Encyklopedia

Szlak Nrf2/ARE

Szlak Nrf2/ARE to droga sygnałowa, która włącza w komórce geny obrony przed utleniaczami i związkami reaktywnymi. Czujnikiem jest białko Keap1, które w spoczynku kieruje czynnik transkrypcyjny Nrf2 do szybkiego rozkładu, a pod wpływem bodźca ten rozkład zwalnia. Uwolniony Nrf2 wchodzi do jądra i uruchamia transkrypcję kilkuset genów cytoochronnych.
Poziom:
Czas czytania:
28 MIN
Ostatnia aktualizacja: 1 października, 2026
Szlak Nrf2/ARE — Czujnik trzymany na uwięzi, dopóki nie ma zagrożenia
Udostępnij:
Spis Treści

W skrócie

  • Czym jest szlak Nrf2/ARE?
    Szlak Nrf2/ARE to komórkowy układ obrony antyoksydacyjnej, w którym czynnik transkrypcyjny Nrf2 po uwolnieniu od białka Keap1 pobudza geny wyposażone w sekwencję ARE, czyli element odpowiedzi antyoksydacyjnej.
  • Co aktywuje Nrf2?
    Nrf2 aktywują utleniacze i związki elektrofilowe, które modyfikują reaktywne cysteiny białka Keap1. Do induktorów należą sulforafan z brokułów oraz leki takie jak fumaran dimetylu, działające przez zahamowanie rozkładu Nrf2.
  • Za co odpowiada szlak Nrf2/ARE?
    Szlak Nrf2/ARE odpowiada za wytwarzanie enzymów neutralizujących utleniacze, syntezę i regenerację glutationu, metabolizm ksenobiotyków oraz gospodarkę żelazem i hemem. Nadaje komórce odporność na stres oksydacyjny i chemiczny.
  • Czym Nrf2 różni się od antyoksydantów z diety?
    Nrf2 nie zmiata utleniaczy bezpośrednio, lecz włącza geny własnych enzymów komórki. Induktory Nrf2 działają więc pośrednio i długotrwale, inaczej niż witamina C czy E, które reagują z utleniaczami wprost.
  • Czy nadmierna aktywność Nrf2 jest szkodliwa?
    Nadmierna, trwała aktywność Nrf2 sprzyja przeżyciu komórek nowotworowych i ich oporności na chemioterapię. W części raków płuca mutacje genów KEAP1 lub NFE2L2 utrzymują szlak stale włączony.
  • Czy Nrf2 słabnie z wiekiem?
    Odpowiedź Nrf2 na wysiłek fizyczny była u starszych mężczyzn słabsza niż u młodych, bo w badaniach czynnik gorzej przechodził do jądra komórek krwi. W wątrobie starych szczurów spadek aktywności Nrf2 obniżał syntezę glutationu.
  • Czy da się zmierzyć aktywność Nrf2?
    Aktywności Nrf2 nie oznacza się w rutynowej diagnostyce. W badaniach naukowych mierzy się pośrednio ekspresję genów docelowych, na przykład NQO1 i HMOX1, w komórkach jednojądrzastych krwi.

1. Charakterystyka szlaku Nrf2/ARE

1.1. Definicja i zakres procesów

Szlak Nrf2/ARE to ciąg zdarzeń, w którym czynnik transkrypcyjny Nrf2 (ang. nuclear factor erythroid 2-related factor 2, kodowany przez gen NFE2L2) przechodzi od stanu ciągłego rozkładu do stanu aktywnej regulacji genów [1]. Stan aktywny kończy się wiązaniem sekwencji ARE (ang. antioxidant response element, element odpowiedzi antyoksydacyjnej) w rejonach regulatorowych genów docelowych [1]. Sam Nrf2 należy do rodziny czynników z suwakiem leucynowym o zasadowym rejonie wiążącym DNA, zwanej CNC (ang. cap’n’collar) [1]. Pojęcie obejmuje pełną drogę od bodźca do transkrypcji. Mieszczą się w nim czujnik Keap1 (ang. Kelch-like ECH-associated protein 1), rozkład i stabilizacja Nrf2, jego przemieszczenie do jądra oraz złożenie kompleksu z małymi białkami Maf [1, 2].

Sekwencję ARE opisano po raz pierwszy jako element o rdzeniu 5′-puGTGACNNNGC-3′ w genach reduktazy chinonowej i transferazy glutationowej [3]. Reagował on na utleniacze i fenolowe antyoksydanty [3]. Szlak Nrf2/ARE bywa mylony z bezpośrednim zmiataniem wolnych rodników. Różni się od niego kierunkiem działania: nie neutralizuje utleniaczy wprost, lecz zwiększa wytwarzanie enzymów, które to robią [1]. Jego induktory działają więc pośrednio. Odrębne są też pokrewne czynniki tej samej rodziny. Nrf1 (gen NFE2L1) tkwi w błonie siateczki śródplazmatycznej i steruje przede wszystkim odbudową proteasomu po jego zahamowaniu [4]. Nrf3 (gen NFE2L3) reguluje głównie różnicowanie, proteostazę i przemiany lipidów, a jego rola w obronie redoks pozostaje słabo poznana [5].

Zakres pojęcia jest szeroki, bo Nrf2 steruje transkrypcją ponad dwustu pięćdziesięciu genów u człowieka [6]. Ich produkty obejmują enzymy fazy drugiej biotransformacji, składniki układu glutationu i tioredoksyny oraz białka gospodarki żelazem i hemem [1, 6]. Znaczenie szlaku wynika z jego uniwersalności. Jedna droga sygnałowa dostraja obronę komórki do bieżącego poziomu zagrożenia utleniaczami [2]. Jej zaburzenia pojawiają się zarówno w nowotworach, jak i w chorobach z niedoborem tej obrony, co uzasadnia opis w osobnym haśle [2, 6].

Szlak Nrf2/ARE — Wejście do jądra i włączenie baterii genów
Wejście do jądra i włączenie baterii genów
W jądrze Nrf2 włącza całą baterię genów obronnych naraz — enzymy, transportery i syntezę glutationu.

1.2. Lokalizacja

Szlak Nrf2/ARE działa w niemal wszystkich tkankach, bo białka Nrf2 i Keap1 mają powszechną ekspresję [1]. Sam proces rozgrywa się w dwóch przedziałach komórki. Rozkład i stabilizacja Nrf2 zachodzą w cytoplazmie, a wiązanie sekwencji ARE i regulacja genów w jądrze [1]. Punkt kontrolny leży na styku tych przedziałów. Aktywacja szlaku sprowadza się bowiem do przesunięcia równowagi Nrf2 z cytoplazmy do jądra.

