leży w usuwanym regionie, dlatego badano ją jako gen kandydujący w tej chorobie [10, 23]. W zespole delecji allel Met wiązał się w jednym badaniu z zaburzeniem dwubiegunowym o szybkiej zmianie faz [10]. W populacji ogólnej allel Val był częściej przekazywany potomstwu chorującemu na schizofrenię [12]. Metaanaliza 67 badań obejmujących 15 565 chorych i 17 251 osób zdrowych znalazła związek słaby: iloraz szans w modelu recesywnym wynosił 1,08, a w grupach azjatyckich związku nie było [34]. Przegląd historycznych genów kandydujących, uwzględniający wyniki badań genomowych, stwierdził, że badania takich genów, w tym COMT, nie wyjaśniły genetycznego podłoża schizofrenii [35]. Genotyp może natomiast mieć znaczenie farmakogenetyczne: w metaanalizie 30 badań wariant rs4680 wiązał się z odpowiedzią na leki przeciwpsychotyczne [36].

W bólu przewlekłym efekty genotypu są małe i zależą od rodzaju bólu [30, 37]. W metaanalizie badań bólu pooperacyjnego rs4680 wiązał się ze słabo wyższym natężeniem bólu przewlekłego po zabiegu, przy standaryzowanej różnicy średnich 0,26 [37]. Większość innych związków genetycznych opisanych w tej dziedzinie nie powtórzyła się w kolejnych badaniach [37].

W zespole nadpobudliwości psychoruchowej z deficytem uwagi (ADHD) wyniki są sprzeczne. Metaanaliza wszystkich zaburzeń psychicznych wiązała allel Val z ADHD i z zaburzeniem panicznym w grupach europejskiego pochodzenia [9]. Metaanaliza siedemnastu badań poświęconych wyłącznie ADHD nie znalazła związku w żadnym modelu genetycznym [38]. W zaburzeniach lękowych kierunek też nie jest jednoznaczny. Hipoteza „wojownika i zmartwionego” łączyła lęk z allelem Met, a metaanaliza wiązała zaburzenie paniczne z allelem Val [9, 31].

3.4. Punkt uchwytu leków

W chorobie Parkinsona COMT jest przeszkodą w leczeniu, bo rozkłada lewodopę, czyli prekursor dopaminy podawany w miejsce utraconego przekaźnika. Lewodopę podaje się razem z inhibitorem dekarboksylazy, który chroni ją przed przemianą w dopaminę poza mózgiem. Wówczas COMT staje się główną drogą jej obwodowego rozkładu do 3-O-metylodopy [4]. Inhibitor COMT hamuje tę drogę, przez co więcej lewodopy pozostaje we krwi dłużej i dociera do mózgu. Działanie lewodopy na przekaźnictwo dopaminergiczne w prążkowiu nasila się i wydłuża [21]. Okresy słabszego działania leku, tak zwane okresy „off”, ulegają wówczas skróceniu [8].

Dostępne są trzy inhibitory o różnych właściwościach. Entakapon i opikapon działają obwodowo i należą do zalecanych leków pierwszego wyboru dodawanych do lewodopy przy fluktuacjach ruchowych końca dawki [8]. Opikapon zaprojektowano tak, aby uniknąć dwóch wad starszych leków: uszkodzenia wątroby i krótkiego czasu działania [39]. W badaniu z randomizacją porównano go z placebo i z entakaponem u chorych z fluktuacjami ruchowymi [40]. Sieciowa metaanaliza 18 badań z udziałem 7564 chorych wskazała, że wszystkie trzy leki mogą wydłużać okresy dobrego działania lewodopy w porównaniu z placebo, przy czym wzrost istotny statystycznie wykazano dla opikaponu [41].

Tolkapon, trzeci inhibitor, jest inhibitorem COMT drugiego wyboru, ponieważ wymaga regularnej kontroli czynności wątroby [8]. U czterech chorych leczonych tolkaponem wystąpiło ciężkie uszkodzenie wątroby, co doprowadziło do ostrzeżenia w informacji o leku [42]. Panel ekspertów zauważył, że u chorych kontrolowanych zgodnie z pierwotnymi zasadami uszkodzenia wątroby nie stwierdzono, a prawie wszystkie nieprawidłowości pojawiały się w pierwszych sześciu miesiącach leczenia [42]. W odróżnieniu od leków obwodowych tolkapon działa także w mózgu. W przeglądzie 13 badań z randomizacją poprawiał on pamięć roboczą, lecz kierunek efektu zależał od genotypu COMT i był najbardziej spójny u osób Val/Val [24].

3.5. Czynniki wpływające na aktywność COMT

Aktywność COMT u danej osoby wyznaczają głównie czynniki niemodyfikowalne, a wpływ czynników zewnętrznych jest słabo udokumentowany. Największą część zmienności tłumaczą warianty genu i haplotypy [14, 27]. Niewielki wpływ ma płeć [14]. W łożysku aktywność metylowania katecholoestrogenów różniła się między kobietami do czterech razy [19].

Spośród czynników zewnętrznych badano głównie polifenole roślinne o budowie katecholu. Galusan epigallokatechiny (EGCG) z zielonej herbaty hamował ludzką COMT z wątroby in vitro już przy stężeniu 0,36 µM [43]. Podany doustnie szczurom umiarkowanie obniżał powstawanie 3-O-metylodopy [43]. Kwercetyna i katechiny herbaty również silnie hamowały enzym w probówce. U szczurów metylację lewodopy obniżała jednak tylko (+)-katechina, co autorzy wiązali z jej lepszą biodostępnością [44]. EGCG i kwercetyna hamują enzym różnymi mechanizmami, a wrażliwość na nie różniła się między próbkami ludzkiego łożyska [19].

Dane u ludzi nie potwierdzają hamowania COMT przez EGCG. W badaniu 24 zdrowych ochotników duża pojedyncza podaż EGCG nie obniżyła aktywności enzymu w krwinkach czerwonych, a nawet podniosła ją o 24% [45]. W tym samym badaniu aktywność enzymu wyraźnie obniżał genotyp Met/Met, a nie podaż EGCG [45].

Aktywność COMT zależy też od dostępności SAM i od usuwania SAH. Metylacja katechin z pożywienia zużywa SAM i zwiększa ilość SAH, która hamuje inne metylotransferazy [20]. Magnez jest niezbędnym kofaktorem reakcji [4]. Spośród substancji dostępnych jako suplementy wpływ na sam enzym udokumentowano dla EGCG i kwercetyny, i to głównie w warunkach laboratoryjnych [43–45]. Dawkowanie i interakcje tych substancji opisują karty działu Suplementy.

4. Uwagi praktyczne

4.1. Jak to zbadać

Aktywności COMT w mózgu nie da się zmierzyć u żywego człowieka, więc w praktyce oznacza się genotyp, aktywność enzymu we krwi albo produkty jego działania. Genotyp rs4680 oznacza się w wyizolowanym DNA metodą łańcuchowej reakcji polimerazy, a pierwszy opis testu wykorzystywał trawienie enzymem restrykcyjnym [6]. Wynik podaje jeden z trzech genotypów: Val/Val, Val/Met albo Met/Met. Genotyp jest cechą dziedziczną, więc jego wynik nie zmienia się w ciągu życia.

Wynik genotypowania określa, jaki wariant białka ktoś wytwarza, ale nie określa, ile dopaminy ma w korze przedczołowej. O tym decydują także synteza dopaminy, jej uwalnianie, transportery i pozostałe warianty genu [7, 28]. Pojedynczy wariant wyjaśniał w badaniach około 4% zmienności funkcji wykonawczych, a jego związki z chorobami psychicznymi są słabe [12, 34]. Genotyp nie jest więc podstawą rozpoznania ani decyzji o leczeniu poza badaniami naukowymi. W badaniach naukowych służy między innymi do przewidywania reakcji na tolkapon w zadaniach pamięciowych [24].

Aktywność COMT w krwinkach czerwonych mierzono w badaniach naukowych, na przykład przy ocenie wpływu EGCG na enzym [45]. Pomiar ten odzwierciedla formę rozpuszczalną, a nie błonową, która przeważa w mózgu [4, 14].