Tkanka nerwowa jest przykładem, w którym rozmieszczenie aktywności ma następstwa. Neurony przodomózgowia mają wyjściowo słabą obronę antyoksydacyjną [7]. Ich promotor genu NFE2L2 jest wyciszony epigenetycznie w toku dojrzewania [7]. Astrocyty utrzymują aktywny szlak Nrf2/ARE i zaopatrują sąsiednie neurony w prekursory glutationu [8]. Ciężar obrony redoks spoczywa więc na komórkach glejowych [8]. W chorobie Alzheimera Nrf2 w neuronach hipokampa pozostaje w cytoplazmie mimo obecności stresu oksydacyjnego [9]. W chorobie Parkinsona gromadzi się natomiast w jądrach neuronów istoty czarnej, choć bez pełnej ochrony przed zwyrodnieniem [9]. Rozmieszczenie aktywności Nrf2 decyduje więc o tym, które neurony są na uszkodzenie oksydacyjne najbardziej narażone.

1.3. Rys historyczny

Historia szlaku prowadzi od nienazwanej sekwencji regulatorowej do pełnego czujnika chemicznego. W 1991 roku Rushmore i współpracownicy opisali element odpowiedzi antyoksydacyjnej w genach reduktazy chinonowej i transferazy glutationowej [3]. Ustalili jego rdzeń i wykazali reakcję na utleniacze oraz fenolowe antyoksydanty [3]. Wcześniej indukcję enzymów fazy drugiej wiązano z reaktywnymi związkami, lecz nie znano wspólnego elementu ani rozpoznającego go białka [3]. W 1992 roku Zhang i Talalay wyizolowali z brokułów sulforafan [10]. Okazał się on silnym, wybiórczym induktorem enzymów fazy drugiej i dostarczył narzędzia do badania tej drogi [10].

Białko wiążące sekwencję zidentyfikowano dwa lata później. W 1994 roku Moi i współpracownicy sklonowali czynnik Nrf2, opisując go jako aktywator z rodziny CNC-bZIP o powszechnej ekspresji [11]. Jego rolę w obronie potwierdziły w 1997 roku badania Itoh i współpracowników na myszach pozbawionych genu Nrf2 [12]. Indukcja transferazy glutationowej i reduktazy chinonowej przez fenolowy antyoksydant zanikała u tych zwierząt w wątrobie i jelicie [12]. Nrf2 wiązał sekwencję ARE dopiero jako heterodimer z małym białkiem Maf [12]. W 1999 roku ten sam zespół odkrył białko Keap1 jako represor Nrf2 [13]. Keap1 wiązał Nrf2 w cytoplazmie i uwalniał go pod wpływem związków elektrofilowych, co domknęło model czujnika [13].

1.4. Warunki i bodźce uruchamiające

Szlak Nrf2/ARE uruchamiają utleniacze i związki elektrofilowe, czyli cząsteczki reagujące z bogatymi w elektrony grupami tiolowymi [13, 14]. Wspólnym miejscem odbioru sygnału są reaktywne reszty cysteinowe białka Keap1. Dowód bezpośredni dostarczyła w 2002 roku praca Dinkovej-Kostovej i współpracowników, która wykazała, że induktory reagują kowalencyjnie z grupami tiolowymi Keap1, a najbardziej reaktywne z dwudziestu pięciu cystein leżą w rejonie pośrednim białka [14].

Poszczególne cysteiny pełnią różne role. Zhang i Hannink w 2003 roku wskazali, że reszty Cys273 i Cys288 są potrzebne do ubikwitynacji Nrf2 przez Keap1 [15]. Reszta Cys151 pośredniczy natomiast w hamowaniu tego rozkładu przez sulforafan i utleniacze [15]. Późniejsze badania na komórkach i myszach z podstawionymi cysteinami pozwoliły podzielić induktory na klasy [16]. Jedne działają przez Cys151, inne przez Cys288, a jeszcze inne przez wszystkie trzy reszty naraz [16]. Rozpoznanie bodźca sprowadza się więc do chemicznej zmiany czujnika, a nie do wiązania go z receptorem.

2. Przebieg i regulacja

2.1. Etapy procesu

Punktem wyjścia szlaku jest stan podstawowy, w którym Nrf2 powstaje nieprzerwanie, ale nie gromadzi się w komórce. Nrf2 jest w cytoplazmie zatrzymywany przez białko Keap1 [17]. Keap1 pełni przy tym funkcję białka adaptorowego dla ligazy ubikwitynowej opartej na kulinie 3 [17]. Kompleks Keap1–Cul3 przyłącza łańcuch ubikwityny do Nrf2 i kieruje go do rozkładu w proteasomie [17]. Okres półtrwania Nrf2 wynosi w spoczynku poniżej dwudziestu minut [17]. Rozkład wymaga fizycznego związania Nrf2 z Keap1 [18]. Jego miejscem docelowym jest domena Neh2 na końcu aminowym Nrf2, pełniąca funkcję degronu wrażliwego na utleniacze [18]. Ciągła degradacja utrzymuje więc stężenie Nrf2 na bardzo niskim poziomie.

Bodziec przerywa ten stan. Utleniacz lub elektrofil modyfikuje reaktywne cysteiny Keap1, co zmienia ułożenie dimeru i zatrzymuje przekazywanie ubikwityny [15, 17]. Model zawiasu i zatrzasku tłumaczy ten krok mechanicznie. Nrf2 wiąże się z Keap1 mocnym motywem ETGE, pełniącym funkcję zawiasu, i słabszym motywem DLG, pełniącym funkcję zatrzasku [19]. Modyfikacja cystein rozłącza zatrzask, przez co Nrf2 pozostaje uchwycony jednym motywem i nie jest już ustawiany do ubikwitynacji [19]. Nowo powstałe cząsteczki Nrf2 omijają wtedy zajęty czujnik i gromadzą się w komórce [18].

Stanem końcowym jest aktywna transkrypcja. Ustabilizowany Nrf2 przemieszcza się do jądra i łączy się z małym białkiem Maf w heterodimer [1]. Heterodimer wiąże sekwencję ARE o rdzeniu 5′-TGAC-3′ w rejonach regulatorowych genów docelowych [1]. Wiązanie to zwiększa transkrypcję genów obrony antyoksydacyjnej i detoksykacji, co przywraca równowagę redoks komórki. Po ustąpieniu bodźca odtworzony Keap1 ponownie przejmuje Nrf2 [17]. Szlak wraca wtedy do stanu podstawowego, zamykając pętlę sprzężenia zwrotnego [17].

2.2. Białka kluczowe

Przebieg szlaku Nrf2/ARE wyznacza kilka białek o odrębnych zadaniach, dlatego ich rozdzielenie porządkuje cały mechanizm. Nrf2 jest białkiem modułowym o siedmiu domenach Neh1–Neh7, z których każda pełni inną funkcję [1]. Domena Neh1 zawiera rejon CNC-bZIP odpowiedzialny za wiązanie DNA i za łączenie się z partnerem dimeryzacji [1]. Domena Neh2 niesie motywy wiązania Keap1, a domena Neh6 drugi degron sterujący rozkładem niezależnym od Keap1 [1, 21]. Małe białka Maf są obowiązkowym partnerem Nrf2 [12]. Dopiero heterodimer Nrf2 z małym Maf wiąże sekwencję ARE z dużym powinowactwem [12].

Keap1 łączy dwie funkcje. Jest czujnikiem stanu redoks przez swoje reaktywne cysteiny i adaptorem wiążącym Nrf2 z ligazą ubikwitynową [15, 17]. Kulina 3 tworzy rdzeń tej ligazy i przyłącza ubikwitynę do Nrf2 uchwyconego przez Keap1 [17]. Osobną rolę pełni Bach1, białko tej samej rodziny [20]. Współzawodniczy ono z Nrf2 o część sekwencji ARE i wygasza transkrypcję niektórych genów docelowych, dopóki nie zostanie usunięte [20]. Poza czujnikiem redoks działa jeszcze białko β-TrCP [21]. Rozpoznaje ono Nrf2 ufosforylowany w domenie Neh6 i kieruje go do rozkładu drogą niezależną od Keap1 [21]. Aktywność Nrf2 zależy więc nie od jednej, lecz od kilku równoległych kontroli.

2.3. Czynniki nasilające działanie szlaku Nrf2/ARE

Aktywność szlaku Nrf2/ARE nasila wszystko, co osłabia rozkład Nrf2 albo zajmuje białko Keap1. Podstawową grupą są związki elektrofilowe i utleniacze [14, 15]. Modyfikują one reaktywne cysteiny Keap1 i zatrzymują przekazywanie ubikwityny [14, 15]. Grupę tę tworzą sulforafan z brokułów oraz metabolity fumaranu dimetylu, wiążące się z Cys151 Keap1 [15, 40]. Podobnie działają elektrofilowe produkty własnych przemian komórki, pochodzące z utleniania lipidów, przemian aminokwasów i centralnego metabolizmu węgla [23]. Modyfikują one te same cysteiny Keap1 i łączą stan metaboliczny z odpowiedzią antyoksydacyjną [23]. Podnoszą one aktywność szlaku w warunkach stresu metabolicznego [23].

Drugą drogą nasilenia jest współzawodnictwo o Keap1. Białko p62 gromadzi się przy upośledzonej autofagii [22]. Wiąże się z tym samym miejscem Keap1 co Nrf2 i wypiera go z kompleksu [22]. Uwolniony Nrf2 unika wtedy rozkładu i włącza geny docelowe [22]. Ten sposób łączy sprawność autofagii ze stanem obrony antyoksydacyjnej, bo nagromadzenie p62 podnosi aktywność Nrf2 niezależnie od utleniaczy [22]. Wszystkie czynniki nasilające mają wspólną cechę: nie zwiększają wytwarzania Nrf2, lecz przedłużają jego trwanie w komórce.

Szlak Nrf2/ARE — Mechanizm czujnika — modyfikacja cystein zwalnia uchwyt
Mechanizm aktywacji Nrf2
Czujnikiem są reszty cysteinowe białka KEAP1. Ich modyfikacja osłabia wiązanie Nrf2 z KEAP1, dzięki czemu Nrf2 może się gromadzić i przemieszczać do jądra komórkowego.

2.4. Czynniki hamujące działanie szlaku Nrf2/ARE

Aktywność szlaku Nrf2/ARE obniżają białka przyspieszające rozkład Nrf2 oraz czynniki wygaszające transkrypcję w jądrze. Podstawowym hamulcem pozostaje sam kompleks Keap1–Cul3 [17]. Po ustąpieniu bodźca ponownie kieruje on Nrf2 do proteasomu [17]. Obok niego działa droga niezależna od Keap1. Kinaza syntazy glikogenu 3 fosforyluje Nrf2 w domenie Neh6 i tworzy miejsce rozpoznania dla białka β-TrCP, które przekazuje Nrf2 do rozkładu [21]. W przewlekłym stresie siateczki śródplazmatycznej Nrf2 ubikwitynuje dodatkowo trzecia ligaza, Hrd1 [24]. Osłabia ona obronę antyoksydacyjną, co opisano w marskiej wątrobie [24]. Współistnienie kilku ligaz sprawia, że aktywność Nrf2 jest tłumiona równolegle różnymi drogami [25]. Przegląd tych mechanizmów wskazuje na ich odrębną rolę w różnych stanach patologicznych [25].

Osobnym hamulcem jest wygaszanie transkrypcji w jądrze. Białko Bach1 wiąże część sekwencji ARE i utrzymuje niektóre geny docelowe w stanie wyciszonym [20]. Dotyczy to między innymi genu hemoksygenazy 1, dopóki hem albo utleniacze nie usuną Bach1 z tych miejsc [20]. Do wygaszania odpowiedzi przyczynia się także eksport Nrf2 z jądra po ustąpieniu bodźca [25]. Zestaw czynników hamujących sprawia, że odpowiedź antyoksydacyjna jest przejściowa i wygasza się po przywróceniu równowagi redoks.

2.5. Powiązania z innymi szlakami

Szlak Nrf2/ARE nie działa w oderwaniu, lecz krzyżuje się z drogami stanu zapalnego, metabolizmu i śmierci komórki. Najlepiej opisane jest przeciwstawienie wobec czynnika jądrowego kappa B (NF-κB). Podjednostka p65 tego czynnika hamuje transkrypcję zależną od ARE [26]. Odbiera Nrf2 białko koaktywatorowe CBP i sprowadza do sekwencji ARE korepresor deacetylazy histonowej [26]. W drugą stronę Nrf2 tłumi stan zapalny [27]. Blokuje w makrofagach transkrypcję genów prozapalnych cytokin, w tym interleukiny 6 i interleukiny 1β, niezależnie od własnej sekwencji wiążącej [27]. Oba szlaki wzajemnie się więc równoważą.

Nrf2 łączy się także z czujnikami energii i przemian. Kinaza aktywowana adenozynomonofosforanem fosforyluje Nrf2 w reszcie seryny 550, co sprzyja jego gromadzeniu w jądrze [28]. Przy trwałym pobudzeniu drogi kinazy fosfatydyloinozytolu Nrf2 przekierowuje glukozę i glutaminę do przemian budulcowych [29]. Wiąże to obronę antyoksydacyjną z metabolizmem wzrostu [29]. Osobne powiązanie dotyczy śmierci komórki. Geny docelowe Nrf2, w tym peroksydaza glutationowa 4 i podjednostka przenośnika cystyny, hamują ferroptozę, czyli śmierć napędzaną peroksydacją lipidów zależną od żelaza [30]. Sieć tych powiązań tłumaczy, dlaczego zaburzenia Nrf2 odbijają się na procesach odległych od samej obrony redoks.