Najważniejszym zastosowaniem klinicznym są produkty COMT. Oznaczenie wolnych metanefryn w osoczu albo frakcjonowanych metanefryn w moczu jest według wytycznych Towarzystwa Endokrynologicznego badaniem pierwszego wyboru w rozpoznawaniu guza chromochłonnego i przyzwojaka [46]. Ponad 93% podwyższonych metanefryn w osoczu tych chorych pochodzi z metylacji katecholamin wewnątrz guza [15]. Wyjaśnia to, dlaczego metanefryny wykrywają także guzy, które katecholamin do krwi wydzielają niewiele. Na wynik wpływają czynniki przedanalityczne, dlatego każdy wynik dodatni wymaga dalszej weryfikacji [46]. W badaniach farmakologicznych miarą obwodowej aktywności COMT bywa stężenie 3-O-metylodopy we krwi [4, 43].

4.2. Na co warto zwrócić uwagę

Wokół COMT narosły przekonania z pogranicza tak zwanej nutrigenomiki, czyli dziedziny badającej związki między genami a dietą. Jedno z nich głosi, że osoba z genotypem Met/Met jest „wolnym metylatorem”, który wymaga specjalnej diety lub suplementów. Określenie to łączy dwie różne rzeczy: aktywność jednego enzymu i ogólną sprawność metylacji w organizmie. Wariant Met dotyczy wyłącznie białka COMT i obniża jego trwałość [6, 14], więc nie opisuje ilości SAM ani aktywności innych metylotransferaz. Dostępne metaanalizy dotyczą samego genotypu i wskazują na efekty małe [29, 35]. Z tak małych efektów nie da się wyprowadzić diety dobranej do genotypu konkretnej osoby.

Drugie przekonanie zakłada, że allel Met jest „lepszy”, bo daje więcej dopaminy w korze przedczołowej. Krzywa odwróconego U pokazuje, że korzyść zależy od punktu wyjścia i od sytuacji [25]. Ten sam genotyp sprzyjał pracy kory w spokoju i utrudniał ją po amfetaminie [26]. Nie ma więc wariantu korzystnego w każdych warunkach.

Trzecie przekonanie dotyczy produktów roślinnych, które miałyby „hamować COMT” i w ten sposób podnosić dopaminę. Dane z probówki i z badań na szczurach nie przenoszą się wprost na człowieka, bo o działaniu decyduje stężenie związku osiągalne w tkankach [44]. W badaniu u zdrowych ochotników duża podaż EGCG enzymu nie zahamowała [45].

Ograniczenia dowodowe dotyczą całej genetyki COMT. Wczesne badania podawały większe efekty niż późniejsze, a nowsze metaanalizy dają wyniki mniejsze lub zerowe [29, 33]. Związki różnią się między płciami i grupami etnicznymi, dlatego wynik z jednej populacji nie przenosi się na inną [9]. Leki hamujące COMT działają skutecznie, ale ich stosowanie wymaga nadzoru lekarskiego, a tolkapon kontroli czynności wątroby [8, 42]. Treść hasła ma charakter edukacyjny i nie zastępuje konsultacji lekarskiej.

Najważniejsze ustalenia - Katecholo-O-metylotransferaza (COMT)

Katecholo-O-metylotransferaza (COMT) odpowiada za mniej więcej połowę usuwania dopaminy z kory przedczołowej, a w prążkowiu jej brak nie zmienia stężenia tego przekaźnika [7]. Ponad 93% podwyższonych metanefryn w osoczu chorych z guzem chromochłonnym powstaje z udziałem katecholo-O-metylotransferazy (COMT) wewnątrz guza, a nie po wydzieleniu katecholamin do krwi [15]. Odkrycie to stanowiło przełom w diagnostyce onkologicznej i endokrynologicznej. Katecholo-O-metylotransferazę (COMT) uznano w 1958 roku za główny enzym kończący działanie adrenaliny, a w 1970 roku Nagrodę Nobla…

Dostęp dla subskrybentów
Ta treść jest dostępna po zalogowaniu.
Masz już konto? Zaloguj się
Wykup dostęp

Źródła wyszukane w PubMed (NLM/NCBI). Przy każdej pozycji podano identyfikator PMID i odnośnik DOI.

  1. Lotta T, Vidgren J, Tilgmann C, Ulmanen I, Melén K, Julkunen I, et al. Kinetics of human soluble and membrane-bound catechol O-methyltransferase: a revised mechanism and description of the thermolabile variant of the enzyme. Biochemistry. 1995;34(13):4202-10. DOI · PMID: 7703232
  2. Vidgren J, Svensson LA, Liljas A. Crystal structure of catechol O-methyltransferase. Nature. 1994;368(6469):354-8. DOI · PMID: 8127373
  3. Iversen L. Julius Axelrod: 20 May 1912 – 29 December. 2004. DOI · PMID: 18543469
  4. Männistö PT, Kaakkola S. Catechol-O-methyltransferase (COMT): biochemistry, molecular biology, pharmacology, and clinical efficacy of the new selective COMT inhibitors. Pharmacol Rev. 1999;51(4):593-628. PMID: 10581325
  5. Tenhunen J, Salminen M, Lundström K, Kiviluoto T, Savolainen R, Ulmanen I. Genomic organization of the human catechol O-methyltransferase gene and its expression from two distinct promoters. Eur J Biochem. 1994;223(3):1049-59. DOI · PMID: 8055944
  6. Lachman HM, Papolos DF, Saito T, Yu YM, Szumlanski CL, Weinshilboum RM. Human catechol-O-methyltransferase pharmacogenetics: description of a functional polymorphism and its potential application to neuropsychiatric disorders. Pharmacogenetics. 1996;6(3):243-50. DOI · PMID: 8807664
  7. Käenmäki M, Tammimäki A, Myöhänen T, Pakarinen K, Amberg C, Karayiorgou M, et al. Quantitative role of COMT in dopamine clearance in the prefrontal cortex of freely moving mice. J Neurochem. 2010;114(6):1745-55. DOI · PMID: 20626558
  8. Fabbri M, Ferreira JJ, Rascol O. COMT inhibitors in the management of Parkinson’s disease. CNS Drugs. 2022;36(3):261-282. DOI · PMID: 35217995
  9. Taylor S. Association between COMT Val158Met and psychiatric disorders: a comprehensive meta-analysis. Am J Med Genet B Neuropsychiatr Genet. 2018;177(2):199-210. DOI · PMID: 28608575
  10. Lachman HM, Morrow B, Shprintzen R, Veit S, Parsia SS, Faedda G, et al. Association of codon 108/158 catechol-O-methyltransferase gene polymorphism with the psychiatric manifestations of velo-cardio-facial syndrome. Am J Med Genet. 1996;67(5):468-72. DOI · PMID: 8886163
  11. Devaraju P. Neuropsychiatric disease mechanisms and interventions from 22q11.2 deletion syndrome experimental studies. Prog Neurobiol. 2026;264:102940. DOI · PMID: 42362175
  12. Egan MF, Goldberg TE, Kolachana BS, Callicott JH, Mazzanti CM, Straub RE, et al. Effect of COMT Val108/158 Met genotype on frontal lobe function and risk for schizophrenia. Proc Natl Acad Sci U S A. 2001;98(12):6917-22. DOI · PMID: 11381111
  13. Chen J, Song J, Yuan P, Tian Q, Ji Y, Ren-Patterson R, et al. Orientation and cellular distribution of membrane-bound catechol-O-methyltransferase in cortical neurons: implications for drug development. J Biol Chem. 2011;286(40):34752-60. DOI · PMID: 21846718
  14. Chen J, Lipska BK, Halim N, Ma QD, Matsumoto M, Melhem S, et al. Functional analysis of genetic variation in catechol-O-methyltransferase (COMT): effects on mRNA, protein, and enzyme activity in postmortem human brain. Am J Hum Genet. 2004;75(5):807-21. DOI · PMID: 15457404
  15. Eisenhofer G, Keiser H, Friberg P, Mezey E, Huynh TT, Hiremagalur B, et al. Plasma metanephrines are markers of pheochromocytoma produced by catechol-O-methyltransferase within tumors. J Clin Endocrinol Metab. 1998;83(6):2175-85. DOI · PMID: 9626157
  16. Axelrod J. O-methylation of epinephrine and other catechols in vitro and in vivo. Science. 1957;126(3270):400-1. DOI · PMID: 13467217