3. Fizjologia a patologia

3.1. Rola w warunkach prawidłowych

W zdrowej komórce szlak Nrf2/ARE utrzymuje gotowość obrony antyoksydacyjnej i dostraja ją do bieżącego poziomu utleniaczy. Geny docelowe Nrf2 obejmują kilka współpracujących grup, których produkty razem neutralizują utleniacze i związki reaktywne. Zestawienie poniżej porządkuje te grupy według pełnionej funkcji, a nie według kolejności odkrycia.

Oferta NeuroExpert
NeuroExpert · bez reklam
Masz dość reklam?
Wyłącz banery, przerywniki i dolną belkę. Subskrypcja daje także pełny dostęp do bazy wiedzy NeuroExpert oraz treści premium.
Bez reklam
Pełny dostęp
Treści premium
Wyłącz reklamy
Grupa funkcji Przykładowe geny docelowe Rola produktu
Synteza i regeneracja glutationu GCLC, GCLM, przenośnik cystyny (podjednostka xCT) dostarczanie i odtwarzanie głównego przeciwutleniacza komórki
Układ tioredoksyny reduktaza tioredoksyny 1, sulfiredoksyna naprawa utlenionych białek
Detoksykacja fazy drugiej reduktaza chinonowa (NQO1), transferazy glutationowe, transferazy UDP-glukuronowe wiązanie i unieczynnianie związków reaktywnych
Gospodarka hemem i żelazem hemoksygenaza 1 (HMOX1), łańcuchy ferrytyny usuwanie hemu i bezpieczne magazynowanie żelaza
Odtwarzanie NADPH dehydrogenaza glukozo-6-fosforanu zasilanie reakcji redukcji elektronami

Wszystkie te geny mają w rejonie regulatorowym sekwencję ARE, dzięki czemu jeden sygnał uruchamia je równocześnie [1, 6]. Ich produkty tworzą powiązany układ. Reduktaza chinonowa i transferazy unieczynniają związki reaktywne, a glutation i tioredoksyna naprawiają szkody [1]. Hemoksygenaza rozkłada hem, a ferrytyna wiąże uwolnione żelazo, co ogranicza jego udział w powstawaniu najbardziej szkodliwego rodnika hydroksylowego [1]. Zależność aktywności szlaku od dawki bodźca leży u podstaw hipotezy hormezy [31]. Zakłada ona, że łagodny stres oksydacyjny pobudza Nrf2 i podnosi odporność komórki na późniejsze, silniejsze uszkodzenie [31]. Hipoteza tłumaczy, dlaczego niskie dawki roślinnych związków elektrofilowych działają ochronnie, a wysokie stają się toksyczne [31, 32]. Jej przełożenie na trwałe korzyści zdrowotne u człowieka pozostaje jednak przedmiotem badań [31, 32]. Rola prawidłowa szlaku sprowadza się więc do utrzymania równowagi, w której tempo powstawania utleniaczy nie przekracza pojemności układów obronnych.

3.2. Nasilenie nadmierne – następstwa

Trwałe, nadmierne włączenie szlaku Nrf2/ARE zmienia jego rolę z obronnej na sprzyjającą chorobie. Najlepiej opisanym następstwem jest udział w nowotworach. Komórka nowotworowa z konstytutywnie aktywnym Nrf2 zyskuje silną obronę antyoksydacyjną i sprawną detoksykację [33]. Pozwala jej to przeżyć w warunkach, które zabijają komórki prawidłowe, oraz opierać się chemioterapii [33]. Aktywny Nrf2 przekierowuje dodatkowo glukozę i glutaminę do przemian budulcowych, wspierając szybkie namnażanie [29].

Częstą przyczyną takiego stanu jest utrata kontroli ze strony Keap1. W raku płuca stwierdzono mutacje i utratę czynności genu KEAP1 [34]. Znoszą one hamowanie Nrf2 i prowadzą do jego trwałego gromadzenia w jądrze [34]. Towarzyszy temu nadmierna ekspresja enzymów detoksykacyjnych i pomp usuwających leki [34]. Nadmierna aktywność Nrf2 nie jest więc korzystna w każdych warunkach. Ta sama droga, która chroni komórkę zdrową, w komórce nowotworowej staje się mechanizmem oporności na leczenie.

Szlak Nrf2/ARE — Nadmierna aktywność — druga strona szlaku
Nadmierna aktywność — druga strona szlaku
Trwała aktywacja szlaku ma również niekorzystną stronę: komórki nowotworowe mogą wykorzystywać ją do zwiększenia odporności i przetrwania mimo chemioterapii.

3.3. Nasilenie niedostateczne – następstwa

Osłabienie szlaku Nrf2/ARE zmniejsza pojemność obrony antyoksydacyjnej i sprzyja uszkodzeniom oksydacyjnym. W starzejących się tkankach aktywność Nrf2 maleje. W wątrobie starych szczurów spadło stężenie jądrowego Nrf2 i jego wiązanie z sekwencją ARE [35]. Obniżyło to wytwarzanie podjednostek enzymu syntezy glutationu, a przez to stężenie samego glutationu [35]. Znaczenie ma tu osłabienie odpowiedzi na bodziec, a nie tylko niższy poziom wyjściowy Nrf2 [35]. Osłabienie to obniża zdolność komórki do wzmocnienia obrony pod wpływem stresu [35].

Niedobór aktywności Nrf2 ujawnia się także w narządach narażonych na utleniacze z zewnątrz. U myszy pozbawionych genu Nrf2 dym tytoniowy wywoływał wcześniejszą i rozleglejszą rozedmę płuc niż u zwierząt z prawidłowym genem [36]. Towarzyszyło temu nasilone zapalenie i większa liczba komórek ulegających apoptozie [36]. W tkance nerwowej skutki są poważne z powodu wyjściowo słabej obrony neuronów [7]. Gdy zawodzi zaopatrzenie ze strony astrocytów, neurony pozostają bez wystarczającej ochrony redoks [8]. Niedostateczna aktywność szlaku oznacza więc nie brak jednego enzymu, lecz obniżoną pojemność całego układu obronnego.

3.4. Udział szlaku Nrf2/ARE w chorobach

Zaburzenia szlaku Nrf2/ARE wchodzą w mechanizm chorób z obu stron, od nadmiaru i od niedoboru aktywności. Po stronie nadmiaru najlepiej udokumentowany jest udział w nowotworach. W grupie 1391 chorych na niedrobnokomórkowego raka płuca mutacje genów KEAP1 i NFE2L2 stwierdzono odpowiednio u 11,3% i 3,5% chorych [37]. Mutacje KEAP1 dotyczyły głównie gruczolakoraków, a mutacje NFE2L2 częściej raków płaskonabłonkowych [37]. Chorzy z tymi mutacjami rzadko odpowiadali na leczenie systemowe, co autorzy uznali za wskaźnik oporności na chemioterapię [37]. U chorych z mutacją EGFR współistniejące mutacje szlaku KEAP1–NFE2L2 skracały czas do niepowodzenia leczenia inhibitorem kinazy tyrozynowej [38]. Czas ten spadał z około trzynastu do niespełna pięciu miesięcy [38]. Trwała aktywacja Nrf2 działa tu jako mechanizm oporności guza na leczenie.

Po stronie niedoboru Nrf2 wiąże się z chorobami neurodegeneracyjnymi i przewlekłymi chorobami z komponentą oksydacyjną. W chorobie Alzheimera czynnik pozostaje w cytoplazmie neuronów mimo obecności stresu oksydacyjnego [9]. Wskazuje to na niewystarczającą odpowiedź obronną [9]. W modelach zwierzęcych brak Nrf2 sprzyjał rozedmie płuc wywołanej dymem tytoniowym, a osłabienie szlaku towarzyszyło starzeniu [36, 35]. Z powodu tej dwoistości Nrf2 jest badanym punktem uchwytu leków [39]. Jego pobudzenie rozważa się w chorobach przewlekłych z przewagą stresu oksydacyjnego, a zahamowanie w nowotworach z jego nadmierną aktywnością [39]. Udział szlaku w chorobie zależy więc od kierunku zaburzenia, a nie od samej jego obecności.

3.5. Modyfikacja behawioralna i dietetyczna

Aktywność szlaku Nrf2/ARE poddaje się zmianie przez leki i składniki diety działające jako induktory. Najlepiej udokumentowane są leki. Fumaran dimetylu, stosowany w stwardnieniu rozsianym, aktywuje Nrf2 przez modyfikację Cys151 białka Keap1 [40]. W modelu zwierzęcym chroniło to osłonki mielinowe i neurony [40]. W badaniu z randomizacją u chorych na postać rzutowo-remisyjną lek obniżał odsetek chorych z rzutem oraz częstość rzutów wobec placebo [41]. Udział Nrf2 w działaniu leku oceniano jednak rozbieżnie. W pierwszym badaniu korzystne działanie leku niemal zanikało u myszy pozbawionych Nrf2 [40]. W późniejszym badaniu lek u takich myszy nadal łagodził przebieg doświadczalnego zapalenia mózgu i rdzenia, co wskazuje na dodatkowy mechanizm przeciwzapalny [42]. U leczonych chorych potwierdzono za to indukcję genów zależnych od Nrf2, w tym reduktazy chinonowej, w komórkach krwi [43].

Wśród leków celujących wprost w ten szlak jest syntetyczny triterpenoid omaweloksolon. W badaniu z randomizacją u chorych na ataksję Friedreicha poprawiał wynik skali neurologicznej wobec placebo [44]. Korzyść utrzymywała się w przedłużeniu badania [45]. Lek dopuszczono do leczenia ataksji Friedreicha u dorosłych i młodzieży w 2023 roku [46]. Ostrożność w pobudzaniu Nrf2 wynika z badania pokrewnego związku, bardoksolonu metylu [47]. Próbę u chorych na cukrzycę typu 2 z zaawansowaną chorobą nerek przerwano z powodu większej liczby zdarzeń sercowo-naczyniowych w grupie leczonej, w tym hospitalizacji i zgonów z powodu niewydolności serca [47]. Spośród składników diety najlepiej zbadany jest sulforafan z brokułów. W badaniach z randomizacją u osób z zaburzeniami ze spektrum autyzmu obserwowano poprawę części ocen behawioralnych, choć wynik nie był powtarzalny między badaniami [48, 49]. W innych próbach związek zwiększał ekspresję enzymów fazy drugiej w błonie śluzowej dróg oddechowych oraz przyspieszał usuwanie zanieczyszczeń powietrza z organizmu [50, 51]. Modyfikacja szlaku Nrf2/ARE jest więc możliwa, lecz jej skutki zależą od siły dowodu dla konkretnego związku i wskazania.

3.6. Wsparcie suplementacyjne

Kilka substancji o kartach w katalogu suplementów wpływa na aktywność Nrf2 przez opisane punkty uchwytu w samym szlaku, a nie na zjawiska tylko z nim powiązane. Zestawienie poniżej podaje mechanizm i kierunek wpływu na aktywność szlaku wraz z siłą dowodu, przy czym dane u ludzi są dostępne tylko dla części pozycji.

Substancja Mechanizm wpływu Kierunek Siła dowodu
Kurkuma kurkumina wiąże się kowalencyjnie z cysteinami Keap1 i zwiększa stabilizację Nrf2 [52] ↑ aktywność B, wyniki niespójne
Resweratrol preparat z resweratrolem zwiększał wiązanie Nrf2 i ekspresję genów NQO1 oraz GST-P1 w komórkach krwi [56] ↑ aktywność B
EGCG galusan epigallokatechiny pobudza indukcję hemoksygenazy 1 i transferaz glutationowych zależną od Nrf2 [57] ↑ aktywność C
Kwas alfa-liponowy kwas liponowy zwiększał przemieszczenie Nrf2 do jądra i wiązanie sekwencji ARE w komórkach starych szczurów [35] ↑ aktywność C
Kwercetyna kwercetyna stabilizuje Nrf2 i obniża stężenie Keap1, nasilając aktywność zależną od ARE w hodowli komórek [58] ↑ aktywność C

Siła dowodu jest w większości pozycji ograniczona do danych z hodowli komórek albo modeli zwierzęcych, a wyniki u ludzi bywają rozbieżne. Suplementacja kurkuminą zwiększała ekspresję reduktazy chinonowej w skórze zdrowych ochotników w badaniu z randomizacją [53]. Nie zmieniała jednak ekspresji genów zależnych od Nrf2 w komórkach krwi chorych dializowanych ani aktywności Nrf2 po wysiłku, co wiązano z małą biodostępnością [54, 55]. Dawkowanie i interakcje tych substancji opisują karty działu Suplementy. Sulforafan ma najlepsze dane u ludzi dla induktora Nrf2, lecz nie ma karty w katalogu i dlatego nie wchodzi do zestawienia [10, 48].

4. Na co warto zwrócić uwagę

Aktywności szlaku Nrf2/ARE nie ocenia się w rutynowej diagnostyce. Zapytania o zbadanie poziomu Nrf2 nie mają więc odpowiednika w praktyce klinicznej. W badaniach naukowych aktywność szlaku ocenia się pośrednio, przez ekspresję genów docelowych w komórkach jednojądrzastych krwi obwodowej [43]. Mierzy się na przykład reduktazę chinonową i hemoksygenazę 1 [43]. Taki pomiar wykazał indukcję szlaku u chorych leczonych fumaranem dimetylu [43]. Posłużył też do stwierdzenia, że u starszych mężczyzn Nrf2 po wysiłku fizycznym słabiej przechodzi do jądra komórek krwi niż u młodych [60]. Wyniki te pozostają jednak narzędziem badawczym, a nie testem dla pojedynczej osoby, bo ekspresja w komórkach krwi nie odzwierciedla wprost aktywności szlaku w narządzie docelowym.