  17. Axelrod J, Tomchick R. Enzymatic O-methylation of epinephrine and other catechols. J Biol Chem. 1958;233(3):702-5. PMID: 13575440
  18. LaBrosse EH, Axelrod J, Kety SS. O-Methylation, the principal route of metabolism of epinephrine in man. Science. 1958;128(3324):593-4. DOI · PMID: 13580222
  19. Zhu BT, Wu KY, Wang P, Cai MX, Conney AH. O-methylation of catechol estrogens by human placental catechol-o-methyltransferase: interindividual differences in sensitivity to heat inactivation and to inhibition by dietary polyphenols. Drug Metab Dispos. 2010;38(10):1892-9. DOI · PMID: 20606002
  20. Lee WJ, Shim JY, Zhu BT. Mechanisms for the inhibition of DNA methyltransferases by tea catechins and bioflavonoids. Mol Pharmacol. 2005;68(4):1018-30. DOI · PMID: 16037419
  21. Regensburger M, Ip CW, Kohl Z, Schrader C, Urban PP, Kassubek J, et al. Clinical benefit of MAO-B and COMT inhibition in Parkinson’s disease: practical considerations. J Neural Transm (Vienna). 2023;130(6):847-861. DOI · PMID: 36964457
  22. Miner LH, Schroeter S, Blakely RD, Sesack SR. Ultrastructural localization of the norepinephrine transporter in superficial and deep layers of the rat prelimbic prefrontal cortex and its spatial relationship to probable dopamine terminals. J Comp Neurol. 2003;466(4):478-94. DOI · PMID: 14566944
  23. Gogos JA, Morgan M, Luine V, Santha M, Ogawa S, Pfaff D, et al. Catechol-O-methyltransferase-deficient mice exhibit sexually dimorphic changes in catecholamine levels and behavior. Proc Natl Acad Sci U S A. 1998;95(17):9991-6. DOI · PMID: 9707588
  24. Kings E, Ioannidis K, Grant JE, Chamberlain SR. A systematic review of the cognitive effects of the COMT inhibitor, tolcapone, in adult humans. CNS Spectr. 2024;29(3):166-175. DOI · PMID: 38487834
  25. Cools R, D’Esposito M. Inverted-U-shaped dopamine actions on human working memory and cognitive control. Biol Psychiatry. 2011;69(12):e113-25. DOI · PMID: 21531388
  26. Mattay VS, Goldberg TE, Fera F, Hariri AR, Tessitore A, Egan MF, et al. Catechol O-methyltransferase val158-met genotype and individual variation in the brain response to amphetamine. Proc Natl Acad Sci U S A. 2003;100(10):6186-91. DOI · PMID: 12716966
  27. Diatchenko L, Slade GD, Nackley AG, Bhalang K, Sigurdsson A, Belfer I, et al. Genetic basis for individual variations in pain perception and the development of a chronic pain condition. Hum Mol Genet. 2005;14(1):135-43. DOI · PMID: 15537663
  28. Nackley AG, Shabalina SA, Tchivileva IE, Satterfield K, Korchynskyi O, Makarov SS, et al. Human catechol-O-methyltransferase haplotypes modulate protein expression by altering mRNA secondary structure. Science. 2006;314(5807):1930-3. DOI · PMID: 17185601
  29. Barnett JH, Jones PB, Robbins TW, Müller U. Effects of the catechol-O-methyltransferase Val158Met polymorphism on executive function: a meta-analysis of the Wisconsin Card Sort Test in schizophrenia and healthy controls. Mol Psychiatry. 2007;12(5):502-9. DOI · PMID: 17325717
  30. Tammimäki A, Männistö PT. Catechol-O-methyltransferase gene polymorphism and chronic human pain: a systematic review and meta-analysis. Pharmacogenet Genomics. 2012;22(9):673-91. DOI · PMID: 22722321
  31. Stein DJ, Newman TK, Savitz J, Ramesar R. Warriors versus worriers: the role of COMT gene variants. CNS Spectr. 2006;11(10):745-8. DOI · PMID: 17008817