Rozpowszechnione jest błędne utożsamianie induktorów Nrf2 z antyoksydantami działającymi bezpośrednio. Induktor taki jak sulforafan nie zmiata utleniaczy sam, lecz modyfikuje Keap1 i włącza geny własnych enzymów komórki [10, 14]. Jego działanie jest przez to pośrednie i utrzymuje się dłużej niż reakcja witaminy C czy E z rodnikiem [14]. Różnica ta tłumaczy, dlaczego pobudzenie Nrf2 zwiększa zasób enzymów obronnych na czas ich trwania w komórce, podczas gdy cząsteczka bezpośredniego przeciwutleniacza zużywa się w reakcji. Nie każde działanie związków pobudzających Nrf2 przebiega jednak przez ten czynnik. W jednym z badań fumaran dimetylu zachowywał część skuteczności u zwierząt pozbawionych Nrf2, co wskazuje na dodatkowe drogi jego działania [42].

Osobnej ostrożności wymaga dwoisty charakter szlaku. Ta sama droga, która chroni komórki prawidłowe, w komórce nowotworowej z trwale aktywnym Nrf2 wspiera przeżycie guza i oporność na chemioterapię [33, 34]. Pobudzanie Nrf2 nie jest więc korzystne w każdych warunkach. Z tego powodu leki celujące w ten szlak oraz suplementy o działaniu induktora są przedmiotem badań, a nie ustalonym postępowaniem [39, 59]. Decyzja o ich zastosowaniu w chorobie należy do lekarza. Hipoteza hormezy opisuje mechanizm komórkowy, w którym łagodny stres pobudza obronę, lecz nie ustala bezpiecznej dawki induktora dla człowieka [31].

Najważniejsze ustalenia - Szlak Nrf2/ARE

Szlak Nrf2/ARE nie zmiata utleniaczy bezpośrednio, lecz włącza ponad dwieście pięćdziesiąt genów, w tym geny enzymów obronnych komórki, dlatego jego induktory działają pośrednio i długotrwale [6]. W stanie spoczynku czynnik Nrf2 ulega ciągłemu rozkładowi, a jego okres półtrwania wynosi poniżej dwudziestu minut, przez co jego stężenie jest utrzymywane na bardzo niskim poziomie [17]. Bodziec aktywujący Nrf2 nie zwiększa jego produkcji, lecz modyfikuje reszty cysteinowe białka Keap1 i hamuje degradację Nrf2. Dzięki temu nowo powstające cząsteczki…

Dostęp dla subskrybentów
Ta treść jest dostępna po zalogowaniu.
Masz już konto? Zaloguj się
Wykup dostęp

Źródła wyszukane w PubMed (NLM/NCBI). Przy każdej pozycji podano identyfikator PMID i odnośnik DOI.

  1. Tonelli C, Chio IIC, Tuveson DA. Transcriptional Regulation by Nrf2. Antioxid Redox Signal. 2017;29(17):1727-1745. DOI · PMID: 28899199
  2. Yamamoto M, Kensler TW, Motohashi H. The KEAP1-NRF2 System: a Thiol-Based Sensor-Effector Apparatus for Maintaining Redox Homeostasis. Physiol Rev. 2018;98(3):1169-1203. DOI · PMID: 29717933
  3. Rushmore TH, Morton MR, Pickett CB. The antioxidant responsive element. Activation by oxidative stress and identification of the DNA consensus sequence required for functional activity. J Biol Chem. 1991;266(18):11632-9. DOI · PMID: 1646813
  4. Radhakrishnan SK, den Besten W, Deshaies RJ. p97-dependent retrotranslocation and proteolytic processing govern formation of active Nrf1 upon proteasome inhibition. Elife. 2014;3:e01856. DOI · PMID: 24448410
  5. Chevillard G, Blank V. NFE2L3 (NRF3): the Cinderella of the Cap’n’Collar transcription factors. Cell Mol Life Sci. 2011;68(20):3337-48. DOI · PMID: 21687990
  6. Rojo AI, Buttari B, Cadenas S, Carlos AR, Cuadrado A, Falcão AS, et al. Model organisms for investigating the functional involvement of NRF2 in non-communicable diseases. Redox Biol. 2024;79:103464. DOI · PMID: 39709790
  7. Bell KFS, Al-Mubarak B, Martel MA, McKay S, Wheelan N, Hasel P, et al. Neuronal development is promoted by weakened intrinsic antioxidant defences due to epigenetic repression of Nrf2. Nat Commun. 2015;6:7066. DOI · PMID: 25967870
  8. Vargas MR, Johnson DA, Sirkis DW, Messing A, Johnson JA. Nrf2 activation in astrocytes protects against neurodegeneration in mouse models of familial amyotrophic lateral sclerosis. J Neurosci. 2008;28(50):13574-81. DOI · PMID: 19074031
  9. Ramsey CP, Glass CA, Montgomery MB, Lindl KA, Ritson GP, Chia LA, et al. Expression of Nrf2 in neurodegenerative diseases. J Neuropathol Exp Neurol. 2007;66(1):75-85. DOI · PMID: 17204939
  10. Zhang Y, Talalay P, Cho CG, Posner GH. A major inducer of anticarcinogenic protective enzymes from broccoli: isolation and elucidation of structure. Proc Natl Acad Sci U S A. 1992;89(6):2399-403. DOI · PMID: 1549603
  11. Moi P, Chan K, Asunis I, Cao A, Kan YW. Isolation of NF-E2-related factor 2 (Nrf2), a NF-E2-like basic leucine zipper transcriptional activator that binds to the tandem NF-E2/AP1 repeat of the beta-globin locus control region. Proc Natl Acad Sci U S A. 1994;91(21):9926-30. DOI · PMID: 7937919
  12. Itoh K, Chiba T, Takahashi S, Ishii T, Igarashi K, Katoh Y, et al. An Nrf2/small Maf heterodimer mediates the induction of phase II detoxifying enzyme genes through antioxidant response elements. Biochem Biophys Res Commun. 1997;236(2):313-22. DOI · PMID: 9240432
  13. Itoh K, Wakabayashi N, Katoh Y, Ishii T, Igarashi K, Engel JD, et al. Keap1 represses nuclear activation of antioxidant responsive elements by Nrf2 through binding to the amino-terminal Neh2 domain. Genes Dev. 1999;13(1):76-86. DOI · PMID: 9887101
  14. Dinkova-Kostova AT, Holtzclaw WD, Cole RN, Itoh K, Wakabayashi N, Katoh Y, et al. Direct evidence that sulfhydryl groups of Keap1 are the sensors regulating induction of phase 2 enzymes that protect against carcinogens and oxidants. Proc Natl Acad Sci U S A. 2002;99(18):11908-13. DOI · PMID: 12193649
  15. Zhang DD, Hannink M. Distinct cysteine residues in Keap1 are required for Keap1-dependent ubiquitination of Nrf2 and for stabilization of Nrf2 by chemopreventive agents and oxidative stress. Mol Cell Biol. 2003;23(22):8137-51. DOI · PMID: 14585973
  16. Saito R, Suzuki T, Hiramoto K, Asami S, Naganuma E, Suda H, et al. Characterizations of Three Major Cysteine Sensors of Keap1 in Stress Response. Mol Cell Biol. 2015;36(2):271-84. DOI · PMID: 26527616
  17. Kobayashi A, Kang MI, Okawa H, Ohtsuji M, Zenke Y, Chiba T, et al. Oxidative stress sensor Keap1 functions as an adaptor for Cul3-based E3 ligase to regulate proteasomal degradation of Nrf2. Mol Cell Biol. 2004;24(16):7130-9. DOI · PMID: 15282312
  18. McMahon M, Itoh K, Yamamoto M, Hayes JD. Keap1-dependent proteasomal degradation of transcription factor Nrf2 contributes to the negative regulation of antioxidant response element-driven gene expression. J Biol Chem. 2003;278(24):21592-600. DOI · PMID: 12682069
  19. Tong KI, Kobayashi A, Katsuoka F, Yamamoto M. Two-site substrate recognition model for the Keap1-Nrf2 system: a hinge and latch mechanism. Biol Chem. 2006;387(10-11):1311-20. DOI · PMID: 17081101
  20. Sun J, Hoshino H, Takaku K, Nakajima O, Muto A, Suzuki H, et al. Hemoprotein Bach1 regulates enhancer availability of heme oxygenase-1 gene. EMBO J. 2002;21(19):5216-24. DOI · PMID: 12356737
  21. Rada P, Rojo AI, Chowdhry S, McMahon M, Hayes JD, Cuadrado A. SCF/beta-TrCP promotes glycogen synthase kinase 3-dependent degradation of the Nrf2 transcription factor in a Keap1-independent manner. Mol Cell Biol. 2011;31(6):1121-33. DOI · PMID: 21245377
  22. Komatsu M, Kurokawa H, Waguri S, Taguchi K, Kobayashi A, Ichimura Y, et al. The selective autophagy substrate p62 activates the stress responsive transcription factor Nrf2 through inactivation of Keap1. Nat Cell Biol. 2010;12(3):213-23. DOI · PMID: 20173742
  23. Dinkova-Kostova AT, Hakomäki H, Levonen AL. Electrophilic metabolites targeting the KEAP1/NRF2 partnership. Curr Opin Chem Biol. 2024;78:102425. DOI · PMID: 38241876
  24. Wu T, Zhao F, Gao B, Tan C, Yagishita N, Nakajima T, et al. Hrd1 suppresses Nrf2-mediated cellular protection during liver cirrhosis. Genes Dev. 2014;28(7):708-22. DOI · PMID: 24636985
  25. Hayes JD, Dayalan Naidu S, Dinkova-Kostova AT. Regulating Nrf2 activity: ubiquitin ligases and signaling molecules in redox homeostasis. Trends Biochem Sci. 2025;50(3):179-205. DOI · PMID: 39875264
  26. Liu GH, Qu J, Shen X. NF-kappaB/p65 antagonizes Nrf2-ARE pathway by depriving CBP from Nrf2 and facilitating recruitment of HDAC3 to MafK. Biochim Biophys Acta. 2008;1783(5):713-27. DOI · PMID: 18241676
  27. Kobayashi EH, Suzuki T, Funayama R, Nagashima T, Hayashi M, Sekine H, et al. Nrf2 suppresses macrophage inflammatory response by blocking proinflammatory cytokine transcription. Nat Commun. 2016;7:11624. DOI · PMID: 27211851
  28. Joo MS, Kim WD, Lee KY, Kim JH, Koo JH, Kim SG. AMPK Facilitates Nuclear Accumulation of Nrf2 by Phosphorylating at Serine 550. Mol Cell Biol. 2016;36(14):1931-42. DOI · PMID: 27161318
  29. Mitsuishi Y, Taguchi K, Kawatani Y, Shibata T, Nukiwa T, Aburatani H, et al. Nrf2 redirects glucose and glutamine into anabolic pathways in metabolic reprogramming. Cancer Cell. 2012;22(1):66-79. DOI · PMID: 22789539
  30. Dodson M, Castro-Portuguez R, Zhang DD. NRF2 plays a critical role in mitigating lipid peroxidation and ferroptosis. Redox Biol. 2019;23:101107. DOI · PMID: 30692038