  32. Mier D, Kirsch P, Meyer-Lindenberg A. Neural substrates of pleiotropic action of genetic variation in COMT: a meta-analysis. Mol Psychiatry. 2010;15(9):918-27. DOI · PMID: 19417742
  33. Nickl-Jockschat T, Janouschek H, Eickhoff SB, Eickhoff CR. Lack of meta-analytic evidence for an impact of COMT Val158Met genotype on brain activation during working memory tasks. Biol Psychiatry. 2015;78(11):e43-6. DOI · PMID: 25861704
  34. González-Castro TB, Hernández-Díaz Y, Juárez-Rojop IE, López-Narváez ML, Tovilla-Zárate CA, Fresan A. The role of a catechol-O-methyltransferase (COMT) Val158Met genetic polymorphism in schizophrenia: a systematic review and updated meta-analysis on 32,816 subjects. Neuromolecular Med. 2016;18(2):216-31. DOI · PMID: 27020768
  35. Farrell MS, Werge T, Sklar P, Owen MJ, Ophoff RA, O’Donovan MC, et al. Evaluating historical candidate genes for schizophrenia. Mol Psychiatry. 2015;20(5):555-62. DOI · PMID: 25754081
  36. Ma J, Zhao M, Zhou W, Li M, Huai C, Shen L, et al. Association between the COMT Val158Met polymorphism and antipsychotic efficacy in schizophrenia: an updated meta-analysis. Curr Neuropharmacol. 2021;19(10):1780-1790. DOI · PMID: 33100205
  37. Frangakis SG, MacEachern M, Akbar TA, Bolton C, Lin V, Smith AV, et al. Association of genetic variants with postsurgical pain: a systematic review and meta-analyses. Anesthesiology. 2023;139(6):827-839. DOI · PMID: 37774411
  38. Kang P, Luo L, Peng X, Wang Y. Association of Val158Met polymorphism in COMT gene with attention-deficit hyperactive disorder: an updated meta-analysis. Medicine (Baltimore). 2020;99(48):e23400. DOI · PMID: 33235119
  39. Jost WH. Evaluating opicapone as add-on treatment to levodopa/DDCI in patients with Parkinson’s disease. Neuropsychiatr Dis Treat. 2022;18:1603-1618. DOI · PMID: 35968514
  40. Ferreira JJ, Lees A, Rocha JF, Poewe W, Rascol O, Soares-da-Silva P, et al. Opicapone as an adjunct to levodopa in patients with Parkinson’s disease and end-of-dose motor fluctuations: a randomised, double-blind, controlled trial. Lancet Neurol. 2016;15(2):154-165. DOI · PMID: 26725544
  41. Wu W, Lu X, Zhang L, Hong D. Effectiveness and safety of different catechol-o-methyl transferase inhibitors for patients with parkinson’s disease: systematic review and network meta-analysis. Clin Neurol Neurosurg. 2024;239:108189. DOI · PMID: 38437773
  42. Olanow CW. Tolcapone and hepatotoxic effects. Tasmar Advisory Panel. Arch Neurol. 2000;57(2):263-7. DOI · PMID: 10681087
  43. Kang KS, Wen Y, Yamabe N, Fukui M, Bishop SC, Zhu BT. Dual beneficial effects of (-)-epigallocatechin-3-gallate on levodopa methylation and hippocampal neurodegeneration: in vitro and in vivo studies. PLoS One. 2010;5(8):e11951. DOI · PMID: 20700524
  44. Kang KS, Yamabe N, Wen Y, Fukui M, Zhu BT. Beneficial effects of natural phenolics on levodopa methylation and oxidative neurodegeneration. Brain Res. 2013;1497:1-14. DOI · PMID: 23206800
  45. Lorenz M, Paul F, Moobed M, Baumann G, Zimmermann BF, Stangl K, et al. The activity of catechol-O-methyltransferase (COMT) is not impaired by high doses of epigallocatechin-3-gallate (EGCG) in vivo. Eur J Pharmacol. 2014;740:645-51. DOI · PMID: 24972245
  46. Lenders JW, Duh QY, Eisenhofer G, Gimenez-Roqueplo AP, Grebe SK, Murad MH, et al. Pheochromocytoma and paraganglioma: an endocrine society clinical practice guideline. J Clin Endocrinol Metab. 2014;99(6):1915-42. DOI · PMID: 24893135

Podobne wpisy