  31. Calabrese EJ, Kozumbo WJ. The hormetic dose-response mechanism: Nrf2 activation. Pharmacol Res. 2021;167:105526. DOI · PMID: 33667690
  32. Speciale A, Chirafisi J, Saija A, Cimino F. Nutritional antioxidants and adaptive cell responses: an update. Curr Mol Med. 2011;11(9):770-89. DOI · PMID: 21999148
  33. Rojo de la Vega M, Chapman E, Zhang DD. NRF2 and the Hallmarks of Cancer. Cancer Cell. 2018;34(1):21-43. DOI · PMID: 29731393
  34. Singh A, Misra V, Thimmulappa RK, Lee H, Ames S, Hoque MO, et al. Dysfunctional KEAP1-NRF2 interaction in non-small-cell lung cancer. PLoS Med. 2006;3(10):e420. DOI · PMID: 17020408
  35. Suh JH, Shenvi SV, Dixon BM, Liu H, Jaiswal AK, Liu RM, et al. Decline in transcriptional activity of Nrf2 causes age-related loss of glutathione synthesis, which is reversible with lipoic acid. Proc Natl Acad Sci U S A. 2004;101(10):3381-6. DOI · PMID: 14985508
  36. Rangasamy T, Cho CY, Thimmulappa RK, Zhen L, Srisuma SS, Kensler TW, et al. Genetic ablation of Nrf2 enhances susceptibility to cigarette smoke-induced emphysema in mice. J Clin Invest. 2004;114(9):1248-59. DOI · PMID: 15520857
  37. Frank R, Scheffler M, Merkelbach-Bruse S, Ihle MA, Kron A, Rauer M, et al. Clinical and Pathological Characteristics of KEAP1- and NFE2L2-Mutated Non-Small Cell Lung Carcinoma (NSCLC). Clin Cancer Res. 2018;24(13):3087-3096. DOI · PMID: 29615460
  38. Hellyer JA, Stehr H, Das M, Padda SK, Ramchandran K, Neal JW, et al. Impact of KEAP1/NFE2L2/CUL3 mutations on duration of response to EGFR tyrosine kinase inhibitors in EGFR mutated non-small cell lung cancer. Lung Cancer. 2019;134:42-45. DOI · PMID: 31319993
  39. Cuadrado A, Rojo AI, Wells G, Hayes JD, Cousin SP, Rumsey WL, et al. Therapeutic targeting of the NRF2 and KEAP1 partnership in chronic diseases. Nat Rev Drug Discov. 2019;18(4):295-317. DOI · PMID: 30610225
  40. Linker RA, Lee DH, Ryan S, van Dam AM, Conrad R, Bista P, et al. Fumaric acid esters exert neuroprotective effects in neuroinflammation via activation of the Nrf2 antioxidant pathway. Brain. 2011;134(Pt 3):678-92. DOI · PMID: 21354971
  41. Gold R, Kappos L, Arnold DL, Bar-Or A, Giovannoni G, Selmaj K, et al. Placebo-controlled phase 3 study of oral BG-12 for relapsing multiple sclerosis. N Engl J Med. 2012;367(12):1098-107. DOI · PMID: 22992073
  42. Schulze-Topphoff U, Varrin-Doyer M, Pekarek K, Spencer CM, Shetty A, Sagan SA, et al. Dimethyl fumarate treatment induces adaptive and innate immune modulation independent of Nrf2. Proc Natl Acad Sci U S A. 2016;113(17):4777-82. DOI · PMID: 27078105
  43. Gopal S, Mikulskis A, Gold R, Fox RJ, Dawson KT, Amaravadi L. Evidence of activation of the Nrf2 pathway in multiple sclerosis patients treated with delayed-release dimethyl fumarate in the Phase 3 DEFINE and CONFIRM studies. Mult Scler. 2017;23(14):1875-1883. DOI · PMID: 28156185
  44. Lynch DR, Chin MP, Delatycki MB, Subramony SH, Corti M, Hoyle JC, et al. Safety and Efficacy of Omaveloxolone in Friedreich Ataxia (MOXIe Study). Ann Neurol. 2021;89(2):212-225. DOI · PMID: 33068037
  45. Lynch DR, Chin MP, Boesch S, Delatycki MB, Giunti P, Goldsberry A, et al. Efficacy of Omaveloxolone in Friedreich’s Ataxia: Delayed-Start Analysis of the MOXIe Extension. Mov Disord. 2023;38(2):313-320. DOI · PMID: 36444905
  46. Lee A. Omaveloxolone: First Approval. Drugs. 2023;83(8):725-729. DOI · PMID: 37155124
  47. de Zeeuw D, Akizawa T, Audhya P, Bakris GL, Chin M, Christ-Schmidt H, et al. Bardoxolone methyl in type 2 diabetes and stage 4 chronic kidney disease. N Engl J Med. 2013;369(26):2492-503. DOI · PMID: 24206459
  48. Singh K, Connors SL, Macklin EA, Smith KD, Fahey JW, Talalay P, et al. Sulforaphane treatment of autism spectrum disorder (ASD). Proc Natl Acad Sci U S A. 2014;111(43):15550-5. DOI · PMID: 25313065
  49. Zimmerman AW, Singh K, Connors SL, Liu H, Panjwani AA, Lee LC, et al. Randomized controlled trial of sulforaphane and metabolite discovery in children with Autism Spectrum Disorder. Mol Autism. 2021;12(1):38. DOI · PMID: 34034808
  50. Riedl MA, Saxon A, Diaz-Sanchez D. Oral sulforaphane increases Phase II antioxidant enzymes in the human upper airway. Clin Immunol. 2008;130(3):244-51. DOI · PMID: 19028145
  51. Egner PA, Chen JG, Zarth AT, Ng DK, Wang JB, Kensler KH, et al. Rapid and sustainable detoxication of airborne pollutants by broccoli sprout beverage: results of a randomized clinical trial in China. Cancer Prev Res (Phila). 2014;7(8):813-823. DOI · PMID: 24913818
  52. Hee Jo E, Eun Moon J, Han Chang M, Jin Lim Y, Hyun Park J, Hee Lee S, et al. Sensitization of GSH synthesis by curcumin curtails acrolein-induced alveolar epithelial apoptosis via Keap1 cysteine conjugation: A randomized controlled trial and experimental animal model of pneumonitis. J Adv Res. 2022;46:17-29. DOI · PMID: 35772713
  53. Chien AL, Liu H, Rachidi S, Feig JL, Wang R, Wade KL, et al. Oral Glucoraphanin and Curcumin Supplements Modulate Key Cytoprotective Enzymes in the Skin of Healthy Human Subjects: A Randomized Trial. Metabolites. 2025;15(6):360. DOI · PMID: 40559384
  54. Reis DCMV, Alvarenga L, Cardozo LFMF, Baptista BG, Fanton S, Paiva BR, et al. Can curcumin supplementation break the vicious cycle of inflammation, oxidative stress, and uremia in patients undergoing peritoneal dialysis? Clin Nutr ESPEN. 2024;59:96-106. DOI · PMID: 38220413
  55. Thorley J, Alhebshi A, Rodriguez-Mateos A, Zhang Z, Bailey SJ, Martin NRW, et al. Acute supplementation with a curcuminoid-based formulation fails to enhance resting or exercise-induced NRF2 activity in males and females. Food Funct. 2024;15(21):10782-10794. DOI · PMID: 39392053
  56. Ghanim H, Sia CL, Korzeniewski K, Lohano T, Abuaysheh S, Marumganti A, et al. A resveratrol and polyphenol preparation suppresses oxidative and inflammatory stress response to a high-fat, high-carbohydrate meal. J Clin Endocrinol Metab. 2011;96(5):1409-14. DOI · PMID: 21289251
  57. Na HK, Surh YJ. Modulation of Nrf2-mediated antioxidant and detoxifying enzyme induction by the green tea polyphenol EGCG. Food Chem Toxicol. 2008;46(4):1271-8. DOI · PMID: 18082923
  58. Tanigawa S, Fujii M, Hou DX. Action of Nrf2 and Keap1 in ARE-mediated NQO1 expression by quercetin. Free Radic Biol Med. 2007;42(11):1690-703. DOI · PMID: 17462537
  59. Dinkova-Kostova AT, Copple IM. Advances and challenges in therapeutic targeting of NRF2. Trends Pharmacol Sci. 2023;44(3):137-149. DOI · PMID: 36628798
  60. Done AJ, Gage MJ, Nieto NC, Traustadóttir T. Exercise-induced Nrf2-signaling is impaired in aging. Free Radic Biol Med. 2016;96:130-8. DOI · PMID: 27109910

Podobne wpisy